CTCF/LncRNA-PACERR复合物招募E1A结合蛋白p300,通过直接调控PTGS2表达诱导胰腺导管腺癌中的促肿瘤巨噬细胞

The CTCF/LncRNA-PACERR complex recruits E1A binding protein p300 to induce pro-tumour macrophages in pancreatic ductal adenocarcinoma via directly regulating PTGS2 expression.

作者信息Yihao Liu, Xuelong Wang, Youwei Zhu, Yizhi Cao, Liwen Wang, Fanlu Li, Yu Zhang, Ying Li, Zhiqiang Zhang, Jiaxin Luo, Xiaxing Deng, Chenghong Peng, Gang Wei, Hao Chen, Baiyong Shen
PMID35184402
发布时间2022-02
DOI10.1002/ctm2.654

实验完整度

包含患者样本分离TAMs的ATAC-seq、THP1来源TAMs的体外功能实验、小鼠肝转移模型、ChIP-seq/ChIRP-seq等多组学分析及RIP/RNA pull-down等机制验证,实验层级丰富。

主要模型

人PDAC组织分离的CD206+ TAMs THP1细胞诱导分化的TAM模型 BALB/c裸鼠和C57BL/6小鼠肝转移模型 小鼠骨髓来源巨噬细胞(BMDMs)

重点核对

CTCF和PACERR的敲低是否成功(通过qPCR和Western blot验证) THP1细胞PMA分化及与PANC-1/PATU-8988共培养条件 M2标志物(CD206、CD163等)和M1标志物的表达变化 Transwell实验中Matrigel浓度、细胞数和培养时间 小鼠模型中PANC-1或PAN02细胞与巨噬细胞共注射的细胞比例和数量

摘要

背景:肿瘤相关巨噬细胞(TAMs)在促进胰腺导管腺癌(PDAC)进展中发挥重要作用。本研究旨在探讨PDAC肿瘤微环境中调控促肿瘤M2极化TAMs的表观遗传机制。方法:本研究基于PDAC组织中分离的离体TAMs和体外THP1来源的TAM模型。采用RNA测序(RNA-seq)、转座酶可及染色质测序和染色质免疫沉淀测序研究基因表达、染色质可及性、转录因子结合位点和组蛋白修饰。用慢病毒在THP1来源的TAMs中进行基因敲低,并通过体外和体内功能实验研究THP1来源的TAMs对PDAC细胞侵袭和转移能力的影响。通过染色质分离RNA纯化测序分析RNA-染色质相互作用。通过RNA免疫沉淀和RNA pull-down研究RNA-蛋白相互作用。结果:我们的数据显示,与单核细胞相比,转录因子CTCF在TAMs中高表达,并预测显著富集于超可及染色质区域。CTCF+ TAMs的高浸润与PDAC患者的不良预后显著相关。在THP1来源的TAMs中敲低CTCF导致M2极化TAMs的特异性标志物(包括CD206和CD163)下调。CTCF敲低的THP1来源TAMs显示出降低的侵袭和转移能力。进一步的多组学数据整合分析揭示,前列腺素内过氧化物合酶2(PTGS2)和PTGS2反义NF-κB1复合物介导的表达调控RNA(PACERR)是CTCF的关键下游靶标,且彼此正相关,它们在染色体上紧密相邻。敲低PACERR表现出与CTCF敲低的THP1来源TAMs相似的表型。此外,PACERR可直接结合CTCF,并招募组蛋白乙酰转移酶E1A结合蛋白p300至PACERR和PTGS2的启动子区域,从而增强组蛋白乙酰化和基因转录,促进PDAC中TAMs的M2极化。结论:我们的研究揭示了PDAC肿瘤微环境中促进促肿瘤M2极化TAMs的新型表观遗传调控机制。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
PDAC肿瘤微环境中TAMs向促肿瘤M2极化的表观遗传调控机制是什么?
核心机制
CTCF在TAMs中高表达,转录激活LncRNA-PACERR,PACERR与CTCF直接结合形成复合物,招募组蛋白乙酰转移酶EP300至PTGS2启动子区域,增强组蛋白乙酰化(H3K27ac和H3K9ac),增加染色质可及性,从而上调PTGS2表达,促进M2极化和促肿瘤功能。
主要证据
通过ATAC-seq发现CTCF基序富集;CTCF或PACERR敲低导致M2标志物下调并抑制肿瘤细胞侵袭迁移;ChIP-seq和ChIRP-seq显示CTCF和PACERR结合PTGS2启动子;RIP和RNA pull-down证明CTCF-PACERR互作;Co-IP证明CTCF-EP300复合物形成;ChIP-qPCR显示EP300招募依赖CTCF/PACERR;小鼠肝转移模型验证功能。
研究意义
该研究揭示了TAMs中PTGS2表达的新型表观遗传调控机制,为设计干扰TAMs促肿瘤功能的治疗策略提供了依据,特别是通过靶向LncRNA-PACERR或CTCF/PACERR复合物来调控PTGS2表达,可能避免现有COX-2抑制剂的脱靶副作用。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本中TAMs的染色质可及性分析

