制备并表征Cig/(TA-Cu) scaffold
验证Cig/(TA-Cu) scaffold是否具有各向异性结构、导电性和类似心肌的力学性能
将废弃香烟过滤嘴经乙醇、丙酮清洗,水合肼处理获得CF,再灌注壳聚糖、NaOH处理获得Cig,再经TA和CuCl2修饰获得Cig/TA和Cig/(TA-Cu);通过SEM、AFM、EDS、XPS、FTIR表征结构;通过压缩测试和电化学工作站测定力学和电学性能。
A cigarette filter-derived biomimetic cardiac niche for myocardial infarction repair.
包含体外细胞实验(CMs/H9C2/HUVECs)和体内大鼠MI模型,并涵盖功能验证(心肌电整合、心功能)及机制验证(ROS清除、凋亡、血管新生)。
新生大鼠原代心肌细胞 H9C2细胞 人脐静脉内皮细胞 大鼠心肌梗死模型(SD大鼠)
CPs厚度600 μm纵向切片 CMs接种密度及培养时间(3天、7天,钙瞬变5天) H2O2诱导氧化应激浓度600 μM及共培养时间4 h 动物模型:7-8周龄雄性SD大鼠,LAD结扎,CPs植入时间点3天和28天 样本量:体外n=3-8,体内n=4-6
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证Cig/(TA-Cu) scaffold是否具有各向异性结构、导电性和类似心肌的力学性能
将废弃香烟过滤嘴经乙醇、丙酮清洗,水合肼处理获得CF,再灌注壳聚糖、NaOH处理获得Cig,再经TA和CuCl2修饰获得Cig/TA和Cig/(TA-Cu);通过SEM、AFM、EDS、XPS、FTIR表征结构;通过压缩测试和电化学工作站测定力学和电学性能。
验证Cig/(TA-Cu) scaffold是否能促进CMs的粘附、伸长、取向、成熟和功能化
将新生大鼠CMs接种于不同scaffold上,培养至7天进行Live/Dead染色、CCK-8、SEM、F-actin染色、免疫荧光(α-actinin、CX43)和钙瞬变分析(5天)。
验证Cig/(TA-Cu) scaffold是否能清除ROS和促进血管生成
通过DPPH、NBT、H2O2/Ti(SO4)2和Fe2+/H2O2/SA反应体系测定自由基清除能力;利用H2O2诱导的H9C2细胞氧化应激模型评价细胞内ROS;通过HUVECs的Live/Dead、CCK-8、划痕迁移和成管实验评价促血管生成。
验证Cig/(TA-Cu) CP植入梗死心肌后能否清除ROS和减少心肌细胞凋亡
建立大鼠MI模型,将负载CMs的不同CPs植入梗死区域,3天后检测血清cTnT、心脏组织ROS(DCFH-DA/DHE)、SOD/GSH/MDA水平,并进行TUNEL和α-actinin免疫荧光染色。
验证Cig/(TA-Cu) CP是否能促进心肌电整合并改善心脏功能
28天后通过心外膜激活标测评估电传导速度和电位振幅,超声心动图评价心功能,Masson染色评估梗死面积和室壁厚度,免疫荧光检测α-actinin、CX43、血管密度(vWF/α-SMA)和巨噬细胞亚型(CD86/CD206)。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 材料制备 | 乙醇 | Macklin | -- |
| 壳聚糖 | Macklin | -- | |
| 单宁酸 | Macklin | -- | |
| 1,1-二苯基-2-苦肼基 | Macklin | -- | |
| 硫酸钛 | Macklin | -- | |
| 硫酸亚铁 | Macklin | -- | |
| 水杨酸 | Macklin | -- | |
| 过氧化氢 | Macklin | -- | |
| NBT试剂盒 | Zeye Biotech. | -- | |
| 细胞活性检测 | 细胞计数试剂盒-8 | Dojindo | -- |
| 细胞染色 | 活死细胞染色试剂盒 | Invitrogen | -- |
| 免疫荧光 | Alexa Fluor 568标记驴抗兔IgG | Invitrogen | A10042 |
| Alexa Fluor 488标记驴抗小鼠IgG | Invitrogen | A21202 | |
| 细胞骨架染色 | Cell Navigator F-肌动蛋白标记试剂盒 | AAT Bioques | -- |
| 钙瞬变检测 | Fluo-4 AM试剂 | AAT Bioques | -- |
| 免疫荧光 | 小麦胚芽凝集素 | AAT Bioques | -- |
| 抗肌节α-肌动蛋白抗体 | Abcam | ab9465 | |
| 抗心肌肌钙蛋白T抗体 | Abcam | ab10214 | |
| 抗CD206抗体 | Abcam | ab64693 | |
| 抗CD86抗体 | Abcam | ab220188 | |
| 抗α-平滑肌肌动蛋白抗体 | Boster Biological Technology | BM0002 | |
| 抗血管性血友病因子抗体 | Boster Biological Technology | PB9273-boster | |
| 抗连接蛋白43抗体 | Elabscience | E-AB-70097 | |
| 细胞ROS检测 | 2',7'-二氯荧光素二乙酸酯 | Solarbio | -- |
| 氧化应激检测 | 超氧化物歧化酶检测试剂盒 | Solarbio | -- |
| 丙二醛检测试剂盒 | Solarbio | -- | |
| ROS检测 | 二氢乙啶 | Beyotime | -- |
| 凋亡检测 | TUNEL检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 氧化应激检测 | 微量还原型谷胱甘肽检测试剂盒 | ACMEC | -- |
| 细胞培养 | 胰蛋白酶 | Sigma | -- |
