ESC-MSCs的制备与鉴定
获取并验证具有间充质干细胞表型的ESC-MSCs。
从人ESC系H9经两步法分化为ESC-MSCs,通过流式细胞术检测表面标记物(CD73, CD90, CD105阳性,CD14, CD34, CD45, CD79a, HLA-DR阴性)。
Embryonic stem cell-derived mesenchymal stem cells alleviate skeletal muscle injury induced by acute compartment syndrome.
包含体外细胞分化鉴定、大鼠ACS模型、体内功能验证、巨噬细胞极化机制验证及巨噬细胞耗竭逆转实验,证据层级充分。
人胚胎干细胞系H9来源的ESC-MSCs Sprague-Dawley大鼠急性筋膜室综合征模型 胫骨前肌组织
ACS模型建立:2小时筋膜室内压力升高至80±10mmHg ESC-MSCs注射剂量:1.2×10^6 cells/0.5ml PBS,静脉注射 巨噬细胞耗竭:脂质体氯膦酸二钠(5mg/ml, 1ml)于ACS前及后1天静脉注射 检测时间点:1天、3天、7天 样本量:每组7只大鼠
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证具有间充质干细胞表型的ESC-MSCs。
从人ESC系H9经两步法分化为ESC-MSCs,通过流式细胞术检测表面标记物(CD73, CD90, CD105阳性,CD14, CD34, CD45, CD79a, HLA-DR阴性)。
模拟急性筋膜室综合征引起的骨骼肌损伤。
雄性SD大鼠麻醉后,向左后肢前筋膜室插入24G导管,输注生理盐水使筋膜室内压力升至80±10mmHg,维持2小时,然后行筋膜切开减压。
评估ESC-MSCs对ACS诱导的骨骼肌水肿、炎症和组织学损伤的影响。
筋膜切开术后立即静脉注射ESC-MSCs(1.2×10^6/0.5ml PBS)或PBS。在不同时间点测定水肿指数、血清CK、ELISA检测炎症因子,H&E染色评估组织病理。
检测ESC-MSCs对ACS后骨骼肌凋亡、纤维化及再生的影响。
TUNEL染色和western blot检测凋亡相关蛋白;H&E和Masson染色评估再生和纤维化;肌力测试评估功能恢复。
探究ESC-MSCs是否调节巨噬细胞极化。
用PKH26标记ESC-MSCs追踪分布;Western blot和免疫荧光检测CD68、CD86、CD206表达;qPCR检测炎症因子mRNA。
验证巨噬细胞在ESC-MSC治疗效应中的必要性。
通过静脉注射脂质体氯膦酸二钠(LC)耗竭巨噬细胞,然后评估ESC-MSC治疗对骨骼肌损伤的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养与分化 | TrypLE Express | -- | -- |
| E8培养基 | Gibco | -- | |
| 高糖DMEM培养基 | -- | -- | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| L-谷氨酰胺 | -- | -- | |
| 流式细胞术 | 抗CD73-PE-Cy7抗体 | BD Pharmingen | -- |
| 抗CD90-APC抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| 抗CD105-PE抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| 抗CD34-PE抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| 抗CD45-FITC抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| CD79a-PE抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| HLA-DR-PE抗体 | BD Pharmingen | -- | |
| 细胞追踪 | PKH26荧光染料 | Sigma | -- |
| 血清分析 | 肌酸激酶试剂盒 | Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| TNF-α、IL-6、IL-10 ELISA试剂盒 | Elabscience | -- | |
| 组织学分析 | Masson三色染色 | -- | -- |
| 免疫荧光染色 | 小鼠抗CD206抗体 | Santa Cruz | sc-58986 |
| Western blotting | RIPA裂解缓冲液 | Biosharp | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Biosharp | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 抗微管蛋白抗体 | CST | 5335S | |
| 抗剪切型caspase3抗体 | CST | 9664S | |
| 抗caspase3抗体 | CST | 9662S | |
| 抗Bax抗体 | CST | 14796S | |
| 抗Bcl-2抗体 | CST | 3498S | |
| 抗CD68抗体 | Santa Cruz | sc-20060 | |
| ECL化学发光试剂盒 | Millipore | -- | |
| RNA提取与PCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| PrimeScript反转录试剂盒 | Yeason | -- | |
| SYBR荧光定量PCR混合液 | Yeason | -- | |
| Mx3000P实时荧光定量PCR系统 | Agilent Technologies | -- | |
| 免疫组化 | 辣根过氧化物酶标记的二抗 | Boster | -- |
| 亲和素-生物素-过氧化物酶复合物 | Boster | -- | |
| DAB底物显色液 | Vectorlabs | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| ESC-MSCs制备 | 细胞分化、培养条件(培养基、血清、时间)、传代代数(P4) 阅读提示:参见Methods中'ESC-MSCs preparation and identification' |
| ACS模型建立 | 大鼠品系、性别、体重;压力(80±10mmHg)、时间(2小时);麻醉方式(3%戊巴比妥钠腹腔注射) 阅读提示:参见Methods中'Establishment of the ACS animal model' |
| ESC-MSCs治疗与评估 | 细胞剂量(1.2×10^6)、给药途径(阴茎背静脉)、时间(筋膜切开术后立即);检测时间点(1、3、7天);评估指标(水肿指数、CK、ELISA、组织学等) 阅读提示:参见Methods中'Experimental design' 和 Figure 3-6 legend |
| 巨噬细胞极化检测 | 标记物(CD68、CD86、CD206);检测方法(Western blot、免疫荧光、qPCR);时间点(0h, 1d, 3d, 5d, 7d) 阅读提示:参见Methods中'Part 2'和Figure 7 legend |
| 巨噬细胞耗竭 | LC剂量(5mg/ml, 1ml)、给药时间(ACS前1天和后1天)、给药途径(静脉);对照(LV) 阅读提示:参见Methods中'Macrophages depletion'和Figure 8 legend |