HucMSC的分离、培养与鉴定
获取并验证用于产生EVs的人脐带间充质干细胞。
从健康女性的脐带血中分离单个核细胞,贴壁培养,并通过流式细胞术检测表面标志物(CD29、CD90阳性,CD34、CD45阴性),以及成骨和成脂分化能力进行鉴定。
Effects of Extracellular Vesicles Derived from Human Umbilical Cord Blood Mesenchymal Stem Cells on Cell Immunity in Nonobese Mice.
包含体外细胞培养与EVs表征、体内动物模型治疗及多维度检测(流式、qRT-PCR、WB、ELISA、组织学),并涉及功能验证和机制探讨(Th1/Th2转录因子)。
NOD/Ltj雌性小鼠(T1D模型) 人脐带间充质干细胞(HucMSC) HucMSC来源的细胞外囊泡(HucMSC-EVs)
HucMSC-EVs给药剂量:2 mg/kg,尾静脉注射,每周两次,持续8周 对照组:等体积PBS(200 μl) 小鼠周龄和性别:4周龄雌性NOD小鼠 样本采集和检测:8周后检测血糖、体重、胰岛素、炎症因子、T细胞亚群、转录因子和胰岛病理 统计方法:非配对双尾t检验或Mann-Whitney检验,p<0.05
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证用于产生EVs的人脐带间充质干细胞。
从健康女性的脐带血中分离单个核细胞,贴壁培养,并通过流式细胞术检测表面标志物(CD29、CD90阳性,CD34、CD45阴性),以及成骨和成脂分化能力进行鉴定。
获得并验证细胞外囊泡的纯度和特性。
使用Ribo™ EVs Isolation Reagent分离EVs,并通过透射电子显微镜、纳米颗粒追踪分析(NTA)和Western blot检测EVs标记物(CD9、CD63、CD81阳性,calnexin阴性)进行表征。
评估HucMSC-EVs对T1D模型小鼠的疗效。
将NOD小鼠随机分为对照组和HucMSC-EVs组,通过尾静脉注射HucMSC-EVs或PBS,每周两次,持续8周。
评估HucMSC-EVs治疗对糖尿病相关指标的影响。
每周测量小鼠血糖和体重,治疗结束后通过ELISA检测血清胰岛素水平。
评估HucMSC-EVs对胰岛炎症和Fas/FasL表达的影响。
通过H&E染色观察胰岛炎症细胞浸润,通过IHC染色检测Fas/FasL表达和分布。
评估HucMSC-EVs对全身炎症因子水平的影响。
通过ELISA检测血清中IL-2、IL-4、IL-10、IL-1β和IFN-γ的水平。
评估HucMSC-EVs对T细胞免疫的影响。
通过流式细胞术检测CD4+ T细胞比例,以及IFN-γ(Th1标志)和IL-4(Th2标志)阳性细胞比例。
评估HucMSC-EVs对T-bet/GATA-3以及炎症细胞因子表达的影响。
通过qRT-PCR和Western blot检测脾脏中T-bet、GATA-3、IL-2、IL-4、IL-10和IFN-γ的mRNA和蛋白表达水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 胰蛋白酶 | Gibco | -- | |
| 青霉素-链霉素双抗 | Gibco | 1902417 | |
| EVs分离 | Ribo™细胞外囊泡分离试剂 | RIBOBIO | C10130-1 |
| 蛋白质印迹 | Tris-HCl缓冲盐-Tween溶液 | -- | -- |
| RIPA裂解液 | -- | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- | |
| 流式细胞术 | FlowJo软件 | TreeStar | -- |
| 组织病理 | 伊红 | Sigma | 230251 |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Elabscience | -- |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Lifetech | 15596026 |
| LightCycler 96实时荧光定量PCR仪 | Roche | -- | |
| 蛋白质印迹 | PVDF膜 | -- | -- |
| ChemiDoc Touch成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| 抗CD9抗体 | Abcam | ab92726 | |
