验证索拉非尼诱导的细胞死亡类型
确定索拉非尼在HCC细胞中诱导的细胞死亡是否为铁死亡。
使用铁死亡抑制剂Ferrostatin-1、凋亡抑制剂Z-VAD-FMK和坏死性凋亡抑制剂Necrosulfonamide处理索拉非尼处理的HCC细胞,检测细胞活力、MDA、GSH和C11-BODIPY脂质ROS。
Sorafenib induces ferroptosis by promoting TRIM54-mediated FSP1 ubiquitination and degradation in hepatocellular carcinoma.
包含体外细胞实验、机制验证(Co-IP、泛素化)和体内异种移植模型等多个独立证据层级,并进行了功能验证和机制验证。
HepG2细胞 Huh-7细胞 BALB/c裸鼠异种移植瘤模型 HCC患者队列
细胞系:HepG2和Huh-7 索拉非尼处理浓度(10 μM)和时间(36小时) 转染siRNA序列及转染试剂 体内实验:BALB/c裸鼠皮下注射HepG2细胞(2×10^6细胞/只),索拉非尼剂量10 mg/kg腹腔注射,隔天一次 检测指标:细胞活力、MDA、GSH、C11-BODIPY脂质ROS、蛋白表达、泛素化水平
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
确定索拉非尼在HCC细胞中诱导的细胞死亡是否为铁死亡。
使用铁死亡抑制剂Ferrostatin-1、凋亡抑制剂Z-VAD-FMK和坏死性凋亡抑制剂Necrosulfonamide处理索拉非尼处理的HCC细胞,检测细胞活力、MDA、GSH和C11-BODIPY脂质ROS。
分析HCC患者中FSP1和GPX4的表达水平与预后的关系,并检测索拉非尼对FSP1蛋白表达的影响。
基于TCGA数据库分析FSP1和GPX4表达与患者总生存期的关系;用不同浓度和时间索拉非尼处理HCC细胞,Western blot检测FSP1、GPX4、TFRC、SLC7A11蛋白水平。
确定FSP1表达水平是否影响HCC细胞对索拉非尼诱导铁死亡的敏感性。
在HCC细胞中敲低或过表达FSP1,然后用索拉非尼处理,检测细胞活力、MDA、GSH、C11-BODIPY脂质ROS和蛋白表达。
确定索拉非尼是否通过泛素化途径降解FSP1,以及TRIM54是否作为E3连接酶参与该过程。
检测FSP1 mRNA水平;使用放线菌酮追踪FSP1蛋白半衰期;使用蛋白酶体抑制剂MG132和泛素化实验;通过免疫共沉淀检测TRIM54与FSP1的相互作用,以及敲低TRIM54对FSP1泛素化和铁死亡的影响。
确定索拉非尼是否通过ERK通路调节TRIM54与FSP1的相互作用并促进FSP1泛素化。
用Co-IP检测ERK与TRIM54的相互作用,以及索拉非尼和ERK抑制剂PD98059对该相互作用及TRIM54-FSP1相互作用和FSP1泛素化的影响;检测PD98059对铁死亡指标的影响。
评估FSP1在体内对肿瘤生长和对索拉非尼敏感性的影响。
用慢病毒载体稳定过表达FSP1的HepG2细胞皮下注射到BALB/c裸鼠,并给予或不给予索拉非尼治疗,监测肿瘤体积,28天后取瘤组织进行Western blot、免疫组化、MDA和GSH检测。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | 文中未明确说明 | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 抗生素/抗真菌溶液 | 文中未明确说明 | -- | |
| 细胞转染 | siLentFect脂质转染试剂 | Bio-Rad | -- |
| jetPRIME转染试剂 | Polyplus Transfection | -- | |
| 蛋白提取和定量 | RIPA裂解液 | KeyGen BioTECH | -- |
| 蛋白定量 | 增强型BCA蛋白定量试剂盒 | KeyGen BioTECH | -- |
| Western blot | Chemistar High-sig ECL Western印迹底物 | Tanon | -- |
| 免疫共沉淀 | 蛋白A+G琼脂糖 | Bioepitope | -- |
| Western blot | 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig |
| 抗FSP1抗体 | Proteintech | 20886-1-AP | |
| 抗GPX4抗体 | Abcam | ab125066 | |
| 抗TFRC抗体 | ABclonal | A5865 | |
| 抗SLC7A11抗体 | ABclonal | A2413 | |
| 抗TRIM54抗体 | Proteintech | 21074-1-AP | |
| 抗ERK抗体 | Cell Signaling Technology | #4695 | |
| 抗泛素抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-9133 | |
| 辣根过氧化物酶偶联二抗 | Vicmed | VA001和VA002 | |
| 药物处理 | 索拉非尼 | Targetmol | T0093L |
| Ferrostatin-1 | APE × BIO | A4371 | |
| Z-VAD-FMK | APE × BIO | A1902 | |
| 坏死性凋亡抑制剂 | APE × BIO | B7731 | |
| MG-132 | APE × BIO | A2585 | |
| PD98059 | MedChemExpress | HY-12028 | |
| 细胞活力检测 | 细胞计数试剂盒-8 (CCK8) | APE × BIO | -- |
| MDA检测 | 丙二醛比色检测试剂盒 | Elabscience | E-BC-K025-M |
| GSH检测 | 还原型谷胱甘肽比色检测试剂盒 | Elabscience | E-BC-K030-M |
| 脂质过氧化检测 | C11 BODIPY 581/591 | Cayman | 27086-1mg |
| 流式分析 | 流式细胞仪 | Becton Dickinson | -- |
| 荧光显微成像 | 显微镜(ZEISS AXIO Scope.A1 HAL100) | ZEISS | AXIO Scope.A1 HAL100 |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Takara | -- |
| 逆转录 | PrimeScript逆转录试剂盒 | Takara | -- |
| qPCR | BrightGreen Express 2×qPCR预混液 | Abm | -- |
| 集落形成实验 | 结晶紫 | Vicmed | -- |
| 统计分析 | SPSS 21.0软件 | SPSS | -- |
| GraphPad Prism 7.0软件 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | HepG2和Huh-7细胞系来源、培养条件(DMEM+10% FBS,37°C,5% CO2) 阅读提示:Methods中的Cell culture部分 |
| 药物处理 | 索拉非尼浓度(10 μM)和处理时间(36小时) 阅读提示:Figure 1图注和Methods中的Cell culture部分 |
| 细胞转染 | siRNA序列、转染试剂(siLentFect、jetPRIME)、质粒(pcDNA3.1-FSP1) 阅读提示:Methods中的Cell transfection部分 |
| 铁死亡检测 | MDA和GSH检测试剂盒、C11-BODIPY浓度(2 μM)和孵育时间(30分钟) 阅读提示:Methods中的Malondialdehyde and GSH assay和Lipid peroxidation assay C11-BODIPY部分 |
| 蛋白质检测 | 抗体列表及稀释比例(原文未明确说明) 阅读提示:Methods中的Antibodies and reagents部分 |
| 泛素化实验 | MG132浓度(100 μM)和处理时间(4小时),放线菌酮浓度(30 μg/mL) 阅读提示:Figure 3图注和Methods中的Immunoblotting and co-immunoprecipitation部分 |
| 体内实验 | 动物品系(雌性BALB/c裸鼠,6周龄)、细胞接种数(2×10^6)、索拉非尼剂量(10 mg/kg,隔天一次) 阅读提示:Methods中的Tumor xenograft experiments and immunohistochemistry部分 |