人脐带间充质干细胞来源的含miR-126-3p外泌体在卵巢早衰临床前大鼠模型中促进血管生成并减轻卵巢颗粒细胞凋亡

miR-126-3p containing exosomes derived from human umbilical cord mesenchymal stem cells promote angiogenesis and attenuate ovarian granulosa cell apoptosis in a preclinical rat model of premature ovarian failure.

作者信息Qingxi Qu, Linghong Liu, Yuqian Cui, Hongli Liu, Jingyang Yi, Weidong Bing, Chunxiao Liu, Detian Jiang, Yanwen Bi
PMID35883161
发布时间2022-07-26
DOI10.1186/s13287-022-03056-y

实验完整度

高

体外细胞实验(hucMSCs、OGCs、双荧光素酶报告、siRNA/过表达)、体内大鼠模型(顺铂诱导POF)、组织学与分子检测(HE、免疫组化、Western blot)等多层级验证。

主要模型

人脐带间充质干细胞(hucMSCs) 原代大鼠卵巢颗粒细胞(OGCs) 顺铂诱导的POF大鼠模型

重点核对

miR-126-3p慢病毒转染效率(GFP荧光和PCR验证) 外泌体表征(TEM形态、粒径10-100 nm、标志物TSG101/HSP70/CD63阳性、calnexin阴性) POF细胞模型顺铂浓度(4 μg/ml)和POF大鼠模型顺铂剂量(1 mg/kg,连续14天) 外泌体处理浓度(100 μg/ml),大鼠尾静脉注射单剂量400 μg外泌体蛋白 PIK3R2作为miR-126-3p直接靶标的双荧光素酶报告验证

摘要

背景:在我们先前的研究中,我们发现人脐带间充质干细胞(hucMSCs)中miR-126-3p的过表达通过外泌体介导的机制促进人脐静脉内皮细胞的血管生成活性。本研究旨在探讨miR-126-3p修饰的hucMSCs来源外泌体(miR-126-3p-hucMSCs-exosomes)在治疗卵巢早衰(POF)中的作用。方法:从人脐带中分离原代hucMSCs,并通过分化实验和流式细胞术进行鉴定。通过miR-126-3p慢病毒感染获得miR-126-3p-hucMSCs。通过超速离心法纯化miR-126-3p-hucMSCs-exosomes,并通过透射电子显微镜和western blot分析进行表征。从卵巢组织中收集原代大鼠卵巢颗粒细胞(OGCs),并通过细胞免疫组化进行鉴定。在顺铂诱导的POF细胞模型中,通过细胞增殖和凋亡实验测定miR-126-3p-hucMSCs-exosomes和miR-126-3p对OGCs功能的影响。通过PCR和Western blot分析以及随后的双荧光素酶报告基因实验分析合适的靶基因水平。通过western blot分析信号通路。使用顺铂诱导的POF大鼠模型验证miR-126-3p-hucMSCs-exosomes治疗POF的治疗效果。通过体格检查、酶联免疫吸附实验和组织学检查评估化疗处理大鼠的卵巢功能。通过免疫组化染色和Western blots评估卵巢组织的血管生成和凋亡。结果:成功分离并鉴定了原代hucMSCs、miR-126-3p-hucMSCs-exosomes和原代大鼠OGCs。细胞摄取实验表明miR-126-3p-hucMSC-exosomes可在体外被OGCs内化。Annexin V-FITC/PI染色和EDU实验显示,miR-126-3p-hucMSCs-exosomes和miR-126-3p均促进顺铂损伤的OGCs增殖并抑制其凋亡。PCR和western blot分析以及随后的双荧光素酶报告基因实验证实,miR-126-3p靶向OGCs中PIK3R2的3'非翻译区序列。进一步分析表明,PI3K/AKT/mTOR信号通路参与了miR-126-3p/PIK3R2介导的OGCs增殖和凋亡。在大鼠POF模型中,给予miR-126-3p-hucMSCs-exosomes增加了E2和AMH水平,增加了体重、生殖器官重量和卵泡数量,并降低了FSH水平。但更重要的是,免疫组化结果表明miR-126-3p-hucMSCs-exosomes显著促进POF大鼠的卵巢血管生成并抑制凋亡。此外,对血管生成相关因子和凋亡相关因子的分析显示,miR-126-3p-hucMSCs-exosomes在大鼠卵巢中具有促血管生成和抗凋亡作用。结论:我们的研究结果表明,携带miR-126-3p的hucMSCs来源外泌体在POF中促进血管生成并减轻OGCs凋亡,这突出了含有miR-126-3p的外泌体作为POF治疗的有效治疗策略的潜力。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
探讨过表达miR-126-3p的hucMSCs来源外泌体对卵巢早衰的治疗作用及其机制。
核心机制
miR-126-3p通过靶向PIK3R2并激活PI3K/AKT/mTOR信号通路,促进颗粒细胞增殖、抑制凋亡,同时促进卵巢血管生成。
主要证据
体外OGCs实验证实miR-126-3p靶向PIK3R2并激活通路;体内POF大鼠模型给予miR-126-3p-hucMSCs-exosomes后,E2、AMH水平升高,FSH降低,卵泡数增加,血管生成相关因子(VEGF、IGF-1、FGF)升高,凋亡相关因子(Bax、caspase-3)降低。
研究意义
该研究揭示携带miR-126-3p的hucMSCs外泌体在POF治疗中的潜力,为开发无细胞疗法提供了理论依据。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

hucMSCs的分离、培养与鉴定

获得并确认具有间充质干细胞特性的hucMSCs。

从人脐带中分离原代hucMSCs,通过流式细胞术检测表面标志物(CD29、CD44、CD90、CD105、CD166阳性;CD31、CD45阴性),并通过成骨、成脂分化实验验证多向分化潜能。