| 抗CD63抗体 | Abcam | ab134045 | |
| 抗CD81抗体 | Abcam | ab109201 | |
| 抗Calnexin抗体 | Abcam | ab13503 | |
| 流式细胞术 | CD3-FITC抗体 | Invitrogen | MA1-80640 |
| CD3-PC5抗体 | Biolegend | 100218 | |
| CD4-PE抗体 | eBioscience | MCD0404 | |
| 干扰素-γ抗体 | Invitrogen | 11-7311-41 | |
| 白细胞介素-4抗体 | Invitrogen | 11-7042-82 | |
| 免疫组织化学 | Fas抗体 | Abcam | ab82419 |
| FasL抗体 | Abcam | ab15285 | |
| 蛋白质印迹 | T-bet抗体 | Abcam | ab91109 |
| GATA-3抗体 | Abcam | ab214804 | |
| IL-2抗体 | Abcam | ab231441 | |
| IL-4抗体 | Abcam | ab11524 | |
| IFN-γ抗体 | Invitrogen | AMC4739 | |
| IL-10抗体 | Abcam | ab189392 | |
| 二抗 | CST | 7074 | |
| β-actin抗体 | Zhongshan Company | TA-09 | |
| 组织病理 | Leica EG1160自动脱水机 | Leica | -- |
| Pannoramic MIDI数字切片扫描仪 | 3D HISTECH | -- | |
| ELISA | 酶标仪 | Molecular Devices | SPECTCA MAX190 |
| 流式细胞术 | CyFlow Space流式细胞仪 | Partec | -- |
| EVs表征 | 透射电子显微镜 | HITACHI | HT7700 |
| 纳米颗粒追踪分析仪 | Particle Metrix | ZetaView PMX-120-12F-R5 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | NOD/Ltj雌性小鼠,3-4周龄,来源(Gempharmatech),饲养条件(12/12小时光暗循环,23-25°C,50-60%湿度)。 阅读提示:Methods 2.2 Experimental Animals |
| 治疗干预 | HucMSC-EVs剂量(2 mg/kg),给药方式(尾静脉注射),频率(每周两次,持续8周),对照组(PBS 200 μl)。 阅读提示:Methods 2.3.1 Animal Grouping |
| 样本采集 | 血液采集方式(眼球摘除),血清分离(室温凝固2小时,1000g离心15分钟),脾脏和胰腺组织采集时间点(8周后)。 阅读提示:Methods 2.3.1 Animal Grouping |
| 流式细胞术 | 使用的抗体克隆号及稀释度,细胞准备和染色条件(室温30分钟),仪器型号和分析软件。 阅读提示:Methods 2.6 Flow Cytometry |
| ELISA | 试剂盒品牌(Elabscience),检测项目(胰岛素、IL-2、IL-4、IL-10、IL-1β、IFN-γ),每个样品重复次数(三次),微板读器型号。 阅读提示:Methods 2.8 Enzyme-Linked immunosorbent Assay |
| qRT-PCR | 引物序列,反应体系(20 μl),循环条件(40个循环:95°C 10min变性,95°C 15s退火,60°C 30s延伸),仪器(LightCycler 96),内参基因(β-actin)及数据分析方法(2-ΔΔCT)。 阅读提示:Methods 2.9 Quantitative Real-Time PCR |
| Western blot | 蛋白上样量(20 µg),SDS-PAGE浓度(12%),一抗及稀释度,二抗及稀释度,曝光设备(ChemiDoc Touch),内参(β-actin),重复次数(两次)。 阅读提示:Methods 2.10 Western Blotting |
| 统计方法 | 统计检验(非配对双尾t检验或Mann-Whitney)、显著性水平(p<0.05)、数据表示(均值±标准误)及软件(GraphPad Prism 6.0)。 阅读提示:Methods 2.11 Statistical Analysis |