sEVs的分离与鉴定
验证从DPSC培养上清中分离的sEVs的物理特性和标志物表达,并确认其可被细胞和肺组织摄取。
通过差速超速离心从Ad.Null或Ad.miR-486感染的DPSC培养上清中分离sEVs,使用NTA和TEM分析大小和形态,Western blot检测标志物,PKH26标记后与PMVEC共培养和尾静脉注射小鼠进行摄取实验。
Small extracellular vesicles derived from miRNA-486 overexpressed dental pulp stem cells mitigate high altitude pulmonary edema through PTEN/PI3K/AKT/eNOS pathway.
包含大鼠HAPE模型体内验证、PMVEC细胞体外模型、miRNA mimic/inhibitor转染及通路抑制剂干预等多层级功能与机制验证。
大鼠HAPE模型(Sprague-Dawley大鼠,模拟海拔6000米) 肺微血管内皮细胞(PMVEC) DPSC来源的小细胞外囊泡(sEVNull和sEVmiR−486)
大鼠分组:Control、HAPE、sEVNull、sEVmiR−486,每组n=7,尾静脉注射1×10^10颗粒/100μL,第1天和第3天 PMVEC缺氧损伤模型:200μM CoCl2处理24小时 miRNA-486 mimic/inhibitor转染浓度:15nM PI3K抑制剂Ly294002处理浓度:20μM,处理30分钟
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证从DPSC培养上清中分离的sEVs的物理特性和标志物表达,并确认其可被细胞和肺组织摄取。
通过差速超速离心从Ad.Null或Ad.miR-486感染的DPSC培养上清中分离sEVs,使用NTA和TEM分析大小和形态,Western blot检测标志物,PKH26标记后与PMVEC共培养和尾静脉注射小鼠进行摄取实验。
建立HAPE大鼠模型,评估sEVNull和sEVmiR−486的治疗效果。
成年雄性SD大鼠随机分为Control、HAPE、sEVNull和sEVmiR−486四组,通过模拟6000米海拔的低压缺氧舱建立HAPE模型,尾静脉注射sEV,检测肺动脉压、肺含水量、组织病理和蛋白含量。
评估sEV治疗对HAPE大鼠和缺氧PMVEC细胞氧化应激和炎症水平的影响。
检测肺组织匀浆中SOD活性、MDA水平,PMVEC中SOD2和CAT基因表达,Nrf2/Keap1/HO-1通路蛋白表达;ELISA检测肺组织和血清中炎性细胞因子水平。
探究sEV治疗对HAPE引起的紧密连接破坏和通透性异常的修复作用。
通过免疫荧光检测大鼠肺组织Occludin表达,Western blot检测PMVEC中ZO-1和Occludin,ELISA检测血浆中ET-1、TXA2、NO、PGI2,qPCR和Western blot检测AQP-1、AQP-5、Na+/K+-ATPase、TRPV4等表达。
验证miRNA-486通过PTEN/PI3K/Akt/eNOS通路减轻氧化应激的分子机制。
KEGG富集分析sEV差异miRNA;在PMVEC中转染miR-486 mimic和inhibitor,检测PTEN、Akt1、PDK1、NOS3表达及Akt磷酸化、eNOS蛋白水平,并用流式细胞术检测ROS,用PI3K抑制剂Ly294002处理验证通路参与。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| sEV分离 | 超速离心机(XPN-80) | Beckman Coulter | -- |
| sEV表征 | ZetaView PMX 110纳米颗粒分析仪 | Particle Metrix | -- |
| 日立HT7800透射电子显微镜 | Hitachi | -- | |
| sEV标记 | PKH26染料 | MedChemExpress | HY-D1451 |
| 细胞转染 | RNA TransMate转染试剂 | Sangon Biotech | E607402 |
| 细胞处理 | Ly294002(PI3K抑制剂) | MCE | HY-10108 |
| 动物实验 | Vevo 3100 LT小动物超声成像系统 | VisualSonics | -- |
| 异氟烷 | -- | -- | |
| 组织处理 | Pierce™ BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 免疫荧光 | 荧光封片剂(BD-FM-1) | BDHM | -- |
| Opal 520试剂盒 | BDHM | BD52100 | |
| DAPI染料 | BDHM | BD-DAPI-1 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Epizyme | PC101 |
| 蛋白酶抑制剂 | Epizyme | GRF101 | |
| 磷酸酶抑制剂 | Epizyme | GRF102 | |