2

外泌体的制备与表征

获得高表达miR-126-3p的hucMSCs来源外泌体并确认其特性。

构建miR-126-3p慢病毒转染hucMSCs,通过超速离心法提取外泌体,经TEM观察形态、western blot检测标志物(TSG101、HSP70、CD63、calnexin),并PCR验证miR-126-3p富集。

3

OGCs的分离、培养与鉴定

获得并确认原代大鼠卵巢颗粒细胞。

从3-4周龄雌性Wistar大鼠卵巢中分离颗粒细胞,经HE染色和FSHR免疫组化鉴定。

4

体外细胞摄取实验

验证miR-126-3p-hucMSCs-exosomes能否被OGCs内化。

用PKH26标记外泌体,与OGCs共培养,荧光显微镜观察红色荧光在细胞内的分布。

5

体外细胞功能实验

检测miR-126-3p-hucMSCs-exosomes及miR-126-3p对顺铂损伤OGCs的增殖和凋亡影响。

建立顺铂诱导的POF细胞模型,分别用miR-126-3p-hucMSCs-exosomes处理、miR-126-3p mimics或inhibitor转染,通过Annexin V-FITC/PI流式凋亡检测和EDU增殖检测评估细胞功能。

6

靶基因验证

验证miR-126-3p是否直接靶向PIK3R2,并确认PIK3R2功能。

通过RT-PCR和western blot检测PIK3R2和SPRED-1表达,双荧光素酶报告实验验证miR-126-3p与PIK3R2 3'UTR结合,并利用siRNA和过表达质粒验证PIK3R2对OGCs增殖凋亡的影响。

7

信号通路验证

探究miR-126-3p/PIK3R2介导的PI3K/AKT/mTOR信号通路在OGCs中的作用。

使用LY294002抑制PI3K,结合miR-126-3p inhibitor、PIK3R2 siRNA处理,通过western blot检测PI3K、p-AKT、p-mTOR水平。

8

动物模型建立与外泌体治疗

评估miR-126-3p-hucMSCs-exosomes对POF大鼠卵巢功能的影响。

建立顺铂诱导的POF大鼠模型,尾静脉注射外泌体,定期测量体重、激素水平(E2、AMH、FSH),并进行组织学分析。

9

组织学与免疫组化分析

评估卵巢组织结构变化、血管生成和细胞凋亡。

卵巢组织进行HE染色观察形态和卵泡计数;免疫组化检测PCNA、CD31;TUNEL染色检测凋亡。

10

蛋白表达分析

检测卵巢组织中血管生成相关因子和凋亡相关因子的表达。

通过western blot检测VEGF、IGF-1、FGF、Bax、Bcl-2、caspase-3的表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
α-基础培养基HycloneSH30265.01B
胎牛血清Gibco16140-071
胰蛋白酶Gibco25200-056
DMEM/F12培养基Hyclone--
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0010S
PKH26红色荧光染料----
Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒BestbioBB-4101
EDU成像试剂盒RiboBioC10310-1
顺铂Qilu-pharma--
FSH ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-R0026c
E2 ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-0152c
AMH ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-R3022
TRIzol试剂Thermo Fisher15596-018
PCNA抗体Proteintech--
CD31抗体Proteintech--
TUNEL凋亡检测试剂盒ElabscienceE-CK-A322
PIK3R2抗体Abcam--
SPRED-1抗体Abcam--
Calnexin抗体Abcam--
AKT抗体Cell Signaling--
p-AKT抗体Cell Signaling--
ERK1/2抗体Cell Signaling--
p-ERK1/2抗体Cell Signaling--
TSG101抗体Proteintech--
HSP70抗体Proteintech--
CD63抗体Proteintech--
GAPDH抗体Proteintech--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
hucMSCs培养与鉴定
细胞培养基(α-MEM含10% FBS)、传代使用胰蛋白酶、表面标志物流式检测(CD29/CD44/CD90/CD105/CD166阳性,CD31/CD45阴性)、分化诱导试剂盒。
阅读提示:Materials and Methods 中“Isolation and Culture of hucMSCs”
外泌体提取与鉴定
超速离心法、外泌体标志物(TSG101/HSP70/CD63阳性,calnexin阴性)、粒径10-100 nm、BCA定量蛋白浓度。
阅读提示:Materials and Methods 中“Preparation of Exosomes”
OGCs原代培养
大鼠周龄(3-4周)、卵巢处理方式、DMEM/F12培养基含10% FBS、培养条件(37°C、5% CO2)。
阅读提示:Materials and Methods 中“Isolation and Culture of GCs”
POF细胞模型
顺铂浓度(4 μg/ml)、处理时间、细胞代数(1-3代)。
阅读提示:Materials and Methods 中“Flow Cytometry and EDU Assay”及Results“miR-126-3p-hucMSCs-exosomes Improved...”
POF大鼠模型
顺铂剂量(1 mg/kg腹腔注射14天)、外泌体剂量(400 μg/200 μl PBS单次尾静脉注射)、观察时间(0-4周)、样本量(n=21每组)。
阅读提示:Materials and Methods 中“Establishment of POF Rat Model”
信号通路验证
LY294002浓度、抑制剂处理时间、检测蛋白(PI3K、p-AKT、p-mTOR)。
阅读提示:Results“PI3K/AKT/mTOR Signaling Pathway Involved...”