磷酸乙醇胺胞苷酰转移酶改善T2DM体外肝细胞线粒体功能和凋亡

Phosphoethanolamine cytidylyltransferase ameliorates mitochondrial function and apoptosis in hepatocytes in T2DM in vitro.

作者信息Hu Xu, Weizu Li, Lei Huang, Xinyu He, Bei Xu, Xueqing He, Wentong Chen, Yaoxing Wang, Wenjun Xu, Sheng Wang, Qin Kong, Youzhi Xu, Wenjie Lu
PMID36716821
发布时间2023-03
DOI10.1016/j.jlr.2023.100337

实验完整度

包含动物模型(T2DM小鼠)和细胞模型(L02细胞),进行了脂质组学、功能验证(凋亡、ATP、ROS、膜电位)和机制验证(BAX/Bcl-2/caspase3通路)。

主要模型

T2DM小鼠模型(HFD+STZ诱导) L02肝细胞系(HG&FFA刺激)

重点核对

T2DM小鼠模型:C57BL/6J小鼠,高脂饮食8周,STZ 40 mg/kg/d腹腔注射7天,空腹血糖>11.1 mM HG&FFA刺激:30 mM D-葡萄糖和1 mM FFA(OA:PA=2:1)处理L02细胞 CDP-etn和LPE浓度:100 μM 凋亡检测:Annexin V-FITC/PI染色,流式细胞术 ATP含量检测:ATP检测试剂盒

摘要

2型糖尿病(T2DM)患者的肝功能指标常常受损,其天冬氨酸氨基转移酶、丙氨酸氨基转移酶和γ-谷氨酰转移酶浓度高于非糖尿病患者。然而,T2DM患者肝损伤的机制尚未明确阐明。在本研究中,我们对T2DM小鼠的肝脏进行了脂质组学分析,发现T2DM中磷脂酰乙醇胺(PE)水平降低,同时二酰甘油增加,这可能是由于磷酸乙醇胺胞苷酰转移酶(Pcyt2)水平降低所致,从而可能影响PE的从头合成。磷脂酰丝氨酸脱羧酶途径在T2DM模型中没有显著变化,尽管两条途径都是PE的重要来源。补充CDP-乙醇胺(CDP-etn)以增加CDP-etn途径产生的PE,可逆转高糖和游离脂肪酸(HG&FFA)诱导的线粒体损伤,包括凋亡增加、ATP合成减少、线粒体膜电位降低和活性氧增加,而补充溶血磷脂酰乙醇胺(可增加磷脂酰丝氨酸脱羧酶途径的PE产生)则没有。此外,我们发现PCYT2过表达显著改善了HG&FFA诱导的ATP合成和异常线粒体形态。最后,BAX/Bcl-2/caspase3凋亡通路在T2DM模型的肝细胞中被激活,这也可以被CDP-etn补充和PCYT2过表达逆转。总之,在T2DM小鼠的肝脏中,Pcyt2减少可能导致PE水平降低,而CDP-etn补充和PCYT2过表达改善了HG&FFA刺激的L02细胞的部分线粒体功能和凋亡。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PCYT2是否参与T2DM诱导的肝损伤及其可能的分子机制。
核心机制
T2DM中肝细胞PCYT2表达降低导致PE从头合成减少,DG增加,进而引起线粒体功能障碍(膜电位降低、ATP减少、ROS增加)并通过激活BAX/Bcl-2/caspase3凋亡通路导致肝细胞凋亡。
主要证据
T2DM小鼠肝脏和HG&FFA刺激的L02细胞中PCYT2表达降低,PE含量减少;补充CDP-etn或过表达PCYT2可逆转线粒体损伤和凋亡,而过表达PISD或补充LPE无效。
研究意义
揭示了PCYT2途径产生的PE在T2DM肝损伤中的重要性,为未来治疗T2DM患者肝损伤提供了新方向。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立T2DM小鼠模型并验证肝功能损伤

