临床样本中TAMs的染色质可及性分析
鉴定TAMs中与单核细胞相比差异开放的染色质区域,并预测关键转录因子。
从PDAC组织分离CD206+ TAMs和外周血CD14+单核细胞,进行ATAC-seq分析;用HOMER进行基序分析。
The CTCF/LncRNA-PACERR complex recruits E1A binding protein p300 to induce pro-tumour macrophages in pancreatic ductal adenocarcinoma via directly regulating PTGS2 expression.
包含患者样本分离TAMs的ATAC-seq、THP1来源TAMs的体外功能实验、小鼠肝转移模型、ChIP-seq/ChIRP-seq等多组学分析及RIP/RNA pull-down等机制验证,实验层级丰富。
人PDAC组织分离的CD206+ TAMs THP1细胞诱导分化的TAM模型 BALB/c裸鼠和C57BL/6小鼠肝转移模型 小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)
CTCF和PACERR的敲低是否成功(通过qPCR和Western blot验证) THP1细胞PMA分化及与PANC-1/PATU-8988共培养条件 M2标志物(CD206、CD163等)和M1标志物的表达变化 Transwell实验中Matrigel浓度、细胞数和培养时间 小鼠模型中PANC-1或PAN02细胞与巨噬细胞共注射的细胞比例和数量
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
鉴定TAMs中与单核细胞相比差异开放的染色质区域,并预测关键转录因子。
从PDAC组织分离CD206+ TAMs和外周血CD14+单核细胞,进行ATAC-seq分析;用HOMER进行基序分析。
评估CTCF+ TAMs浸润水平与PDAC患者预后的关系。
对110例PDAC患者的组织芯片进行CD68、CD206和CTCF免疫组化染色,根据CTCF+ TAMs比例分组,进行Kaplan-Meier生存分析。
验证CTCF在调控TAMs M2极化和促肿瘤功能中的作用。
用慢病毒敲低THP-1细胞中的CTCF,经PMA诱导分化为巨噬细胞并与PDAC细胞共培养,检测M2标志物表达、细胞因子分泌、肿瘤细胞侵袭迁移能力;在体内小鼠模型中验证。
揭示CTCF调控的基因表达和表观遗传变化,并寻找关键下游靶标。
对CTCF敲低或对照的THP-1来源TAMs进行RNA-seq、ChIP-seq(CTCF、H3K27ac、H3K9ac、H3K27me3)和ATAC-seq,整合分析差异表达基因和表观修饰变化,最终聚焦PTGS2和PACERR。
验证CTCF直接结合PTGS2启动子并调控其表达,同时影响PACERR表达。
通过ChIP-qPCR检测CTCF结合;qPCR和Western blot检测敲低CTCF后PTGS2和PACERR的表达;分析染色质修饰状态。
探究PACERR是否作为核内LncRNA结合PTGS2启动子并正调控其表达。
通过细胞分级和FISH检测PACERR定位;ChIRP-seq分析PACERR全基因组结合位点;敲低PACERR后检测PTGS2表达和启动子结合变化;双荧光素酶报告实验验证相互作用。
验证PACERR在TAMs M2极化和促肿瘤功能中的必要性。
敲低PACERR后检测M2标志物、细胞因子、肿瘤细胞侵袭迁移能力;在PACERR敲低的基础上过表达PTGS2或CTCF,观察表型是否恢复。
阐明CTCF和PACERR是否形成复合物并招募EP300至PTGS2启动子,以及EP300对组蛋白乙酰化和基因转录的作用。
通过RIP验证CTCF结合PACERR;RNA pull-down验证PACERR结合CTCF;Co-IP检测CTCF-EP300复合物;ChIP-qPCR检测EP300和H3K27ac在PTGS2启动子的富集;敲低EP300后检测PTGS2表达。
验证CTCF、PACERR和EP300在临床TAMs中的共定位以及作为预后标志物的价值。
对PDAC组织芯片进行四色IF和FISH染色,分析共定位;基于TCGA数据和110例PDAC患者生存数据,分析多基因signature与预后的关系。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 流式细胞术 | CD206-PE抗体 | BD Pharmingen | 555954 |
| CD11b-PE抗体 | BD Pharmingen | 557321 | |
| 细胞分选 | CD14微磁珠 | Miltenyi | 130-050-201 |
| 细胞培养 | 佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯 | -- | -- |
| 细胞转染 | 脂质体转染试剂2000 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 慢病毒转导 | 聚凝胺 | Gene-Chem | -- |
| 稳定细胞系筛选 | 嘌呤霉素 | Sangon Biotech | -- |
| Transwell实验 | 基质胶 | BD | -- |
| 免疫荧光 | DAPI | -- | -- |
| 免疫组化 | CTCF抗体 | CST | 3418 |
| CD206抗体 | CST | 24595 | |