鉴定TAMs中与单核细胞相比差异开放的染色质区域,并预测关键转录因子。

从PDAC组织分离CD206+ TAMs和外周血CD14+单核细胞,进行ATAC-seq分析;用HOMER进行基序分析。

2

CTCF表达与临床预后关联分析

评估CTCF+ TAMs浸润水平与PDAC患者预后的关系。

对110例PDAC患者的组织芯片进行CD68、CD206和CTCF免疫组化染色,根据CTCF+ TAMs比例分组,进行Kaplan-Meier生存分析。

3

CTCF敲低对TAMs M2极化和促肿瘤功能的影响

验证CTCF在调控TAMs M2极化和促肿瘤功能中的作用。

用慢病毒敲低THP-1细胞中的CTCF,经PMA诱导分化为巨噬细胞并与PDAC细胞共培养,检测M2标志物表达、细胞因子分泌、肿瘤细胞侵袭迁移能力;在体内小鼠模型中验证。

4

多组学整合分析鉴定CTCF下游靶基因

揭示CTCF调控的基因表达和表观遗传变化,并寻找关键下游靶标。

对CTCF敲低或对照的THP-1来源TAMs进行RNA-seq、ChIP-seq(CTCF、H3K27ac、H3K9ac、H3K27me3)和ATAC-seq,整合分析差异表达基因和表观修饰变化,最终聚焦PTGS2和PACERR。

5

验证CTCF对PTGS2和PACERR表达的调控

验证CTCF直接结合PTGS2启动子并调控其表达,同时影响PACERR表达。

通过ChIP-qPCR检测CTCF结合;qPCR和Western blot检测敲低CTCF后PTGS2和PACERR的表达;分析染色质修饰状态。

6

PACERR对PTGS2的顺式调控作用

探究PACERR是否作为核内LncRNA结合PTGS2启动子并正调控其表达。

通过细胞分级和FISH检测PACERR定位;ChIRP-seq分析PACERR全基因组结合位点;敲低PACERR后检测PTGS2表达和启动子结合变化;双荧光素酶报告实验验证相互作用。

7

PACERR敲低对TAMs表型和功能的影响

验证PACERR在TAMs M2极化和促肿瘤功能中的必要性。

敲低PACERR后检测M2标志物、细胞因子、肿瘤细胞侵袭迁移能力;在PACERR敲低的基础上过表达PTGS2或CTCF,观察表型是否恢复。

8

CTCF-PACERR相互作用及EP300招募机制

阐明CTCF和PACERR是否形成复合物并招募EP300至PTGS2启动子,以及EP300对组蛋白乙酰化和基因转录的作用。

通过RIP验证CTCF结合PACERR;RNA pull-down验证PACERR结合CTCF;Co-IP检测CTCF-EP300复合物;ChIP-qPCR检测EP300和H3K27ac在PTGS2启动子的富集;敲低EP300后检测PTGS2表达。

