建立MCD饮食诱导的NASH小鼠模型
建立NASH小鼠模型,用于评估SDS的预防和治疗效果。
7周龄雄性C57BL/6J小鼠随机分为四组,对照组喂食正常饮食,MCD组喂食MCD饮食,MCD-SP组喂食MCD饮食并同时给予SDS(24 mg/kg/天)持续28天,MCD-ST组先喂食MCD饮食4周建立NASH模型,然后改为正常饮食并给予SDS(24 mg/kg/天)持续28天。
Salidroside may target PPARα to exert preventive and therapeutic activities on NASH.
包含体内动物模型(MCD饮食诱导NASH)、组织病理学、生化检测、自噬/凋亡/免疫/炎症多层面验证,以及转录组-蛋白质组测序、分子对接和表达验证,属于多证据层级。
MCD饮食诱导的NASH小鼠模型 C57BL/6J小鼠
MCD饮食诱导NASH模型的建立及验证 SDS给药剂量24 mg/kg/天,持续4周 自噬标志物LC3和p62的表达变化 凋亡标志物BCL-2和BAX的表达变化 PPARα在肝脏中的表达验证
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立NASH小鼠模型,用于评估SDS的预防和治疗效果。
7周龄雄性C57BL/6J小鼠随机分为四组,对照组喂食正常饮食,MCD组喂食MCD饮食,MCD-SP组喂食MCD饮食并同时给予SDS(24 mg/kg/天)持续28天,MCD-ST组先喂食MCD饮食4周建立NASH模型,然后改为正常饮食并给予SDS(24 mg/kg/天)持续28天。
通过组织病理学、生化和血清学指标评估SDS对NASH的预防和治疗作用。
取肝脏组织进行H&E、油红O和天狼星红染色,计算NAS评分;检测血清和肝脏TG、TC、ALT、AST水平。
评估SDS对肝细胞自噬和凋亡的影响。
通过qRT-PCR和Western blot检测LC3和p62表达,TEM观察自噬体;通过IHC检测BCL-2和BAX表达,TUNEL染色检测凋亡。
评估SDS对肝脏和脾脏免疫细胞组成及血清炎症因子的影响。
流式细胞术检测肝脏和脾脏中CD4+ T细胞、CD8+ T细胞、Tregs、Th17细胞、B细胞、巨噬细胞和NK细胞的频率;ELISA检测血清炎症因子IL-2、TNF-α、IL-10和IL-17;IHC检测NF-κB表达。
通过转录组和蛋白质组测序识别SDS抗NASH的潜在分子机制和信号通路。
对MCD、MCD-SP和MCD-ST组小鼠肝组织进行RNA-seq和蛋白质组测序,分析差异表达基因和蛋白质,并进行GO和KEGG富集分析。
预测并验证SDS治疗NASH的潜在分子靶点。
通过SwissTargetPrediction预测SDS靶点,DisGeNET获取NASH相关靶点,取交集后构建PPI网络,识别核心靶点,并利用AutoDockTools进行分子对接验证SDS与PPARα的结合。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | MCD饮食 | -- | -- |
| 生化指标检测 | 商业试剂盒 | Nanjing Jiancheng Institute of Bioengineering | -- |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Shanghai Enzyme-linked Biotechnology | -- |
| 组织学分析 | 光学显微镜 | Olympus | BX51 |
| 免疫组织化学 | 抗BCL-2一抗 | Absin | abs131701 |
| 抗BAX一抗 | Selleck | A5131 | |
| 抗NF-κB一抗 | CST | 8242T | |
| 生物素化二抗 | Proteintech | -- | |
| 透射电子显微镜 | 透射电子显微镜 | -- | JEM-1400Flash |
| RNA提取 | MolPure® TRIeasy™ Plus 总RNA提取试剂盒 | Yeasen | -- |
| 逆转录 | FastKing RT SuperMix试剂盒 | TIANGEN | -- |
| qRT-PCR | Fast SYBR Green预混液 | Yeasen | -- |
| Western blotting | 蛋白酶抑制剂 | Beyotime | -- |
| PVDF膜 | Millipore | -- | |
| 抗p62抗体 | CST | 5114T | |
| 抗LC3A/B抗体 | CST | 12741T | |
| 抗PPARα抗体 | Proteintech | 66826-1-Ig | |
| 抗β-actin抗体 | Proteintech | 81115-1-RR | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG | Proteintech | -- | |
| HRP标记的山羊抗小鼠IgG | Proteintech | -- | |
| TUNEL染色 | TUNEL染色试剂盒 | Roche | -- |
| DAPI | Sigma-Aldrich | -- | |
| 流式细胞术 | 抗CD4抗体 | Proteintech | 67786-1-Ig |
| 抗IL-17抗体 | Proteintech | 66148-1-Ig | |
| 抗CD3抗体 | Proteintech | 17617-1-AP | |
| 抗CD8抗体 | Santa | sc-53063 | |
| 抗CD25抗体 | Elabscience | E-AB-F1194C | |
| 抗Foxp3抗体 | CST | 12653S | |
| 抗CD16抗体 | Elabscience | E-AB-F1236C | |
| 抗CD56抗体 | Proteintech | 14255-1-AP | |
| 抗CD11b抗体 | Proteintech | 66519-1-Ig | |
| 抗CD19抗体 | Thermo Fisher | 66298-1-Ig | |
| 抗CD268抗体 | Proteintech | 14-9,117-82 | |
| FITC标记的抗小鼠抗体 | Elabscience | E-AB-1088 | |
| FITC标记的抗兔抗体 | Elabscience | E-AB-1111 | |
| 转录组测序 | RNAiso Plus试剂 | TaKaRa | 9109 |
| RNAClean XP试剂盒 | Beckman Coulter | A63987 | |
| 无RNase的DNase试剂盒 | QIAGEN | 79254 | |
| VAHTS mRNA-seq v2文库制备试剂盒 | Illumina | -- | |
| 蛋白质组学 | Q Exactive HF-X质谱仪 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| EASY nLC 1200系统 | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 软件分析 | Spectronaut软件 | Biognosys | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| NASH模型建立 | MCD饲料成分、喂养时间(4周)、小鼠品系和性别 阅读提示:见Methods 2.1 Animals and treatment |
| SDS给药 | SDS剂量(24 mg/kg/天)、给药方式(灌胃)、持续时间(28天) 阅读提示:见Methods 2.1 Animals and treatment |
| 生化指标检测 | 血清及肝脏TG、TC、ALT、AST的检测方法、试剂盒品牌 阅读提示:见Methods 2.2 Serum and hepatic biochemical indicators |
| 组织病理学 | 切片厚度、染色方法、NAS评分标准 阅读提示:见Methods 2.3 Histological analysis |
| 自噬和凋亡检测 | LC3和p62的抗体、qRT-PCR引物、TEM观察条件 阅读提示:见Methods 2.5 Quantitative real-time PCR、2.6 Western blotting、2.4 Transmission electron microscopy |
| 免疫细胞分析 | 抗体克隆、流式细胞仪型号、数据分析软件 阅读提示:见Methods 2.8 Flow cytometry |
| 转录组和蛋白质组测序 | RNA提取试剂、测序平台、生物信息学分析流程 阅读提示:见Methods 2.9 Transcriptomic analysis、2.10 Proteomic analysis |