| II型胶原酶 | Sigma | -- | |
| DMEM培养基 | GIBCO | -- | |
| 胎牛血清 | Excell Bio | -- | |
| 青霉素/链霉素 | -- | -- | |
| 细胞通透 | Triton X-100 | -- | -- |
| 封闭 | 牛血清白蛋白 | -- | -- |
| 细胞染色 | 4',6-二脒基-2-苯基吲哚 | -- | -- |
| 细胞骨架染色 | 异硫氰酸荧光素标记的鬼笔环肽 | -- | 40734ES75 |
| 钙瞬变检测 | 普朗尼克F127 | -- | -- |
| 细胞核染色 | Hoechst染料 | Solarbio Biotech. | #33342 |
| 成管实验 | 基质胶 | Corning | -- |
| ELISA | 大鼠cTnT ELISA试剂盒 | MEIMIAN | -- |
| ROS检测 | 组织ROS检测试剂盒(DHE) | BestBio | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Fude biotech. | -- |
| 材料切割 | Leica CM1950冷冻切片机 | Leica | CM1950 |
| 显微观察 | 扫描电子显微镜(H-7650,日立,日本) | Hitachi | H-7650 |
| 表面形貌分析 | 原子力显微镜(Bruker Dimension Icon,德国) | Bruker | Dimension Icon |
| 元素分析 | 扫描电镜-能谱仪(S-3000 N,日立,日本) | Hitachi | S-3000 N |
| X射线光电子能谱(Thermo Scientific K-Alpha,美国) | Thermo Scientific | K-Alpha | |
| 化学结构分析 | 傅里叶变换红外光谱仪(Nicolet iS10,Thermo Scientific) | Thermo Scientific | iS10 |
| 电学测量 | 电化学工作站(CorrTest Instruments,中国) | CorrTest Instruments | -- |
| 压电测量 | 可编程静电计(Keithley DMM7510) | Keithley | DMM7510 |
| 流式分析 | CytoFLEX流式平台(Beckman Coulter) | Beckman Coulter | -- |
| 荧光显微 | 激光共聚焦显微镜(Nikon A1,日本) | Nikon | A1 |
| 荧光显微镜(Olympus,BX53,日本) | Olympus | BX53 | |
| 光学显微 | 光学显微镜(Nikon,ECL TPSE Ts2R) | Nikon | ECL TPSE Ts2R |
| 紫外可见光谱 | 紫外可见分光光度计(Evolution 300,Thermo Scientific) | Thermo Scientific | Evolution 300 |
| 酶标仪 | 酶标仪(SYNERGY H,BioTek) | BioTek | SYNERGY H |
| 超声心动图 | 超声成像仪(Vevo2100,Visual Sonics,美国) | Visual Sonics | Vevo2100 |
| 心电标测 | 64通道电极阵列标测系统(MappingLab,牛津郡,英国) | MappingLab | -- |
| 图像分析 | ImageJ软件 | -- | -- |
| 数据分析 | MATLAB软件 | -- | -- |
| GraphPad Prism 8 | -- | -- | |
| Origin 2018 | -- | -- | |
| 电生理分析 | EMapScope软件 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 材料制备 | 废弃香烟过滤嘴的来源和处理顺序;水合肼处理时间(10 h);壳聚糖浓度(2 wt%)、NaOH处理时间(4 h);TA溶液浓度(2 mg/mL,pH=8.5,处理10 min);CuCl2浓度(0.2 mg/mL),pH调节至8.5 阅读提示:详见2.2节 Preparation of the scaffolds |
| 细胞培养 | 新生大鼠CMs分离方法(0.25%胰蛋白酶和0.1% II型胶原酶消化,预培养2 h去除成纤维细胞);培养基组成为DMEM+15% FBS+1%青霉素/链霉素;培养时间(3天、7天) 阅读提示:详见2.4节 Biocompatibility of CMs on cigarette filter-derived scaffolds |
| 体外抗氧化实验 | DPPH、NBT、H2O2、•OH清除实验的具体条件(如scaffold质量100 mg,DPPH浓度100 μM,孵育1.5 h;NBT光照20 min;H2O2 1 mM,孵育30 min;•OH体系FeSO4 2 mM和H2O2 5 mM,孵育30 min);细胞氧化应激模型(H9C2细胞,H2O2浓度600 μM,共培养4 h) 阅读提示:详见2.9节和2.10节 |
| 动物实验 | 动物品系、年龄(7-8周龄)和体重(230±10 g);分组(Sham、MI、CMs、Cig CP、Cig/TA CP、Cig/(TA-Cu) CP);LAD结扎位置(左心耳下1-2 mm);CPs植入方式(心外膜固定);术后检测时间点(3天、28天) 阅读提示:详见2.12节 Establishment of MI model and implantation of cigarette filter-derived CPs |
| 心肌电整合评估 | 心外膜标测所用刺激参数(4 V,5 Hz);记录时间点(28天) 阅读提示:详见2.15节 Epicardial activation mapping |