cGAS-STING通路介导的ROS在锰暴露诱导的凋亡和铁死亡中的作用及机制

The role and mechanism of the cGAS-STING pathway-mediated ROS in apoptosis and ferroptosis induced by manganese exposure.

作者信息Zhimin Zhang, Jirui Yang, Qiongli Zhou, Shiyin Zhong, Jinghao Luo, Xueting Chai, Jingjing Liu, Xin Zhang, Xuhong Chang, Hui Wang
PMID40652697
发布时间2025-09
DOI10.1016/j.redox.2025.103761

实验完整度

包含BV2细胞模型、小鼠动物模型及患者样本(未涉及),通过Western blot、流式细胞术、RNA-seq等方法,验证了cGAS-STING通路和ROS在锰诱导的凋亡与铁死亡中的功能作用。

主要模型

BV2小胶质细胞 C57BL/6J小鼠(锰暴露模型)

重点核对

BV2细胞用MnCl2处理浓度:0, 50, 100, 200 μmol/L,处理时间6小时 动物模型:C57BL/6J小鼠,通过饮水给予MnCl2(100, 200, 400 mg/L),持续5周 cGAS和STING基因敲除细胞系(BV2cGAS−/−和BV2STING−/−)用于验证通路依赖性 ROS抑制剂NAC预处理浓度10 mmol/L,处理6小时 铁死亡诱导剂Erastin浓度20 μmol/L,处理6小时

摘要

环境暴露于高水平的锰(Mn)与神经认知缺陷显著相关,引起了广泛关注,但其潜在机制尚未完全阐明。铁死亡被认为是认知障碍的重要贡献者。我们的研究表明,锰暴露激活cGAS-STING通路,介导活性氧(ROS)的产生,进而诱导凋亡和铁死亡。机制上,锰诱导的cGAS-STING激活促进氧化应激,表现为ROS和丙二醛(MDA)产生增加,同时谷胱甘肽过氧化物酶(GSH-Px)和超氧化物歧化酶(SOD)活性降低。此外,该激活的通路通过介导ROS依赖的Bax/Bcl-2表达改变和线粒体细胞色素C(Cyt C)释放来触发凋亡。另外,cGAS-STING通路的过度激活驱动ROS积累,破坏铁稳态,并通过调节溶质载体家族7成员11(SLC7A11)、谷胱甘肽过氧化物酶4(GPX4)、铁死亡抑制蛋白1(FSP1)、二氢乳清酸脱氢酶(DHODH)和酰基辅酶A合成酶长链家族成员4(ACSL4)的表达诱导铁死亡。重要的是,抑制cGAS-STING通路或ROS均显著改善了锰诱导的氧化应激、凋亡和铁死亡。总之,这些发现确立了cGAS-STING通路激活介导ROS产生,导致凋亡和铁死亡,是锰神经毒性的重要机制。因此,靶向cGAS-STING通路或ROS是减轻锰神经毒性的一种有前景的治疗策略。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
锰暴露通过何种机制诱导神经毒性,特别是cGAS-STING通路和ROS在凋亡和铁死亡中的作用。
核心机制
锰暴露激活cGAS-STING通路,促进ROS产生,导致氧化应激,进而通过调节Bax/Bcl-2和Cyt C释放诱导凋亡,并通过调节SLC7A11、GPX4、FSP1、DHODH和ACSL4表达诱导铁死亡。
主要证据
体外实验显示MnCl2处理BV2细胞激活cGAS-STING通路,增加ROS和MDA,降低GSH-Px和SOD活性,并诱导凋亡和铁死亡;cGAS/STING敲除或ROS抑制可逆转这些效应。体内实验显示锰暴露小鼠脑组织中cGAS-STING通路激活,氧化应激、凋亡和铁死亡标志物改变。
研究意义
该研究为锰神经毒性的机制提供了新见解,靶向cGAS-STING通路或ROS可能成为缓解锰神经毒性的潜在治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

体外细胞模型建立与锰暴露处理

构建锰暴露的细胞模型,确定锰对BV2细胞的毒性作用。

使用BV2小胶质细胞,以不同浓度MnCl2(0, 50, 100, 200 μmol/L)处理6小时,检测cGAS-STING通路蛋白表达、氧化应激水平、凋亡和铁死亡相关指标。

