建立IUGR断奶仔猪模型并分组
建立宫内生长受限(IUGR)断奶仔猪模型,并设置正常对照和DMG-Na补充组,以研究DMG-Na的作用。
选择10头NBW新生仔猪和20头IUGR新生仔猪,21日龄断奶后分为3组:NBWC(标准日粮)、IUGRC(标准日粮)、IUGRD(标准日粮+0.1% DMG-Na),每组10头,49日龄屠宰。
Dietary dimethylglycine sodium salt supplementation alleviates redox status imbalance and intestinal dysfunction in weaned piglets with intrauterine growth restriction.
研究包含动物模型(IUGR断奶仔猪)、组织学、ELISA、qPCR、Western blot等多层次验证,并进行了功能验证(生长性能、肠道形态、炎症因子、消化酶)和机制验证(SIRT1/PGC1α通路)。
宫内生长受限(IUGR)断奶仔猪模型 正常出生体重(NBW)断奶仔猪对照组
仔猪出生体重:IUGR组0.76 ± 0.06 kg,NBW组1.53 ± 0.04 kg 日粮处理:IUGRD组添加0.1% DMG-Na(99.9%纯度) 分组及样本量:3组,每组10头 屠宰日龄:49日龄
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
建立宫内生长受限(IUGR)断奶仔猪模型,并设置正常对照和DMG-Na补充组,以研究DMG-Na的作用。
选择10头NBW新生仔猪和20头IUGR新生仔猪,21日龄断奶后分为3组:NBWC(标准日粮)、IUGRC(标准日粮)、IUGRD(标准日粮+0.1% DMG-Na),每组10头,49日龄屠宰。
评估IUGR对生长性能和空肠组织形态的影响,以及DMG-Na补充的改善作用。
测定ADG、ADFI、G:F比,通过透射电镜和HE染色观察空肠微绒毛、组织形态,测量绒毛长度、宽度、隐窝深度和绒毛面积。
评估IUGR对血清免疫球蛋白和空肠炎症因子的影响,以及DMG-Na的调节作用。
用ELISA检测血清IgA、IgG、IgM和空肠sIgA浓度,以及空肠炎症因子IL-1β、IL-6、IL-8、TNF-α浓度。
评估IUGR对空肠消化酶活性的影响,以及DMG-Na的改善作用。
测定空肠消化酶(蔗糖酶、麦芽糖酶、乳糖酶、淀粉酶、脂肪酶、胰蛋白酶)活性。
评估IUGR对血清和空肠氧化还原状态的影响,以及DMG-Na的改善作用。
测定血清和空肠中SOD、GSH-Px、GSH、GR、CAT活性和MDA含量,蛋白含量用BCA试剂盒测定。
评估IUGR对空肠线粒体氧化还原状态和功能的影响,以及DMG-Na的改善作用。
分离空肠线粒体,测定MnSOD、GSH-Px、GSH、γ-GCL活性,ROS水平,线粒体膜电位(MMP),凋亡和坏死细胞,ATP含量,mtDNA拷贝数。
评估IUGR对空肠氧化还原、细胞粘附、线粒体功能相关基因表达的影响,以及DMG-Na的改善作用。
用qPCR检测氧化还原相关基因(Nrf2、HO1、Cu/ZnSOD、GSH-Px、MnSOD、γ-GCLc、γ-GCLm、Trx2、Trx-R2、Prx3、Sirt1、PGC1α)、细胞粘附相关基因(OCLN、CLDN2、CLDN3、ZO1)和线粒体功能相关基因(MCD、MCAD、SDH、UCP2、COX2、CS、COX1、Cyt C、ERRα、MHC1、mtTFA、Ndufa2、NRF1、UCP1、POLG1、POLG2、SSBP1、Drp1、Fis1、Mfn2)的表达。
评估IUGR对空肠氧化还原和线粒体功能相关蛋白表达的影响,以及DMG-Na的改善作用。
用Western blot检测Nrf2、HO1、SOD、GSH-Px、Sirt1、PGC1α、Cyt C、ERRα、mtTFA、NRF1、Mfn2、Drp1、Fis1的蛋白表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 日粮处理 | 二甲基甘氨酸钠 | Qilu Sheng Hua Pharmaceutical Co., Ltd. | -- |
| 组织形态学 | 透射电子显微镜 | Philips | -- |
| 免疫球蛋白检测 | IgA ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| IgG ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| IgM ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| sIgA ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| 炎症因子检测 | IL-1β ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology Co. Ltd | -- |
| IL-6 ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology Co. Ltd | -- | |
| IL-8 ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology Co. Ltd | -- | |
| TNF-α ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology Co. Ltd | -- | |
