建立Dox诱导心脏毒性小鼠模型及TAX干预
评估TAX对Dox诱导的心脏损伤和功能障碍的保护作用。
C57BL/6小鼠随机分为四组:Control、TAX、Dox、TAX+Dox。TAX组及TAX+Dox组小鼠每天灌胃给予TAX 20 mg/kg/d,持续2周;Dox组及TAX+Dox组在首次给予TAX或盐水一周后,腹腔注射Dox 10 mg/kg一次。通过超声心动图、血清生化分析、HE染色等方法评估心脏功能和组织病理。
Taxifolin protects against doxorubicin-induced cardiotoxicity and ferroptosis by adjusting microRNA-200a-mediated Nrf2 signaling pathway.
研究包含体内小鼠模型和体外H9c2细胞两个独立证据层级,并通过Nrf2 siRNA和miR-200a抑制剂进行机制验证,明确了TAX通过miR-200a-Keap1-Nrf2通路抑制铁死亡。
C57BL/6小鼠Dox诱导心脏毒性模型 H9c2大鼠心肌细胞系
TAX给药剂量20 mg/kg/d,灌胃,持续2周;Dox单次腹腔注射10 mg/kg H9c2细胞处理:10 μM TAX预处理12 h,再与1 μM Dox共处理24 h 体内实验每组10只小鼠,分为Control、TAX、Dox、TAX+Dox四组 使用Nrf2 siRNA和miR-200a抑制剂验证TAX作用的机制依赖性 检测指标包括LVEF、LVFS、LDH、CK-MB、cTnI、Fe2+、MDA、GSH、SOD、PTGS2、GPX4、Nrf2、HO-1、NQO1、Keap1 mRNA等
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估TAX对Dox诱导的心脏损伤和功能障碍的保护作用。
C57BL/6小鼠随机分为四组:Control、TAX、Dox、TAX+Dox。TAX组及TAX+Dox组小鼠每天灌胃给予TAX 20 mg/kg/d,持续2周;Dox组及TAX+Dox组在首次给予TAX或盐水一周后,腹腔注射Dox 10 mg/kg一次。通过超声心动图、血清生化分析、HE染色等方法评估心脏功能和组织病理。
验证TAX对Dox诱导的铁死亡和氧化应激的抑制作用。
检测心脏组织中Fe2+, MDA, GSH, SOD水平,DHE染色评估氧化应激,Western blot检测PTGS2和GPX4蛋白表达。
在H9c2细胞中验证TAX对Dox诱导的心脏毒性和铁死亡的抑制作用。
H9c2细胞预处理10 μM TAX 12小时,再与1 μM Dox共处理24小时。通过CCK-8检测细胞活力、LDH释放、Fe2+, MDA, GSH, SOD水平、ROS/DHE染色、Western blot检测PTGS2和GPX4表达。
验证TAX对Nrf2及其下游蛋白HO-1和NQO1表达的影响。
通过Western blot检测体内心脏组织和体外H9c2细胞中Nrf2、HO-1和NQO1的蛋白表达,并通过免疫荧光染色观察Nrf2在细胞中的表达。
验证TAX的保护作用依赖于Nrf2信号通路。
在H9c2细胞中转染Nrf2 siRNA后,检测Nrf2、HO-1、NQO1表达,并检测LDH、Fe2+, MDA, GSH, SOD水平以及PTGS2和GPX4表达。
验证TAX通过miR-200a调节Nrf2信号通路并抑制铁死亡。
使用miR-200a抑制剂转染H9c2细胞,检测Keap1 mRNA表达、Nrf2蛋白及下游HO-1和NQO1表达,并检测LDH、Fe2+, MDA, GSH, SOD水平以及PTGS2和GPX4表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物模型给药 | 花旗松素 | MCE | -- |
| 多柔比星 | Sigma-Aldrich | D1515 | |
| 生化分析 | 乳酸脱氢酶检测试剂盒 | 南京建成 | A020-2-2 |
| 肌酸激酶同工酶MB检测试剂盒 | 南京建成 | E006-1-1 | |
| 丙氨酸氨基转移酶检测试剂盒 | 南京建成 | C009-2-1 | |
| 天冬氨酸氨基转移酶检测试剂盒 | 南京建成 | C010-2-1 | |
| 血尿素氮检测试剂盒 | 南京建成 | C013-2-1 | |
| 丙二醛检测试剂盒 | 南京建成 | A003-2-1 | |
| 还原型谷胱甘肽检测试剂盒 | 南京建成 | A006-2-1 | |
| 超氧化物歧化酶检测试剂盒 | 南京建成 | A001-2-2 | |
