NSC-666719的分子编辑发现苯并二噻嗪二氧化物-胍类抗癌药物

Molecular editing of NSC-666719 enabling discovery of benzodithiazinedioxide-guanidines as anticancer agents.

作者信息Vajja Krishna Rao, Subarno Paul, Mitchell Gulkis, Zhihang Shen, Haritha Nair, Amandeep Singh, Chenglong Li, Arun K Sharma, Melike Çağlayan, Chinmay Das, Biswajit Das, Chanakya N Kundu, Satya Narayan, Sankar K Guchhait
PMID38516586
发布时间2024-01-30
DOI10.1039/d3md00648d

实验完整度

包含化学合成、体外酶活性测定、细胞增殖与凋亡实验、体内BER实验及SPR结合实验等多个独立证据层级,并进行了功能与机制验证。

主要模型

MCF-7人乳腺癌细胞 MDA-MB-231人乳腺癌细胞 HCT-116人结肠癌细胞 SCC-9人口腔鳞癌细胞 HEK-293人胚肾细胞

重点核对

化合物10e和10q的浓度(0.5-2.0 μM)处理MCF-7细胞48小时 MTT实验中使用的细胞系来源(ATCC)及接种密度(5000-6000细胞/孔) Polβ核苷酸插入实验的反应条件(50 mM Tris-HCl pH 7.5, 100 mM KCl, 10 mM MgCl2等)及化合物浓度(0-5 μM) 体内BER实验中U-p21p和R-p21p质粒转染浓度及处理时间(48小时) SPR实验中Polβ固定化方法和化合物浓度梯度

摘要

DNA聚合酶β(Polβ)对于DNA损伤修复的碱基切除修复(BER)途径至关重要,是抑制肿瘤发生以及癌症化疗干预的有吸引力的靶点。在本研究中,研究了一种基于骨架跃迁的生物活性剂NSC-666719的分子编辑独特策略,从而开发出具有Polβ抑制活性的新分子模体。制备了NSC化合物及其类似物(两个系列),重点关注基于药效团的分子多样性。大多数化合物表现出比母体NSC-666719更高的活性,并显示出对细胞凋亡的影响。在体外重建系统和体内完整细胞系统中评估了Polβ的抑制活性。化合物10e表现出显著的Polβ相互作用和抑制特性,包括直接、非共价、可逆以及相当的结合亲和力。所研究的方法是有用的,所发现的新型类似物具有发展为抗癌治疗药物的巨大潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
通过骨架跃迁策略对NSC-666719进行分子编辑,能否开发出具有更强Polβ抑制活性和抗癌潜力的新型类似物?
核心机制
化合物10e通过直接、非共价、可逆地结合Polβ,抑制其核苷酸转移酶活性,从而阻断BER通路,导致DNA损伤积累,诱导细胞凋亡。
主要证据
体外Polβ核苷酸插入实验显示10e以剂量依赖方式抑制Polβ介导的dGTP:C插入;体内BER实验显示10e抑制SP-BER和LP-BER活性;SPR实验显示10e与Polβ直接结合(KD=20.11±4.412 μM);细胞实验显示10e增加γH2AX和caspase-3表达,诱导凋亡。
研究意义
本研究表明,基于药效团的分子编辑策略可发现新型Polβ抑制剂,化合物10e作为有前景的先导化合物,值得进一步的临床前评估和结构优化,以开发癌症治疗药物。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

NSC-666719及其类似物的化学合成

制备NSC-666719(11a)及其系列I和系列II类似物(11b-s和10a-zb),用于结构-活性关系研究和生物学评估。

通过多步反应合成NSC-666719和类似物,包括氯磺酰化、磺酰胺化、环化、S-甲基化、胍基化、SNAr反应等步骤;系列II通过环开环/环合骨架跃迁得到苯并二噻嗪二氧化物-胍类化合物。

2

抗增殖活性评估(MTT实验)

评估合成化合物对多种癌细胞系的抗增殖活性,并与母体NSC-666719和依托泊苷进行比较。

使用MTT法检测化合物对MCF-7、MDA-MB-231、HCT-116、SCC-9癌细胞和HEK-293正常细胞的IC50值。细胞以5000-6000细胞/孔接种,处理浓度最高5 μM,处理48小时。