| 氧化还原状态检测 | SOD检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| GSH-Px检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| GSH检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| MDA检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| 线粒体分离 | 线粒体分离试剂盒 | Solarbio | -- |
| 线粒体氧化还原状态 | MnSOD检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| γ-GCL检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| ROS检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- | |
| 线粒体功能 | MMP检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng Bioengineering Institute | -- |
| 细胞凋亡 | Alexa Fluor 488 Annexin V/死细胞凋亡试剂盒 | Thermo Fisher Scientific, Inc. | -- |
| 氧化损伤检测 | 蛋白羰基ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Institute of Bioengineering | -- |
| 8-OHdG ELISA试剂盒 | Nanjing Jiancheng Institute of Bioengineering | -- | |
| 线粒体功能 | ATP检测试剂盒 | Solarbio | -- |
| SYBR Premix Ex Taq II | Takara Bio, Inc. | -- | |
| 基因表达 | Trizol试剂盒 | TaKaRa | -- |
| SYBR PrimeScript RT-PCR试剂盒 | TaKaRa | -- | |
| ABI 7300 Fast实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| 蛋白提取 | RIPA裂解缓冲液 | Beyotime Institute of Biotechnology | -- |
| 核蛋白提取试剂盒 | Beyotime Institute of Biotechnology | -- | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Institute of Biotechnology | -- |
| Western blot | 一抗 | Cell Signaling Technology | Nrf2 (# 12721 S), HO1 (# 82206 S), SOD (# 37385 S), GSH-Px (# 3286 S), Sirt1 (# 9475 S), PGC1α (# 2178 S), Cyt C (# 11940S), ERRα (# 13826 S), mtTFA (# 8076 S), NRF1 (# 46743 S), Mfn2 (# 9482 S), Drp1 (# 8570 S), Fis1 (# 84580 S), Tubulin (# 2125 S) |
| 二抗(山羊抗兔IgG) | Cell Signaling Technology | # 7074 S | |
| ECL试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 发光图像分析仪LAS-4000系统 | Fujifilm Co. | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 实验设计与分组 | 仔猪出生体重(IUGR/正常),分组数量(每组10头),断奶日龄(21天),屠宰日龄(49天),日粮处理(IUGRD组添加0.1% DMG-Na) 阅读提示:参见Methods 2.1节 |
| 生长性能测定 | ADG、ADFI、G:F比,测定时间(49日龄,禁食12小时后) 阅读提示:参见Methods 2.1节和Results 3.1节 |
| 组织形态学评估 | 固定液(1%戊二醛、4%缓冲甲醛),透射电镜(Philips 420),组织处理(二甲苯、乙醇、石蜡),测量指标(绒毛长度、宽度、隐窝深度、面积) 阅读提示:参见Methods 2.2节 |
| 免疫球蛋白和炎症因子检测 | ELISA试剂盒(南京建成、Elabscience),上清制备(离心条件) 阅读提示:参见Methods 2.3和2.4节 |
| 消化酶活性测定 | 消化酶种类(蔗糖酶、麦芽糖酶、乳糖酶、淀粉酶、脂肪酶、胰蛋白酶),匀浆方法(PBS缓冲液) 阅读提示:参见Methods 2.5节 |
| 氧化还原状态测定 | 抗氧化酶(SOD、GSH-Px、GR、CAT),MDA、GSH水平,试剂盒品牌(南京建成) 阅读提示:参见Methods 2.6节 |
| 线粒体功能测定 | 线粒体分离方法,ROS检测(DCFH-DA),MMP(JC-1),凋亡/坏死(Annexin V),ATP和mtDNA检测 阅读提示:参见Methods 2.7节 |
| 基因表达分析 | RNA提取方法,qPCR条件,内参基因(β-actin),基因列表(附录表2) 阅读提示:参见Methods 2.8节和Results 3.8节 |
| 蛋白表达分析 | 蛋白提取方法,一抗种类和稀释度(1:1000),二抗稀释度(1:2000),内参蛋白(Tubulin) 阅读提示:参见Methods 2.9节 |
| 统计分析 | 数据表示(均值±SEM),统计方法(单因素方差分析、Tukey检验),显著性水平(P < 0.05) 阅读提示:参见Methods 2.10节 |