2

体内动物模型建立与锰暴露处理

验证锰暴露在整体动物水平上是否引起类似体外观察到的神经毒性效应。

使用C57BL/6J小鼠,通过饮水给予不同浓度的MnCl2(100, 200, 400 mg/L)持续5周,建立锰暴露模型。检测脑组织中cGAS-STING通路激活、氧化应激、凋亡和铁死亡指标。

3

cGAS-STING通路功能验证

确定cGAS-STING通路在锰诱导的氧化应激、凋亡和铁死亡中的因果作用。

构建BV2cGAS−/−和BV2STING−/−细胞系,以不同浓度MnCl2处理,检测氧化应激、凋亡和铁死亡相关指标与野生型比较。

4

ROS调控验证

验证ROS在锰诱导的凋亡和铁死亡中的关键作用。

使用ROS抑制剂NAC预处理BV2细胞,再以MnCl2处理,检测ROS水平、凋亡率和铁死亡相关蛋白表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

验证样本或模型特征
验证分子表达变化
验证细胞功能变化
验证氧化应激水平
数据分析与统计

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基XPBioMed--
青霉素-链霉素溶液XPBioMed--
胎牛血清XPBioMed--
氯化锰Sigma--
ErastinSelleckS7242
N-乙酰-L-半胱氨酸BeyotimeST1546
DCFH-DA荧光探针Elabscience--
谷胱甘肽过氧化物酶活性检测试剂盒Beyotime--
超氧化物歧化酶活性检测试剂盒Beyotime--
丙二醛含量检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioenguneering Institute--
Fe2+含量检测试剂盒Elabscience--
JC-1工作液Elabscience--
Annexin V-FITC----
碘化丙啶----
结合缓冲液Elabscience--
透射电子显微镜JEOL--
荧光扫描显微镜Olympus--
RIPA裂解液BOSTERAR0102
蛋白酶抑制剂Mei5bioMF182
磷酸酶抑制剂ApexbioK1015
PVDF膜Millipore--
5%脱脂牛奶封闭液EpizymePS112L
抗cGAS抗体Cell Signaling Technology31659
抗STING抗体Abcamab288157
抗TBK1抗体Abcamab40676
抗IRF3抗体Proteintech66670-1-Ig
抗Bax抗体Cell Signaling Technology14796
抗Bcl-2抗体WanleibioWL01556
抗细胞色素C抗体Cell Signaling Technology11940
抗GPX4抗体Abcamab125066
抗SLC7A11抗体Abcamab307601
抗FSP1抗体Proteintech68049-1-Ig
抗DHODH抗体Cell Signaling Technology26381
抗ACSL4抗体Abcamab155282
抗β-肌动蛋白抗体Proteintech81115-1-RR
抗GAPDH抗体Signalway Antibody21612
HRP标记的二抗Signalway AntibodyL35666
ECL发光液Life-iLab--
凝胶成像仪Bio-Rad--
流式细胞仪BD--
酶标仪TECAN--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与处理
BV2细胞培养条件(培养基、血清浓度、温度、CO2浓度);MnCl2处理浓度(0, 50, 100, 200 μmol/L)和处理时间(6小时)。
阅读提示:详见Materials and methods 2.1
动物实验
小鼠品系、周龄、体重;MnCl2剂量(100, 200, 400 mg/L)和暴露时间(5周);饲养条件(温度、湿度、光照周期)。
阅读提示:详见Materials and methods 2.2
氧化应激检测
ROS检测使用DCFH-DA探针浓度(10 μmol/L)和孵育时间(30分钟);GSH-Px、SOD、MDA检测试剂盒来源和操作步骤。
阅读提示:详见Materials and methods 2.4
凋亡检测
Annexin V-FITC和PI用量(各2.5 μL)和孵育时间(15-20分钟);流式细胞仪型号(Accuri C6 Plus)。
阅读提示:详见Materials and methods 2.7
Western blot
抗体清单及稀释比例(1:1000);二抗稀释比例(1:5000);内参蛋白(β-Actin或GAPDH);实验重复次数(3次)。
阅读提示:详见Materials and methods 2.10