组蛋白甲基转移酶EHMT1对CHOP表达的表观遗传沉默调控结直肠癌细胞凋亡

Epigenetic Silencing of CHOP Expression by the Histone Methyltransferase EHMT1 Regulates Apoptosis in Colorectal Cancer Cells.

作者信息Kwangho Kim, Tae Young Ryu, Jinkwon Lee, Mi-Young Son, Dae-Soo Kim, Sang Kyum Kim, Hyun-Soo Cho
PMID35748228
期刊Mol Cells
发布时间2022-09-30
DOI10.14348/molcells.2022.0014

实验完整度

文献包含TCGA数据分析、细胞系siRNA敲低、功能实验(细胞活力、凋亡检测)、RNA-seq及GO分析、ChIP实验以及回复实验,多个独立证据层级验证了机制。

主要模型

HCT116细胞系 HT-29细胞系 TCGA结直肠癌样本及正常样本

重点核对

EHMT1在CRC组织中的表达水平(TCGA数据) siRNA敲低效率(siEHMT1 vs siCont)及处理浓度(100 nM)和时间(48 h) CHOP启动子区域H3K9me2修饰水平(ChIP实验) siEHMT1和siCHOP共转染后凋亡表型恢复(回复实验) 细胞活力、凋亡和蛋白表达的检测方法(CCK-8、FACS、Western blot)

摘要

结直肠癌(CRC)在全球癌症中具有高死亡率。为了降低这种死亡率,化疗(5-氟尿嘧啶、奥沙利铂和伊立替康)或靶向治疗(贝伐珠单抗、西妥昔单抗和帕尼单抗)已被用于治疗CRC。然而,由于各种副作用和对CRC治疗反应不佳,需要开发新的治疗靶点。在本研究中,我们利用来自TCGA的RNA测序(RNA-seq)数据鉴定了CRC中EHMT1的过表达,并观察到敲低EHMT1表达通过诱导CRC细胞系中的细胞凋亡来抑制细胞生长。在使用RNA-seq数据的基因本体论(GO)术语分析中,EHMT1敲低后凋亡相关术语富集。此外,我们使用抗组蛋白H3赖氨酸9二甲基化(H3K9me2)抗体的ChIP(染色质免疫沉淀)实验鉴定了CHOP基因是EHMT1的直接靶标。最后,在siEHMT1和siCHOP共转染后,我们再次证实了CHOP介导的细胞凋亡是由EHMT1敲低诱导的。我们的发现表明EHMT1在调节CRC细胞凋亡中发挥关键作用,提示EHMT1可能成为开发癌症抑制剂的治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
EHMT1在结直肠癌中的表达及其在细胞凋亡调控中的作用机制是什么?
核心机制
EHMT1通过催化CHOP启动子区域H3K9me2修饰,表观遗传沉默CHOP表达,从而抑制细胞凋亡;敲低EHMT1可上调CHOP,诱导凋亡。
主要证据
TCGA数据分析显示EHMT1过表达;siRNA敲低EHMT1后,细胞活力下降、凋亡增加;RNA-seq和GO分析显示凋亡相关通路富集;ChIP实验证实CHOP启动子H3K9me2水平降低;siEHMT1和siCHOP共转染回复了凋亡表型。
研究意义
EHMT1可能成为结直肠癌治疗药物开发的潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

EHMT1表达分析及功能初步验证

评估EHMT1在结直肠癌中的表达水平,并确定其敲低对细胞生长的影响。

利用TCGA RNA-seq数据比较CRC样本与正常样本的EHMT1表达;在HCT116和HT-29细胞中分别转染siEHMT1和siCont,通过qRT-PCR确认敲低效率,并通过结晶紫染色和CCK-8实验检测细胞活力。