3

细胞凋亡评估(DAPI核染色)

检测化合物10e和10q是否诱导MCF-7细胞凋亡。

MCF-7细胞用不同浓度(10e: 0.5, 1.0, 2.0 μM;10q: 0.5, 0.8, 2.0 μM)处理48小时,DAPI染色后观察核形态,统计凋亡细胞百分比。

4

DNA损伤检测(γH2AX免疫细胞化学)

检测化合物10e和10q是否诱导MCF-7细胞DNA损伤。

MCF-7细胞用化合物处理后,使用免疫荧光技术检测γH2AX表达。细胞固定在盖玻片上,用抗γH2AX一抗(1:300)孵育,TRITC标记的二抗检测。

5

caspase-3表达检测

检测化合物10e和10q是否增加caspase-3表达,以证实凋亡诱导。

使用免疫荧光技术检测MCF-7细胞中caspase-3的表达。细胞处理、固定、抗体孵育步骤与γH2AX检测类似。

6

凋亡细胞群分析(Annexin-V-FITC/PI双染流式)

定量检测化合物10e和10q处理后MCF-7细胞的凋亡比例。

MCF-7细胞经化合物处理后,用Annexin-V-FITC和PI染色,流式细胞仪分析凋亡细胞群。

7

凋亡相关蛋白表达分析(Western blot)

检测化合物10e和10q对Bcl-xl、Bax和caspase-3蛋白表达的影响。

MCF-7细胞经化合物处理后,提取全细胞裂解液,SDS-PAGE分离,PVDF膜转印,与特异性抗体孵育,检测蛋白表达变化。

8

体外Polβ核苷酸插入实验

评估化合物10e对Polβ酶活性的直接抑制作用。

通过重建的体外BER体系,测定Polβ介导的dGTP:C插入活性。反应混合物含50 mM Tris-HCl、100 mM KCl、10 mM MgCl2等,加入不同浓度化合物(0, 1, 3, 5 μM),在不同时间点终止反应,通过凝胶电泳分析。

9

体内BER实验(质粒报告基因)

在完整细胞中验证化合物10e对BER通路的抑制作用。

使用含p21启动子的质粒(U-p21p用于SP-BER,R-p21p用于LP-BER)转染MCF-7细胞,用化合物10e处理后检测荧光素酶活性。

10

SPR结合实验

评估化合物10e与Polβ的直接结合亲和力及结合特性。

将Polβ固定在CM5传感器芯片上,注入不同浓度的化合物,记录传感图,计算KD值。

11

分子对接研究

预测化合物10e与Polβ的结合模式和结合能,以支持实验观察。

使用Maestro软件将化合物10e和11a对接到人DNA Polβ(PDB: 1BPZ)的结合位点,分析相互作用和结合能。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞系与培养
细胞系来源(ATCC)、培养条件
阅读提示:Methods/Experimental section 4.2.1.1
MTT实验
细胞接种密度(5000-6000细胞/孔)、处理浓度(最高5 μM)、处理时间(48小时)、MTT浓度(0.05%)
阅读提示:Methods/Experimental section 4.2.1.1
凋亡检测
化合物浓度(10e: 0.5,1.0,2.0 μM;10q: 0.5,0.8,2.0 μM)、处理时间(48小时)、DAPI染色时间等
阅读提示:Methods/Experimental section 4.2.1.2, 4.2.1.3, 4.2.1.4
Polβ活性抑制
反应缓冲液组成、dGTP和DNA底物浓度、Polβ浓度、化合物浓度(0-5 μM)、时间点
阅读提示:Methods/Experimental section 4.2.1.6
体内BER实验
质粒构建(U-p21p、R-p21p)、转染条件、处理时间(48小时)、荧光素酶检测方法
阅读提示:Methods/Experimental section 4.2.1.7
SPR结合实验
Polβ固定化方法(胺偶联)、流动缓冲液组成、化合物浓度范围、结合/解离时间
阅读提示:Methods/Experimental section 4.2.1.8