| 心肌肌钙蛋白I ELISA试剂盒 | 伊莱瑞特 | E-ELM0086c | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 细胞活力检测 | 细胞计数试剂盒-8 | -- | -- |
| 铁离子检测 | 铁离子检测试剂盒 | Abcam | ab83366 |
| 氧化应激检测 | ROS/DHE荧光探针 | 碧云天 | -- |
| 细胞免疫荧光 | Triton X-100 | -- | -- |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| DAPI | -- | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Invitrogen | -- |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| ReverTra Ace QPCR逆转录试剂盒 | Toyobo | -- | |
| IQ SYBR Green Supermix | BioRad | -- | |
| miRNA检测 | Bulge-Loop miRNA qRT-PCR Starter Kit | Ribobio Technology | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | 碧云天 | P0012 |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | ISEQ85R |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG | Biosharp | bl003a | |
| GPX4抗体 | ABclonal | A11243 | |
| PTGS2抗体 | ABclonal | A1253 | |
| P62抗体 | CST | 23214 | |
| Nrf2抗体 | CST | 12721 | |
| NQO1抗体 | Proteintech | 11451-1-AP | |
| HO-1抗体 | Proteintech | 10701-1-AP | |
| β-actin抗体 | ABclonal | AC026 | |
| 组织病理学 | 福尔马林 | -- | -- |
| 石蜡 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立与给药 | 小鼠品系、性别、周龄、体重;TAX给药剂量、途径、频率、持续时间;Dox给药剂量、途径、时间点;分组设置及每组动物数;麻醉和处死方式。 阅读提示:Methods 2.1 Animals 和 2.2 Experimental design |
| 超声心动图检测 | 麻醉方式及麻醉剂浓度;超声仪器型号;M-mode采集方法;测量参数(LVEF、LVFS)及操作者盲法。 阅读提示:Methods 2.3 Echocardiography |
| 血清生化检测 | 血清收集时间点;检测试剂盒品牌、货号;各指标的具体操作步骤。 阅读提示:Methods 2.4 Biochemical analysis |
| 组织病理学 | 心脏取材、固定、包埋、切片厚度;HE染色步骤;显微镜观察放大倍数及视野选择。 阅读提示:Methods 2.5 Histopathologic assay |
| 细胞培养与药物处理 | H9c2细胞来源及培养条件;TAX和Dox处理浓度、时间;细胞接种密度。 阅读提示:Methods 2.6 Cell culture |
| 铁死亡相关检测 | Fe2+, MDA, GSH, SOD检测试剂盒及步骤;DHE染色浓度、孵育时间及观察条件。 阅读提示:Methods 2.8 Iron assay 和 2.9 ROS/DHE staining assay |
| Western blot | 蛋白提取、定量方法;SDS-PAGE上样量;一抗、二抗稀释比例及孵育条件;显色和成像系统。 阅读提示:Methods 2.14 Western blotting analysis |
| 基因沉默与miRNA抑制剂实验 | siRNA和miRNA抑制剂序列、转染试剂、转染时间、转染后培养时间;敲低或抑制效率验证。 阅读提示:Methods 2.11 Transient transfection of siRNA 和 2.13 Inhibitor-miR transfection |