验证T2DM小鼠模型是否成功建立并出现肝功能损伤。

使用高脂饮食和STZ注射诱导T2DM小鼠模型,检测空腹血糖、OGTT、ITT、血清ALT和AST水平,并进行H&E染色观察肝脏组织学。

2

肝脏脂质组学分析

分析T2DM小鼠肝脏脂质组成变化,重点关注PE和DG。

提取肝脏组织脂质,进行液相色谱-质谱联用分析,并通过PCA、PLS-DA和OPLS-DA区分组间差异。

3

检测PE合成途径关键酶表达

探究T2DM肝脏中PE减少是否与PCYT2或PISD表达改变有关。

通过qRT-PCR和Western blot检测T2DM小鼠肝脏和HG&FFA刺激的L02细胞中PCYT2和PISD的mRNA和蛋白水平。

4

补充CDP-etn或过表达PCYT2对脂质代谢的影响

探究补充CDP-etn或过表达PCYT2是否能逆转HG&FFA引起的PE和DG变化。

对HG&FFA刺激的L02细胞补充CDP-etn或LPE,或通过慢病毒感染过表达PCYT2,然后进行脂质组学分析和线粒体/线粒体外PE含量测定。

5

评估线粒体功能和凋亡

评估补充CDP-etn或过表达PCYT2对HG&FFA诱导的线粒体损伤和凋亡的影响。

检测凋亡率(流式细胞术)、ATP含量、线粒体膜电位(JC-1)、ROS水平(DCFH-DA)、线粒体呼吸(Seahorse)和线粒体超微结构(透射电镜)。

6

验证凋亡信号通路

探究PCYT2减少诱导凋亡的分子机制是否通过BAX/Bcl-2/caspase3通路。

通过Western blot检测T2DM小鼠肝脏和HG&FFA刺激的L02细胞中BAX、Bcl-2和cleaved-caspase3的蛋白水平,并观察CDP-etn或LPE补充以及PCYT2或PISD过表达的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
AST检测试剂盒Nanjing Jiancheng Biotechnology Institute--
ALT检测试剂盒Nanjing Jiancheng Biotechnology Institute--
油酸SigmaO1008
棕榈酸SigmaP0500
ATP检测试剂盒BeyotimeS0026
BCA蛋白检测试剂盒BeyotimeP0010S
线粒体膜电位检测试剂盒BeyotimeC2006
ROS检测试剂盒BeyotimeS0033S
RPMI 1640培养基GibcoSH30027.01
胎牛血清GibcoSH30406.02
抗PCYT2抗体Abcamab135290
抗BAX抗体Cell Signaling Technology#5023
抗Bcl-2抗体Cell Signaling Technology#3498
抗cleaved-caspase3抗体Cell Signaling Technology#9661
抗β-actin抗体Cell Signaling Technology#3700
抗PISD抗体Santa Cruz Biotechnologysc-390070
山羊抗兔二抗ElabscienceE-AB-1034
山羊抗小鼠二抗ElabscienceE-AB-1035
TRIzol试剂Thermo Fisher Scientific15596018
RevertAid逆转录试剂盒Thermo Fisher ScientificK1691
SYBR绿色荧光探针Bio-Rad--
PCYT2过表达慢病毒GENECHEM--
PISD过表达慢病毒GENECHEM--
链脲佐菌素----
细胞线粒体分离试剂盒Beyotime--
PE检测试剂盒Merck KGaAMAK361
H&E染色试剂盒Servicebio--
化学发光液Affinity--
荧光显微镜Carl Zeiss AG--
发光检测仪SuPerMax 3100--
Acclaim C30色谱柱----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与处理
L02细胞系来源(ATCC)、培养基(RPMI 1640+10%FBS+1%青霉素/链霉素)、培养条件(5% CO2,37°C);HG&FFA处理浓度(30 mM D-葡萄糖、1 mM FFA,OA:PA=2:1);CDP-etn和LPE浓度(100 μM)
阅读提示:Materials and Methods: Cell culture and experiments
动物模型
小鼠品系(C57BL/6J)、年龄(8周)、高脂饮食(60%能量来自脂肪,Cat. XTHF60-1)和普通饮食(Cat. 1010009)喂养时间(8周);STZ剂量(40 mg/kg/d)、给药方式(腹腔注射)、连续天数(7天);空腹血糖标准(>11.1 mM);处死时戊巴比妥钠剂量(100 mg/kg)
阅读提示:Materials and Methods: Animal model
基因转染
过表达载体(GV492)、序列(Ubi-MCS-3FLAG-CBh-gcGFP-IRES-puromycin)、克隆位点(BamHI/AgeI);对照病毒(CON335);筛选方法(GFP分选+嘌呤霉素)
阅读提示:Materials and Methods: Gene transfection
脂质组学
色谱条件(Acclaim C30柱,柱温45°C,流速0.26 ml/min,进样量5 μl);质谱条件(ESI源,喷雾电压3800/3200 V,扫描范围100-1500 m/z);样本量(n=5-6)
阅读提示:Materials and Methods: Lipid profiling
线粒体功能检测
ATP检测试剂盒(S0026);JC-1探针浓度(5 μg/ml)和孵育时间(20 min);ROS探针浓度(10 μM)和孵育时间(20 min);Seahorse Mito Stress Test参数;细胞接种密度(凋亡检测2×10^5/孔,ROS检测1×10^6/孔)
阅读提示:Materials and Methods: ROS detection, Mitochondrial membrane potential detection, ATP detection, Apoptosis detection