BAP1突变抑制NF-κB信号通路诱导葡萄膜黑色素瘤免疫抑制微环境

BAP1 mutations inhibit the NF-κB signaling pathway to induce an immunosuppressive microenvironment in uveal melanoma.

作者信息Chao Zhang, Shuai Wu
PMID37710185
期刊Mol Med
发布时间2023-09-14
DOI10.1186/s10020-023-00713-7

实验完整度

包含生物信息学分析、细胞系体外实验(共培养、拯救实验)及功能实验,但缺少动物模型和患者样本验证。

主要模型

葡萄膜黑色素瘤细胞系(Mel270、92.1、Mel290为BAP1野生型;MP65、MP46、MP38为BAP1突变型) THP-1巨噬细胞

重点核对

BAP1突变状态验证:通过BAP1核染色和Western blot确认细胞系 共培养条件:UM细胞与THP-1巨噬细胞以1:1比例在0.4 μm Transwell小室共培养36小时 NF-κB过表达:使用plvxpuro载体构建NF-κB过表达质粒转染BAP1突变细胞 检测指标:ELISA检测IL-1β、MCP-1、TGF-β1、CXCL-10;流式细胞术检测MHCII表达

摘要

背景:肿瘤免疫微环境调节葡萄膜黑色素瘤(UM)的生长和转移。本研究旨在揭示BRCA1相关蛋白1(BAP1)突变通过介导核因子-κB(NF-κB)信号通路影响UM肿瘤免疫微环境的可能分子机制。方法:TCGA和cBioPortal数据库联合分析UM样本中高突变频率的基因。对UM患者进行生存分析后,对BAP1突变的UM样本进行免疫细胞浸润分析。通过GSEA筛选与突变基因相关的信号通路。随后,在选定的野生型(WT)或突变型(MUT)BAP1的UM细胞系中分析BAP1差异表达。结果:生物信息学分析确定了UM样本中12个突变基因,而只有BAP1突变与UM患者的预后相关。BAP1突变的UM患者具有更高的免疫细胞浸润。BAP1突变抑制NF-κB信号通路,抑制巨噬细胞的细胞因子分泌和抗原呈递。拯救实验证实过表达NF-κB可以逆转BAP1突变对免疫抑制微环境的影响,从而抑制UM细胞的恶性表型。结论:BAP1突变可能抑制NF-κB信号通路,抑制巨噬细胞的细胞因子分泌和抗原呈递,从而诱导免疫抑制微环境,增强UM细胞的恶性表型,最终促进UM的生长和转移。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
BAP1突变是否通过影响NF-κB信号通路调节肿瘤免疫微环境,从而影响葡萄膜黑色素瘤的生长和转移?
核心机制
BAP1突变抑制NF-κB信号通路,导致巨噬细胞细胞因子分泌减少和抗原呈递能力下降,从而诱导免疫抑制微环境,增强UM细胞的恶性表型。
主要证据
通过TCGA和cBioPortal数据库分析发现仅BAP1突变与患者预后相关;GSEA显示NF-κB通路富集;体外共培养实验显示BAP1突变UM细胞与巨噬细胞共培养后,巨噬细胞IL-1β、MCP-1、TGF-β1、CXCL-10表达及MHCII表达降低;NF-κB过表达可部分恢复这些抑制效应。
研究意义
本研究为BAP1突变在葡萄膜黑色素瘤中的作用机制提供了新认识,可能有助于理解其免疫抑制微环境的形成。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

突变基因筛选与临床相关性分析

鉴定与UM患者预后相关的关键突变基因

利用TCGA和cBioPortal数据库分析80例UM样本的突变基因,筛选出突变频率最高的10个基因,并分析top4基因突变与总生存期和无进展生存期的关系。

2

免疫细胞浸润分析

评估BAP1突变对UM肿瘤免疫微环境的影响

使用TIMER网站分析BAP1野生型和突变型UM样本中多种免疫细胞的浸润程度。

3

信号通路富集分析

筛选BAP1突变可能调控的信号通路

基于BAP1表达水平将UM样本分为高表达组和低表达组,进行GSEA富集分析,发现NF-κB信号通路和巨噬细胞细胞因子产生的负调控在低表达组富集。

4

体外共培养实验验证BAP1突变对巨噬细胞功能的影响

验证BAP1突变是否抑制巨噬细胞的细胞因子分泌和抗原呈递能力

将BAP1野生型(Mel270)或突变型(MP46)UM细胞与THP-1巨噬细胞共培养,检测巨噬细胞中细胞因子(IL-1β、MCP-1、TGF-β1、CXCL-10)的表达和MHCII表达。

5

NF-κB过表达拯救实验

验证NF-κB信号通路在BAP1突变影响巨噬细胞功能中的中介作用

在BAP1突变UM细胞中过表达NF-κB,再与巨噬细胞共培养,检测巨噬细胞因子和MHCII表达的变化。

6

恶性表型功能实验

验证BAP1突变对UM细胞增殖、迁移和侵袭的影响

通过CCK-8、EdU、划痕实验和Transwell实验比较BAP1野生型和突变型UM细胞的增殖、迁移和侵袭能力。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
青霉素/链霉素----
佛波醇12-肉豆蔻酸酯13-乙酸酯----
二甲基亚砜----
plvxpuro载体----
BAP1一抗Santa Cruz Biotechnologysc28383
含DAPI的VECTASHIELD封片剂Vector Laboratories--
Leica DMI3000 B倒置显微镜Leica Microsystems Inc.--
IL-1β ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H0149c
MCP-1 ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H1159c
TGF-β ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H1587c
CXCL-10 ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H0050c
EZBioscience RNA提取试剂盒EZBioscienceEZB-RN4
反转录试剂盒EZBioscienceA0010CGQ
RT-qPCR试剂盒EZBioscienceA0012-R2
含PMSF的RIPA裂解液BeyotimeP0013B
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0011/P0012
HRP标记兔抗鼠IgGAbcamab6728
HRP标记山羊抗兔IgGAbcamab6721
GAPDH抗体Abcamab181602
增强化学发光试剂BeyotimeP0018M
ImageQuant LAS4000C凝胶成像仪GE--
FITC标记抗HLA-DR (MHCII)抗体BioLegend307620
CCK-8试剂盒BeyotimeC0037
基质胶----
甲苯胺蓝Sigma-Aldrich--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
UM细胞系:Mel270, 92.1, Mel290为BAP1野生型;MP65, MP46, MP38为BAP1突变型。培养基:RPMI-1640含10%或20% FBS,1% PS或50 IU/mL青霉素和50 μg/mL链霉素。
阅读提示:Materials and methods: In vitro culture of UM cells
巨噬细胞培养
THP-1细胞浓度调整至1×10^8 cells/mL,加入PMA 130 ng/mL诱导24小时。
阅读提示:Materials and methods: Sub-culture of macrophages
共培养实验
UM细胞与THP-1巨噬细胞比例1:1,Transwell小室孔径0.4 μm,共培养36小时。
阅读提示:Materials and methods: Co-culture of UM cells and macrophages
NF-κB过表达
NF-κB过表达质粒使用plvxpuro载体,转染BAP1突变UM细胞(MP46)。
阅读提示:Materials and methods: NF-κB plasmid transfection
细胞功能实验
CCK-8检测时间点:0, 24, 48, 72小时;EdU实验细胞密度2×10^6 cells/well;划痕实验观察时间和Transwell实验条件。
阅读提示:Materials and methods: CCK-8 and EdU assays, Scratch assay, Transwell assay