动物模型建立与基因型鉴定
建立FBXO45过表达和野生型小鼠,并确认基因型。
繁殖FBXO45-OE小鼠并剪尾提取DNA进行PCR基因分型,鉴定阳性小鼠。
In vivo analysis of FBXO45-mediated fibrosis and liver tumorigenesis in a chemically induced mouse model of hepatocellular carcinoma.
该方案包含化学诱导小鼠模型、组织病理学(H&E、IHC)和基因表达分析(qRT-PCR)等实验层级,但主要侧重于方法描述,缺乏机制验证和体内功能验证。
FBXO45过表达转基因小鼠(FBXO45-OE,C57BL/6J背景) 野生型C57BL/6J小鼠 DEN/CCl4诱导的肝细胞癌小鼠模型
小鼠品系:C57BL/6J,雄性,FBXO45-OE及野生型,4周龄 化学诱导:2周龄时单次腹腔注射DEN(25 mg/kg),4周龄时每周两次腹腔注射CCl4(0.5 mL/kg,20%橄榄油溶液),持续14周,之后观察6周 组织采集:肝脏分离,肿瘤计数和最大直径测量(用游标卡尺),组织固定于10%福尔马林,RNA样品液氮速冻 qRT-PCR分析:使用TB Green Premix Ex Taq II,GAPDH作为内参,2^-ΔΔCt法计算相对表达 病理评估:H&E染色和IHC(anti-FBXO45 1:300, anti-Ki67 1:800)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立FBXO45过表达和野生型小鼠,并确认基因型。
繁殖FBXO45-OE小鼠并剪尾提取DNA进行PCR基因分型,鉴定阳性小鼠。
诱导小鼠产生肝纤维化和肝细胞癌。
14日龄小鼠腹腔注射DEN,4周龄开始每周两次CCl4注射,持续14周,然后观察6周。
收集肝脏组织并评估肿瘤数量、大小及肝脏重量。
处死小鼠,分离肝脏,冲洗,观察并计数肉眼可见肿瘤,测量最大直径,记录体重、肝重、肿瘤数和转移情况,并采集组织用于后续分析。
检测纤维化和炎症相关基因的表达水平。
从肝组织提取总RNA,逆转录合成cDNA,通过qRT-PCR检测纤维化相关基因(Acta2, Timp1, Col1a1, Col1a2, Pdgfb, Pdgfrb)和炎症因子(Il6, Il1b, Tnfa, Ccl2)的表达。
评估肝脏组织的形态学和蛋白质表达变化。
对肝组织切片进行H&E染色以观察病理变化,通过IHC检测FBXO45和Ki67蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 化学诱导 | 橄榄油 | Sangon Biotech | A502795 |
| 0.9%氯化钠溶液 | Southwest Pharmaceutical | -- | |
| 组织处理 | 10%中性缓冲福尔马林 | Sigma | HT501128 |
| RNA提取 | RNAiso Plus试剂 | Takara | 9108 |
| 麻醉 | 异氟烷 | Sigma | PHR2874 |
| RNA提取 | 氯仿 | Nanjing Reagent | C0761520224 |
| 异丙醇 | Macklin | I811925 | |
| DEPC水 | Sangon Biotech | B501005-0500 | |
| H&E染色 | 苏木素染色液 | Biosharp | BL702B |
| 伊红染色液 | Biosharp | BL703B | |
| IHC | 柠檬酸钠抗原修复液(50×) | Solarbio | C1032 |
| 过氧化氢 | Elabscience | E-IR-R115 | |
| H&E染色 | 甲醇 | Macklin | M813895 |
| 二甲苯 | Macklin | X820585 | |
| 乙醇 | Macklin | E809061 | |
| 中性树胶 | Biosharp | BL704A | |
| 组织包埋 | 石蜡 | Aladdin | P100928 |
| 组织处理 | 1×PBS缓冲液 | BBI life sciences | E607008 |
| 基因分型 | 小鼠直接PCR试剂盒 | Bimake | B40013 |
| RT-qPCR | PrimeScript RT试剂盒(含gDNA Eraser) | Takara | RR047 |
| TB Green Premix Ex Taq II | Takara | RR820 | |
| IHC | DAB显色试剂盒(20×) | Zsgb-Bio | ZLI-9019 |
| 免疫组织化学检测试剂盒 | Zsgb-Bio | SP-9001 | |
| 兔抗FBXO45抗体 | Bioss | bs-13150R | |
| 小鼠抗Ki67抗体 | Millipore | FCMAB103AP | |
| 注射 | 1毫升注射器 | Huayon | 21-3026 |
| 组织冲洗 | 50毫升注射器 | Huayon | 21-3020 |
| 样品保存 | 1.5毫升离心管 | Axygen | MCT-150-C |
| 溶液配制 | 50毫升离心管 | Nest | 602052 |
| 解剖 | 解剖剪 | Huayon | 18-0110 |
| 镊子 | Huayon | 18-1240 | |
| 混匀 | 振荡器 | Kylin-Bell | VORTEX-6 |
| 组织包埋 | 组织包埋模具 | Citotest | 31050106W |
| 切片 | 载玻片 | Citotest | 188105W |
| 盖玻片 | Citotest | 10212450C | |
| IHC | 组化笔 | Zsgb-Bio | -- |
| 肿瘤测量 | 游标卡尺 | Asoyoga | ASJ-424 |
| 止血 | 止血棉 | -- | -- |
| 组织匀浆 | 组织匀浆器 | Tiangen | OSE-Y30 |
| 称重 | 电子分析天平 | Sartorius | BSA124S-CW |
| 显微镜观察 | 显微镜(BX41) | Olympus | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物准备与基因分型 | 小鼠品系(C57BL/6J)、性别(雄性)、周龄(4周)、基因型(FBXO45-OE或WT)、PCR引物序列及条件 阅读提示:Before you begin: Preparation of animals, Preparation of genotyping, Key resources table |
| DEN/CCl4诱导 | DEN剂量(25 mg/kg)、注射途径(腹腔)、注射时间(14日龄);CCl4剂量(0.5 mL/kg)、浓度(20%橄榄油)、注射频率(每周两次,14周)、观察期(6周);对照组(盐水/橄榄油) 阅读提示:Step-by-step method details: DEN/CCl4-induced HCC animal model |
| 组织采集 | 麻醉方式、处死方法、肝脏处理(冲洗、固定)、肿瘤计数和测量方法 阅读提示:Step-by-step method details: Tissue sample collection |
| RNA提取和qRT-PCR | RNA提取试剂和步骤、qPCR引物序列、内参基因(GAPDH)、技术重复数(3)、分析方法(2^-ΔΔCt) 阅读提示:Step-by-step method details: RNA isolation and quantitative real-time PCR, Key resources table |
| 组织病理学 | 切片厚度(5 μm)、抗原修复条件(10 mM柠檬酸钠,高压2.5分钟)、抗体稀释度(FBXO45 1:300,Ki67 1:800)、染色步骤(H&E和IHC) 阅读提示:Step-by-step method details: Hematoxylin and eosin staining, Immunohistochemistry staining assay |