预测ELA-11结构并建立DOX诱导心脏损伤模型
验证ELA-11在体内的药效并评估其对心脏损伤的保护作用。
使用I-TASSER预测ELA-11结构,并建立小鼠DOX诱导心脏损伤模型,分为Scr、ELA-11、DOX+Scr、DOX+ELA-11四组,每组5只,监测体重、超声心动图(EF、FS、LVEDs),并检测血清CKMB、BNP,进行组织学染色。
ELA-11 protects the heart against oxidative stress injury induced apoptosis through ERK/MAPK and PI3K/AKT signaling pathways.
包含体内小鼠模型(DOX诱导心脏损伤)、体外大鼠原代心肌细胞(DOX和CoCl2模型),并进行功能验证(TUNEL、JC-1、ROS)和机制验证(western blot、APJ拮抗剂ML221)。
C57BL/6J小鼠DOX诱导心肌损伤模型 大鼠原代心肌细胞 CoCl2诱导的心肌细胞氧化应激模型
小鼠随机分为四组,每组5只,DOX剂量5mg/kg腹腔注射连续5周,ELA-11剂量10mg/kg尾静脉注射7天 大鼠原代心肌细胞提取自出生后24小时大鼠,DOX处理浓度1μM,处理时间12小时 ELA-11预处理浓度1μM,预处理时间12小时 CoCl2处理浓度未明确说明,但涉及多个浓度梯度(200-1000μM) ML221作为APJ拮抗剂,其处理浓度和给药方式未明确说明
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证ELA-11在体内的药效并评估其对心脏损伤的保护作用。
使用I-TASSER预测ELA-11结构,并建立小鼠DOX诱导心脏损伤模型,分为Scr、ELA-11、DOX+Scr、DOX+ELA-11四组,每组5只,监测体重、超声心动图(EF、FS、LVEDs),并检测血清CKMB、BNP,进行组织学染色。
确定ELA-11对DOX诱导的大鼠原代心肌细胞损伤的保护作用。
提取大鼠原代心肌细胞,用CCK-8和LDH检测细胞活力,用trypan blue检测细胞死亡。确定最佳DOX浓度和时间,然后预孵育ELA-11,检测细胞存活率和LDH释放。
确定ELA-11是否通过抑制凋亡和氧化应激来保护心肌细胞。
检测TUNEL凋亡、JC-1线粒体膜电位、western blot检测caspase-3和PARP裂解、ROS水平、MDA、SOD和GSH-Px水平。
在另一个氧化应激模型中验证ELA-11的心脏保护作用。
使用CoCl2构建化学缺血模型,检测细胞活力、LDH释放、TUNEL凋亡、ROS水平、MDA、SOD和GSH-Px,并检测凋亡相关蛋白。
明确ELA-11通过ERK/MAPK和PI3K/AKT通路发挥保护作用。
通过western blot检测DOX和CoCl2处理后,ELA-11对p-ERK、p-AKT和PI3K表达的影响。
确定ELA-11是否通过APJ受体激活下游信号通路。
使用APJ拮抗剂ML221,与ELA-11和DOX或CoCl2共处理,检测凋亡蛋白和信号通路蛋白的表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 马血清 | Gibco | -- | |
| 药物处理 | 阿霉素 | -- | -- |
| ELA-11 | -- | -- | |
| ML221 | -- | -- | |
| TUNEL染色 | TUNEL染色试剂盒 | -- | -- |
| 线粒体膜电位检测 | 线粒体膜电位检测试剂盒 | -- | -- |
| ROS检测 | 活性氧检测试剂盒 | -- | -- |
| Western blot | BCA蛋白检测试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23229 |
| Caspase-3抗体 | Cell Signaling Technology | 14220T | |
| PARP抗体 | Cell Signaling Technology | 9532T | |
| β-actin抗体 | Cell Signaling Technology | 3700S | |
| GAPDH抗体 | Cell Signaling Technology | 5174T | |
| AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4685S | |
| p-AKT抗体 | Cell Signaling Technology | 4060T | |
| PI3K抗体 | Cell Signaling Technology | 4249T | |
| ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 4695T | |
| p-ERK抗体 | Cell Signaling Technology | 4370T | |
| 抗兔二抗 | Proteintech | SA00001-2 | |
| PI3K抗体 | Proteintech | 20584-1-AP | |
| 抗鼠二抗 | Proteintech | SA00001-1 | |
| FluorChem M成像系统 | ProteinSimple | -- | |
| 氧化应激检测 | 脂质过氧化丙二醛检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 总超氧化物歧化酶检测试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 谷胱甘肽过氧化物酶检测试剂盒 | Elabscience | -- | |
| ELISA | ELISA试剂盒 | Mlbio | -- |
| 荧光显微镜 | 荧光显微镜 | Olympus | BX61 |
| 细胞实验 | FITC标记的ELA-11 | -- | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 小鼠品系、年龄、体重、DOX剂量(5mg/kg)、给药方式(腹腔注射)、给药周期(连续5周)、ELA-11剂量(10mg/kg)、给药方式(尾静脉注射)、预处理时间(7天)、鼠数(每组5只)、饲养条件(温度、湿度) 阅读提示:见Materials and methods- Animals 部分 |
| 细胞培养 | 大鼠原代心肌细胞提取方法(新生鼠、消化条件、过滤)、培养条件(DMEM含10%马血清)、细胞接种密度(5-6×10^5细胞/皿)、培养时间 阅读提示:见Materials and methods- Cell culture 部分 |
| 药物处理 | ELA-11预处理浓度(1μM)和时间(12h)、DOX处理浓度(1μM)和时间(12h)、CoCl2处理浓度(600μM?文中未明确说明,但筛选浓度范围200-1000μM) 阅读提示:见Materials and methods- Cell culture 和 Results 部分 |
| 细胞功能检测 | CCK-8检测时间点、LDH检测方法、Trypan blue染色时间点(0-36h) 阅读提示:见Materials and methods- Cell counting kit-8 assay, Lactate dehydrogenase level detection, Cell death rates 部分 |
| 凋亡和氧化应激检测 | TUNEL染色、JC-1染色、ROS检测(DCFH-DA浓度0.1%,孵育20min)、MDA、SOD、GSH-Px检测方法(试剂盒操作步骤) 阅读提示:见Materials and methods- Terminal-deoxynucleotidyl transferase-mediated dUTP-biotin nick end-labeling staining assay, Tetrechloro-tetraethylbenzimidazol carbocyanine iodide assay, Reactive oxygen species measurement, Malondialdehyde, superoxide dismutase, and glutathione peroxidase assay 部分 |
| Western blot | 蛋白提取(RIPA和1%PMSF)、BCA定量、SDS-PAGE电泳、抗体稀释比例(Caspase-3 1:1000等)、一抗二抗来源及稀释度 阅读提示:见Materials and methods- Western blot 部分 |
| 体内功能评估 | 超声心动图检测参数(EF、FS、LVEDs)、ELISA检测CKMB和BNP、HE、Masson、WGA、TUNEL染色的组织处理方法和切片厚度 阅读提示:见Materials and methods- Echocardiography, Enzyme-linked immunosorbent assay, Hematoxylin & Eosin (H&E) Staining, Masson staining, Wheat germ agglutinin staining 和 Results 部分 |