| CD68抗体 | CST | 76437 | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| PARIS试剂盒 | Invitrogen | -- | |
| RT-qPCR | HiScript III-RT SuperMix | Vazyme Biotech | -- |
| AceQ通用SYBR qPCR预混液 | Vazyme Biotech | -- | |
| qPCR | GAPDH引物 | -- | -- |
| β-肌动蛋白引物 | -- | -- | |
| U6引物 | -- | -- | |
| Western blot | 蛋白质印迹/免疫沉淀裂解液 | Beyotime | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| CTCF抗体 | Abcam | ab26271 | |
| COX2抗体 | Abcam | ab16895 | |
| GAPDH抗体 | CST | 3936 | |
| β-微管蛋白抗体 | CST | 2128 | |
| EP300抗体 | Abcam | ab275378 | |
| ELISA | 人IL-10 ELISA试剂盒 | -- | -- |
| 人TGF-β ELISA试剂盒 | -- | -- | |
| 人精氨酸酶-1 ELISA试剂盒 | -- | -- | |
| 荧光素酶报告实验 | 细胞裂解液 | Vazyme Biotech | -- |
| 酶标仪 | BioTek | -- | |
| 流式细胞术 | Fc受体阻断剂 | Biolegend | 422302 |
| CD163-PE抗体 | Biolegend | 333605 | |
| CD206-APC抗体 | Biolegend | 321109 | |
| RNA-seq | RNeasy小型试剂盒 | QIAGEN | -- |
| ATAC-seq | Tn5转座体 | Vazyme Biotech | -- |
| ChIP | H3K27ac抗体 | Abcam | ab4729 |
| H3K27me3抗体 | CST | 9733S | |
| CTCF抗体 | Millipore | 07-729 | |
| H3K9ac抗体 | CST | 9649 | |
| H3K4me抗体 | CST | 5326 | |
| ChIP-seq | VAHTS通用DNA文库制备试剂盒(Illumina V3) | Vazyme Biotech | -- |
| RIP | MagnaRIP RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒 | Millipore | -- |
| IgG抗体 | Elabscience | E-AB-1034 | |
| FLAG抗体 | CST | 14793 | |
| Co-IP | 蛋白酶抑制剂 | NCM Biotech | -- |
| 蛋白A磁珠 | Invitrogen | -- | |
| 荧光显微镜 | SP-8共聚焦显微镜 | Leica | -- |
| RNA-FISH | PACERR寡核苷酸探针 | Servicebio Technology | -- |
| 荧光显微镜 | Zeiss | -- | |
| Western blot | Tanon-5200化学发光成像系统 | Tanon | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| TAMs分离 | CD206阳性选择、CD14阳性选择、组织采集时间(10分钟内) 阅读提示:Methods 2.1 Clinical samples |
| 细胞培养和分化 | THP-1培养条件(RPMI-1640, 10% FBS)、PMA浓度(100 ng/ml)和处理时间(48小时)、共培养细胞系(PANC-1, PATU-8988) 阅读提示:Methods 2.2 Cell culture and reagents |
| 基因敲低 | 慢病毒载体(LV3-pGLV-GFP-puromycin)、MOI(100)、polybrene浓度(5 μg/ml)、嘌呤霉素筛选浓度(5 μg/ml) 阅读提示:Methods 2.4 Plasmids and stable cell lines, 2.5 Lentivirus production and transduction |
| Transwell侵袭和迁移实验 | 细胞数(5×10^5 PANC-1, 3×10^5 THP-1)、Matrigel浓度(1.25 mg/ml)、培养时间(1天或2天) 阅读提示:Methods 2.7 Transwell invasion and migration assay |
| 小鼠肝转移模型 | 小鼠品系和年龄(BALB/c nude, C57BL/6, 6周龄)、注射细胞数和比例(1×10^7 PANC-1 + 5×10^6 THP-1;1×10^7 PAN02 + 5×10^6 BMDM)、脾内注射 阅读提示:Methods 2.11 Tumour xenograft assay |
| ChIP-qPCR | 抗体(CTCF, H3K27ac, H3K27me3, H3K9ac, EP300)、PCR扩增循环数(45循环) 阅读提示:Methods 2.20 Chromatin immunoprecipitation |