2

细胞凋亡检测

验证EHMT1敲低是否通过诱导细胞凋亡抑制细胞生长。

通过Western blot分析凋亡标志物PARP的剪切,以及通过FACS分析Annexin V染色和Caspase-3/7活性。

3

转录组分析及靶基因筛选

鉴定EHMT1敲低后的差异表达基因,并筛选可能与凋亡相关的直接靶标。

对siEHMT1处理的HCT116细胞进行RNA-seq,鉴定差异表达基因(DEGs),并通过GO分析富集凋亡相关通路;从上调基因中筛选CHOP等候选基因。

4

直接靶标验证

验证EHMT1是否通过H3K9me2直接调控CHOP基因表达。

通过qRT-PCR和Western blot验证EHMT1敲低后CHOP的表达变化;使用抗H3K9me2抗体进行ChIP实验,检测CHOP启动子区域的H3K9me2水平。

5

回复实验验证机制

确认EHMT1敲低诱导的细胞凋亡依赖于CHOP的表达。

在HCT116细胞中同时转染siEHMT1和siCHOP,通过qRT-PCR确认敲低效率,通过结晶紫染色、CCK-8、Western blot(PARP剪切)和FACS(Caspase-3/7)检测凋亡表型。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
青霉素/链霉素----
RNAiMax转染试剂Invitrogen--
小干扰RNABioneer--
细胞计数试剂盒-8ElabscienceE-CK-A361
Muse Annexin V和死细胞检测试剂盒LuminexMCH100105
Muse Caspase-3/7试剂盒LuminexMCH100108
Caspase 3/7试剂Merck--
Caspase 7-AADMerck--
Muse细胞分析仪Merck--
RNeasy Mini试剂盒Qiagen--
PrimeScript RT预混液TakaraRR036A
Brilliant III Ultra-Fast SYBR Green QPCR预混液Agilent Technologies--
AriaMx实时荧光定量PCR系统Agilent Technologies--
牛血清白蛋白Thermo Fisher Scientific23208
硝酸纤维素膜Bio-Rad1620145
预制胶Bio-Rad456-1095
兔抗EHMT1抗体Bethyl LaboratoriesA301-642A
小鼠抗CHOP抗体Cell Signaling Technology2895
兔抗PARP抗体Cell Signaling Technology9542
小鼠抗ACTB抗体Santa Cruz BiotechnologySC-47778
二抗(兔)Santa Cruz BiotechnologySC-2357
二抗(小鼠)Santa Cruz BiotechnologySC-516102
ECL发光液Bio-Rad170-5060
Simple ChIP Plus超声染色质IP试剂盒Cell Signaling Technology56383S
甲醛Sigma-Aldrich--
Bioruptor Pico超声破碎仪DiagenodeB01060010
抗H3K9me2抗体Abcamab1220
TruSeq RNA样品制备试剂盒V2----
Illumina HiSeq 2500测序仪Illumina--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源(HCT116, HT-29)及培养条件(RPMI-1640, 10% FBS, 1%青霉素/链霉素, 5% CO2, 37°C)
阅读提示:Materials and Methods: Cell culture and reagents
siRNA转染
siRNA序列、浓度(100 nM)、转染试剂(RNAiMax)及转染时间(48小时)
阅读提示:Materials and Methods: siRNA transfection
细胞活力检测
CCK-8试剂盒货号(E-CK-A361)、细胞接种密度(2×10^5/孔)、孵育时间(2或5分钟)及检测波长(450 nm)
阅读提示:Materials and Methods: Cell viability assay
细胞凋亡检测
Annexin V和Caspase-3/7试剂盒货号(MCH100105, MCH100108)、孵育时间(20分钟或30分钟)、分析细胞数量(~5×10^4)
阅读提示:Materials and Methods: FACS analysis
ChIP实验
ChIP试剂盒货号(#56383S)、甲醛交联时间(10分钟)、超声条件(15个循环,30秒开/30秒关)、抗体(anti-H3K9me2, ab1220)、CHOP引物(P1, P2, P3)
阅读提示:Materials and Methods: Chromatin immunoprecipitation (ChIP) assay
RNA-seq与数据分析
测序平台(Illumina HiSeq 2500)、读长(2×100)、DEG筛选标准(fold change > 2)、GO分析工具(DAVID, ClueGO)
阅读提示:Materials and Methods: RNA-seq and analysis