热应激通过线粒体呼吸链功能失调上调花生四烯酸以触发支持细胞自噬

Heat stress upregulates arachidonic acid to trigger autophagy in sertoli cells via dysfunctional mitochondrial respiratory chain function.

作者信息Yu Hu, Nan Jian Luo, Lu Gan, Hong Yan Xue, Ke Yan Luo, Jiao Jiao Zhang, Xian Zhong Wang
PMID38797842
发布时间2024-05-26
DOI10.1186/s12967-024-05182-y

实验完整度

包含体外细胞实验(原代猪支持细胞)、代谢组学、Western blot、免疫荧光、TEM、Seahorse等,但缺乏体内动物模型或患者样本验证。

主要模型

猪睾丸原代支持细胞(SCs) 热应激(44°C 1小时)处理的支持细胞

重点核对

花生四烯酸处理浓度:100 µM,处理时间6小时 ROS抑制剂NAC浓度:5 mM,处理时间6小时 线粒体ETC抑制剂鱼藤酮浓度:150 nM(预处理)或2 µM(用于Seahorse) 支持细胞培养温度:32°C(正常)与44°C(热应激)处理1小时

摘要

作为决定睾丸大小和精子数量的关键因素,支持细胞(SCs)在男性不育中起着至关重要的作用。热应激(HS)减少SCs数量,对生殖细胞的营养运输和供应产生负面影响,并导致人类和动物的精子发生失败。然而,HS如何影响SCs数量仍不清楚。我们假设SCs代谢的变化有助于HS的不利影响。在本研究中,我们首先通过LC-MS/MS代谢组学检测观察到HS暴露后花生四烯酸(AA),一种不饱和脂肪酸,上调。通过增加ROS水平、KEAP1和NRF2蛋白以及LC3和LAMP2的表达,100 µM AA通过激活氧化应激(OS)诱导SCs自噬。我们观察到AA在HS下对线粒体的不良影响,包括线粒体数量减少和线粒体膜电位(MMP)增加。我们还发现AA通过增加糖酵解通量和降低耗氧率以及线粒体电子传递链(ETC)蛋白复合物I、II、V的表达,改变了线粒体的氧转运和吸收功能。然而,用5 mM NAC(ROS抑制剂)和2 µM鱼藤酮(线粒体ETC抑制剂)预处理可逆转AA诱导的自噬。总之,AA通过破坏线粒体ETC功能在HS期间调节SCs自噬,推测AA的释放是一种开关样反应,并为高温导致男性不育的潜在机制提供了见解。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
热应激如何通过代谢变化影响支持细胞数量?花生四烯酸在热应激诱导的支持细胞自噬中发挥什么作用?
核心机制
热应激上调支持细胞中花生四烯酸,通过激活氧化应激(ROS/MDA/KEAP1-NRF2)损伤线粒体电子传递链功能,导致线粒体功能障碍,进而触发自噬;NAC或鱼藤酮预处理可逆转该过程。
主要证据
LC-MS/MS代谢组学显示热应激后AA显著上调;100 µM AA处理增加ROS和MDA水平、KEAP1/NRF2表达、LC3-II/LC3-I和LAMP2表达,降低P62;电子显微镜显示自噬体形成;AA导致线粒体数量减少、MMP升高、ETC蛋白(Complex I/II/V)表达增加、OCR降低和ECAR增加;NAC和鱼藤酮预处理逆转AA诱导的自噬。
研究意义
揭示热应激诱导支持细胞自噬的分子机制,提示AA释放可能是一种开关样反应,为高温导致男性不育的潜在机制提供见解,并暗示鱼藤酮可能作为预防AA诱导自噬的治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

代谢组学分析

检测热应激后支持细胞中代谢物的变化,以发现关键差异代谢物

使用LC-MS/MS对热应激和正常处理的支持细胞进行非靶向代谢组学分析,每组8个重复。通过PCA和层次聚类分析数据,并以VIP≥1、FC≥2或≤0.5、q≤0.01筛选差异代谢物。