| ECL底物 | Zomanbio | -- | |
| Tanon成像系统 | Tanon | -- | |
| qPCR | RNA快速纯化试剂盒 | ES Science | -- |
| Evo M-MLV反转录试剂盒 | Acclurate | -- | |
| qPCR SYBR Green I预混液 | Yeasen | -- | |
| CFX Connect实时荧光定量PCR仪 | Bio-Rad | -- | |
| 流式细胞术 | 活性氧工作液 | Byotime | -- |
| 流式细胞仪 | BD | -- | |
| 抗体 | 抗水通道蛋白5抗体 | Abcam | ab78486 |
| 抗水通道蛋白1抗体 | Abcam | ab168387 | |
| 抗血红素加氧酶1抗体 | Abcam | ab68477 | |
| 抗Occludin抗体 | Abcam | ab167161 | |
| 抗TSG101抗体 | Abcam | ab125011 | |
| 抗CD63抗体 | Abcam | ab134045 | |
| 抗CD9抗体 | Abcam | ab236630 | |
| 抗βⅢ微管蛋白抗体 | Abcam | ab18207 | |
| 抗eNOS抗体 | Abcam | ab5589 | |
| NRF2(E3J1V)兔单克隆抗体 | Cell Signaling | 33649 | |
| Keap1 (D6B12)兔单克隆抗体 | Cell Signaling | 8047S | |
| PI3激酶P85兔抗体 | Cell Signaling | 4257T | |
| 磷酸化Akt (Ser473)兔单克隆抗体 | Cell Signaling | 4060S | |
| Thy1/CD90 (D3V8A)兔单克隆抗体 | Cell Signaling | 13801S | |
| Akt抗体 | Cell Signaling | 9272S | |
| TRPV4抗体 | Affbiotech | DF8624 | |
| ZO-1抗体 | Affbiotech | AF5145 | |
| β-肌动蛋白兔多克隆抗体 | ZENBIO | 380624 | |
| 山羊抗兔IgG (H+L) | Boster | BST18D06A8E54 | |
| ELISA检测 | 一氧化氮(NO)比色法试剂盒 | Elabscience | E-BC-K035-M |
| 前列环素(PGI2)ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-0022c | |
| 大鼠内皮素1(ET-1)ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-R1458c | |
| 血栓烷A2(TXA2)ELISA试剂盒 | Elabscience | E-EL-0057C | |
| 总超氧化物歧化酶(T-SOD)活性检测试剂盒(WST-1法) | Elabscience | E-BC-K020-M | |
| 丙二醛(MDA)比色法试剂盒(TBA法) | Elabscience | E-BC-K025-M | |
| 大鼠IL-6 ELISA试剂盒 | ABclonal | RK00020 | |
| 大鼠IL-1β ELISA试剂盒 | ABclonal | RK00009 | |
| 大鼠白细胞介素1β(IL-1β)ELISA试剂盒 | MEIKE | MK1588A | |
| 大鼠白细胞介素4(IL-4)ELISA试剂盒 | MEIKE | MK6742A | |
| 大鼠白细胞介素6(IL-6)ELISA试剂盒 | MEIKE | MK1731A | |
| 大鼠白细胞介素10(IL-10)ELISA试剂盒 | MEIKE | MK1736A | |
| 大鼠白细胞介素12(IL-12)ELISA试剂盒 | MEIKE | MK1681A | |
| 大鼠白细胞介素17A(IL-17A)ELISA试剂盒 | MEIKE | MK7071A | |
| 大鼠肿瘤坏死因子α(TNF-α)ELISA试剂盒 | MEIKE | MK1721A |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 大鼠HAPE模型建立 | 大鼠品系、性别、体重、分组、各组样本量、缺氧条件、给药途径、sEV剂量、给药时间点 阅读提示:Materials and methods 2.5 节 |
| PMVEC缺氧模型 | CoCl2浓度、处理时间、sEV处理浓度、加药时间顺序 阅读提示:Materials and methods 2.3 节 |
| miRNA转染 | mimic/inhibitor浓度、转染试剂、转染时间 阅读提示:Materials and methods 2.3 节 |
| PI3K抑制剂处理 | Ly294002浓度、处理时间 阅读提示:Materials and methods 2.3 节 |