9

临床样本中CTCF、PACERR和EP300共定位及预后分析

验证CTCF、PACERR和EP300在临床TAMs中的共定位以及作为预后标志物的价值。

对PDAC组织芯片进行四色IF和FISH染色,分析共定位;基于TCGA数据和110例PDAC患者生存数据,分析多基因signature与预后的关系。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
CD206-PE抗体BD Pharmingen555954
CD11b-PE抗体BD Pharmingen557321
CD14微磁珠Miltenyi130-050-201
佛波醇12-十四酸酯13-乙酸酯----
脂质体转染试剂2000Thermo Fisher Scientific--
聚凝胺Gene-Chem--
嘌呤霉素Sangon Biotech--
基质胶BD--
DAPI----
CTCF抗体CST3418
CD206抗体CST24595
CD68抗体CST76437
TRIzol试剂Invitrogen--
PARIS试剂盒Invitrogen--
HiScript III-RT SuperMixVazyme Biotech--
AceQ通用SYBR qPCR预混液Vazyme Biotech--
GAPDH引物----
β-肌动蛋白引物----
U6引物----
蛋白质印迹/免疫沉淀裂解液Beyotime--
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime--
CTCF抗体Abcamab26271
COX2抗体Abcamab16895
GAPDH抗体CST3936
β-微管蛋白抗体CST2128
EP300抗体Abcamab275378
人IL-10 ELISA试剂盒----
人TGF-β ELISA试剂盒----
人精氨酸酶-1 ELISA试剂盒----
细胞裂解液Vazyme Biotech--
酶标仪BioTek--
Fc受体阻断剂Biolegend422302
CD163-PE抗体Biolegend333605
CD206-APC抗体Biolegend321109
RNeasy小型试剂盒QIAGEN--
Tn5转座体Vazyme Biotech--
H3K27ac抗体Abcamab4729
H3K27me3抗体CST9733S
CTCF抗体Millipore07-729
H3K9ac抗体CST9649
H3K4me抗体CST5326
VAHTS通用DNA文库制备试剂盒(Illumina V3)Vazyme Biotech--
MagnaRIP RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒Millipore--
IgG抗体ElabscienceE-AB-1034
FLAG抗体CST14793
蛋白酶抑制剂NCM Biotech--
蛋白A磁珠Invitrogen--
SP-8共聚焦显微镜Leica--
PACERR寡核苷酸探针Servicebio Technology--
荧光显微镜Zeiss--
Tanon-5200化学发光成像系统Tanon--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
TAMs分离
CD206阳性选择、CD14阳性选择、组织采集时间(10分钟内)
阅读提示:Methods 2.1 Clinical samples
细胞培养和分化
THP-1培养条件(RPMI-1640, 10% FBS)、PMA浓度(100 ng/ml)和处理时间(48小时)、共培养细胞系(PANC-1, PATU-8988)
阅读提示:Methods 2.2 Cell culture and reagents
基因敲低
慢病毒载体(LV3-pGLV-GFP-puromycin)、MOI(100)、polybrene浓度(5 μg/ml)、嘌呤霉素筛选浓度(5 μg/ml)
阅读提示:Methods 2.4 Plasmids and stable cell lines, 2.5 Lentivirus production and transduction
Transwell侵袭和迁移实验
细胞数(5×10^5 PANC-1, 3×10^5 THP-1)、Matrigel浓度(1.25 mg/ml)、培养时间(1天或2天)
阅读提示:Methods 2.7 Transwell invasion and migration assay
小鼠肝转移模型
小鼠品系和年龄(BALB/c nude, C57BL/6, 6周龄)、注射细胞数和比例(1×10^7 PANC-1 + 5×10^6 THP-1;1×10^7 PAN02 + 5×10^6 BMDM)、脾内注射
阅读提示:Methods 2.11 Tumour xenograft assay
ChIP-qPCR
抗体(CTCF, H3K27ac, H3K27me3, H3K9ac, EP300)、PCR扩增循环数(45循环)
阅读提示:Methods 2.20 Chromatin immunoprecipitation