2

细胞活力与毒性检测

确定AA及其抑制剂对支持细胞活力和毒性的影响,以选择合适处理浓度和时间

用不同浓度(10~100 µM)AA或其抑制剂AAY处理细胞,检测LDH释放和细胞活力(CCK-8)。根据结果选择100 µM AA或AAY处理6小时进行后续实验。

3

自噬检测

验证AA是否诱导支持细胞自噬

通过透射电镜观察自噬体,免疫荧光检测LC3和溶酶体分布,Western blot检测LC3、P62和LAMP2蛋白表达水平。

4

氧化应激检测

探究AA诱导自噬是否通过氧化应激途径

检测ROS和MDA水平,Western blot检测KEAP1和NRF2蛋白表达,Co-IP检测KEAP1与NRF2的相互作用。

5

线粒体结构与功能检测

评估AA对线粒体结构和功能的影响

透射电镜观察线粒体结构和自噬囊泡,检测线粒体D-loop含量作为线粒体丰度指标,JC-1染色检测线粒体膜电位(MMP)。

6

线粒体能量代谢检测

评估AA对线粒体电子传递链和糖酵解的影响

Western blot检测线粒体ETC复合物I-V蛋白表达,使用Seahorse XFe24分析仪测定OCR和ECAR。

7

干预实验

验证ROS和线粒体ETC在AA诱导自噬中的因果作用

用5 mM NAC(ROS抑制剂)或2 µM鱼藤酮(线粒体ETC复合物I抑制剂)预处理细胞,然后检测自噬相关蛋白表达和线粒体功能。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
花生四烯酸--HY-109590
枸橼酸乙胺嗪--HY-12642
N-乙酰半胱氨酸----
鱼藤酮----
抗全线粒体氧化磷酸化复合物抗体Thermo Fisher45-8099
KEAP1抗体CST8047
NRF2抗体CST12721
Lamin β1抗体Proteintech12987-1-AP
LC3抗体Proteintech18725-1-AP
P62/SQSTM1抗体Proteintech18420-1-AP
Alexa Fluor 488抗鼠/兔IgGElabscienceE-AB-1056
Alexa Fluor 594抗鼠/兔IgGElabscienceE-AB-1060
DMEM/Ham's F12培养基Gibco11559716
青霉素-链霉素溶液SolarbioP1400
胎牛血清Gibco10099-141
谷氨酰胺Gibco25030081
ACQUITY UPLC BEH Amide色谱柱Waters--
TripleTOF5600plus质谱仪SCIEX--
CCK-8试剂盒BeyotimeC0037
LDH试剂盒NJJCBIOA020-2-2
酶标仪Bio-Rad--
脂质过氧化(MDA)检测试剂盒Abcamab118970
ROS检测试剂InvitrogenD399
BCA蛋白检测试剂盒BiogroundBG0020
细胞裂解缓冲液Thermo Fisher89900
PVDF膜Roche3010040001
SuperSignal® West Pico化学发光底物MilliporeWBKlS0100
化学发光成像仪Bio-Rad--
Image Lab软件Bio-Rad--
DAPI----
奥林巴斯成像显微镜Olympus--
Haptic H-7100透射电子显微镜Hitachi--
Seahorse XF细胞分析仪AgilentXFe24
JC-1染料Cayman701560

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
支持细胞分离、培养条件(32°C,5% CO2)、培养基成分、细胞密度等。
阅读提示:见Methods 'Primary SCs culture'
热应激处理
热应激温度(44°C)和时间(1小时)。
阅读提示:见Methods 'Primary SCs culture'
AA处理
AA浓度(100 µM)和处理时间(6小时)。
阅读提示:见Methods 'Chemical reagents and antibodies' 和 'Primary SCs culture'
ROS检测
ROS探针(H2DCFDA)浓度(25 µM)、孵育时间(30分钟)、激发/发射波长。
阅读提示:见Methods 'Detection of MDA and ROS'
线粒体功能检测
Seahorse分析中OCR和ECAR测量条件、线粒体分离方法、抑制剂浓度等。
阅读提示:见Methods 'Mitochondrial energy metabolism and mitochondrial membrane potential (MMP) detections'