临床样本及细胞系中SNHG17表达分析
评估SNHG17在ESCC组织和细胞系中的表达水平及其与预后的关系。
使用GEO数据集(GSE20347)和GEPIA数据库分析SNHG17表达;在128对ESCC组织和配对癌旁组织中进行qRT-PCR检测SNHG17表达;在5种ESCC细胞系中检测SNHG17表达水平,并分析转录本变体。
SNHG17, as an EMT-related lncRNA, promotes the expression of c-Myc by binding to c-Jun in esophageal squamous cell carcinoma.
包含临床样本分析、体外细胞功能实验、机制验证(RIP、RNA pull-down、ChIP、荧光素酶报告基因)及体内异种移植瘤实验。
ESCC细胞系(TE1、Eca109、Kyse150、Kyse170、Yes2) BALB/c裸鼠异种移植瘤模型 128例ESCC患者组织样本及配对癌旁组织
SNHG17在ESCC组织和细胞系中的表达水平 TGF-β1诱导SNHG17表达及EMT标志物变化 SNHG17与c-Jun的相互作用及c-Myc启动子结合 SNHG17对c-Myc表达及PI3K/AKT通路的影响 体内肿瘤生长实验的肿瘤体积和重量
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估SNHG17在ESCC组织和细胞系中的表达水平及其与预后的关系。
使用GEO数据集(GSE20347)和GEPIA数据库分析SNHG17表达;在128对ESCC组织和配对癌旁组织中进行qRT-PCR检测SNHG17表达;在5种ESCC细胞系中检测SNHG17表达水平,并分析转录本变体。
验证SNHG17对ESCC细胞恶性表型的影响。
通过转染shSNHG17或过表达载体,使用MTS、集落形成、流式凋亡、Transwell实验检测细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭能力。
探究SNHG17是否参与TGF-β1介导的EMT过程。
用TGF-β1处理Eca109细胞,检测SNHG17表达和EMT标志物;敲低SNHG17后观察TGF-β1诱导的EMT变化。
鉴定SNHG17调控的关键信号通路和靶基因。
在sh-SNHG17或sh-NC转染的Eca109细胞中进行RNA-seq,并进行KEGG和GO富集分析,筛选差异表达基因。
确认SNHG17与c-Jun的直接相互作用及结合区域。
通过RNA pull-down和RIP实验验证SNHG17与c-Jun的结合;通过截短突变体确定结合区域。
阐明SNHG17如何调控c-Myc表达。
通过ChIP和荧光素酶报告基因实验验证c-Jun结合c-Myc启动子及SNHG17的作用;检测c-Myc及下游Twist1表达。
验证SNHG17在体内对肿瘤生长的作用。
将稳定过表达SNHG17的Eca109细胞皮下注射到裸鼠,监测肿瘤体积和重量,并通过qRT-PCR、Western blot和IHC分析肿瘤组织。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | Invitrogen | -- |
| 胎牛血清 | Invitrogen | -- | |
| 药物处理 | 转化生长因子-β1 | R&D Systems Inc | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| 逆转录 | 逆转录试剂盒 | Roche | -- |
| qRT-PCR | SYBR qPCR预混液 | Life Technology | -- |
| 细胞转染 | Lipofectamine 2000 | Invitrogen | -- |
| 细胞增殖检测 | CellTiter 96 AQueous 单溶液试剂 | Promega | -- |
| 凋亡检测 | PE-膜联蛋白V | BD Pharmingen | -- |
| 迁移侵袭实验 | Matrigel基底膜基质 | BD Biosciences | -- |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | -- |
| 抗兔IgG抗体 | SeeBio Biotechnology Company | 075-1506 | |
| c-Myc抗体 | Elabscience | E-AB-62131 | |
| AKT抗体 | Elabscience | E-AB-30465 | |
| p-AKT抗体 | Elabscience | E-AB-20802 | |
| ISH | SNHG17原位杂交试剂盒 | BOSTER Biological Technology Co. Ltd | MK10905-h |
| IHC | c-Myc抗体 | Abcam | ab32795 |
| Ki-67抗体 | Bioss | bs-23103R | |
| RNA分离 | PARIS蛋白质和RNA分离系统试剂盒 | Invitrogen | -- |
| RIP | Magna RIP RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒 | Millipore | -- |
| 抗c-Jun抗体 | Cell Signaling Technology | -- | |
| RNA pull-down | Pierce磁性RNA-蛋白质pull-down试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| RiboMAX大规模RNA生产系统 | Promega | -- | |
| 链霉亲和素磁珠 | Promega | -- | |
| 质粒构建 | Q5定点突变试剂盒 | New England Biolabs | -- |
| 荧光素酶报告基因 | 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | -- |
| 质粒构建 | pGL3-basic载体 | Promega | -- |
| pET-28a-His载体 | -- | -- | |
| 动物实验 | G-418 | Merck | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| SNHG17表达与预后分析 | ESCC样本量、配对癌旁组织的选取标准、SNHG17表达分组阈值(中位数) 阅读提示:方法2.2、结果3.1、图1 |
| 细胞培养与TGF-β1处理 | 细胞系、培养基、血清浓度、TGF-β1浓度(10 ng/mL)和处理时间(7天) 阅读提示:方法2.3、图3A |
| 细胞增殖、凋亡、迁移和侵袭实验 | 细胞接种密度、培养时间、试剂(MTS、Annexin V/7-AAD)、Transwell培养时间(24小时) 阅读提示:方法2.6-2.8 |
| SNHG17与c-Jun相互作用 | RNA pull-down和RIP的具体条件、抗体、细胞系 阅读提示:方法2.12-2.13、图5F-G |
| c-Jun结合c-Myc启动子验证 | ChIP条件、qPCR引物、荧光素酶报告基因的转染和检测时间(48小时) 阅读提示:方法2.14-2.15、图6D-E |
| 体内异种移植瘤实验 | 细胞数量、注射体积、小鼠品系和年龄、观察时间(30天)、每组n=8 阅读提示:方法2.16、图7D-E |