JMJD6通过招募RNF5促进活化IRF3的K48泛素化,负调控胞质RNA诱导的抗病毒信号

JMJD6 negatively regulates cytosolic RNA induced antiviral signaling by recruiting RNF5 to promote activated IRF3 K48 ubiquitination.

作者信息Wei Zhang, Qi Wang, Fan Yang, Zixiang Zhu, Yueyue Duan, Yang Yang, Weijun Cao, Keshan Zhang, Junwu Ma, Xiangtao Liu, Haixue Zheng
PMID33684176
发布时间2021-03-08
DOI10.1371/journal.ppat.1009366

实验完整度

包含细胞系敲低/敲除、过表达、体内小鼠模型、蛋白质组学、免疫共沉淀、泛素化分析等多层级功能与机制验证。

主要模型

HEK293T细胞 HeLa细胞 JMJD6敲除小鼠(piggyBac转基因) VSV感染模型

重点核对

JMJD6敲低/敲除对IFN-β产生的影响 JMJD6与IRF3的相互作用及其磷酸化依赖性 JMJD6对IRF3蛋白稳定性及泛素化的影响 RNF5在JMJD6介导的IRF3降解中的作用 小鼠体内JMJD6敲低对VSV感染抵抗力的影响

摘要

抗病毒免疫应答的负调控对于宿主维持稳态至关重要。含Jumonji结构域的蛋白6(JMJD6)此前被鉴定在RNA病毒感染中具有多种功能。在病毒RNA识别后,视黄酸诱导基因I样受体(RLRs)与线粒体抗病毒信号蛋白(MAVS)物理相互作用,并激活TANK结合激酶1(TBK1)以诱导I型干扰素(IFN-I)的产生。本文证明JMJD6降低响应胞质poly(I:C)和RNA病毒感染(包括仙台病毒(SeV)和水疱性口炎病毒(VSV))的I型干扰素(IFN-I)产生。JMJD6的遗传失活增强IFN-I产生并损害病毒复制。我们的无偏蛋白质组学筛选表明JMJD6以依赖RNF5的方式促进IRF3的K48泛素化降解。通过piggyBac转座子介导的基因转移删除JMJD6基因的小鼠显示出增强的VSV触发的IFN-I产生和对病毒易感性的降低。这些发现将JMJD6归类为宿主对胞质病毒RNA先天免疫应答的负调控因子。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
JMJD6如何调控RNA病毒诱导的IFN-I产生及其分子机制?
核心机制
JMJD6通过其中间结构域(氨基酸173-288)与活化的IRF3结合,并招募E3泛素连接酶RNF5,促进IRF3的K48连接多聚泛素化,进而通过蛋白酶体途径降解活化的IRF3,负调控先天免疫信号。
主要证据
过表达JMJD6抑制IFN-I产生;敲低/敲除JMJD6增强IFN-I产生;免疫共沉淀证明JMJD6与磷酸化IRF3相互作用;RNF5敲除及突变体实验证实RNF5参与IRF3泛素化降解;小鼠实验显示JMJD6敲低增强VSV抵抗。
研究意义
揭示了JMJD6作为宿主先天免疫应答负调控因子的新功能,为理解RNA病毒感染时免疫稳态的维持提供了机制,并可能部分解释癌细胞对病毒感染的易感性。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

验证JMJD6对IFN-I产生的抑制作用

确定JMJD6是否影响病毒或poly(I:C)诱导的IFN-I产生。

在HEK293T细胞中过表达JMJD6,检测IFN-β启动子、ISRE启动子活性以及内源性IFN-β和ISG mRNA水平。

2

验证JMJD6缺失对IFN-I产生的影响

确定内源性JMJD6是否抑制IFN-I产生。

使用siRNA敲低或CRISPR-Cas9敲除JMJD6,检测SeV或VSV感染后IFN-β和ISG表达、病毒复制。

3

鉴定JMJD6作用的信号节点

确定JMJD6抑制IFN-I产生的信号通路中靶向的分子。

在HEK293T细胞中过表达RIG-I、MDA5、MAVS、TBK1、IRF3或IRF7,检测JMJD6对IFN-β启动子激活的影响。

4

验证JMJD6对IRF3蛋白水平和磷酸化的影响

确定JMJD6是否通过影响IRF3表达来抑制信号。

在JMJD6敲除细胞中检测SeV感染后IRF3总蛋白和磷酸化水平。

5

验证JMJD6与IRF3的相互作用及其依赖性

确定JMJD6是否与活化的IRF3特异性结合。

通过免疫共沉淀检测JMJD6与IRF3野生型、IRF3-5D、IRF3-5A突变体及内源性IRF3在病毒感染或poly(I:C)刺激下的相互作用,并用λ磷酸酶处理验证磷酸化依赖性。

6

验证JMJD6促进IRF3降解及其机制

确定JMJD6是否通过蛋白酶体途径促进活化IRF3降解。

在过表达JMJD6的细胞中检测IRF3半衰期,使用MG132、CQ、Z-VAD-FMK处理确定降解途径,检测IRF3泛素化水平。

7

鉴定JMJD6招募的E3泛素连接酶

确定JMJD6促进IRF3 K48泛素化所依赖的E3连接酶。

通过亲和纯化-质谱鉴定JMJD6相互作用蛋白,验证RNF5与JMJD6的结合,检测RNF5对IRF3泛素化的影响,并通过RNF5敲除和回补实验验证其必要性。

8

验证体内JMJD6缺失对VSV感染的影响

确定JMJD6在体内抗病毒免疫中的作用。

利用piggyBac转座子系统在C57BL/6J小鼠肝脏中敲低JMJD6,尾静脉注射VSV,检测IFN-β、ISG表达及病毒载量。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco--
胎牛血清----
MG132Merck--
磷酸氯喹Sigma-Aldrich--
Z-VAD-FMKSigma-Aldrich--
聚肌胞苷酸Sigma-Aldrich--
抗p-IRF3抗体Cell Signaling Technology4947
抗IRF3抗体Cell Signaling Technology4302
抗p-TBK1抗体Cell Signaling Technology5483
抗TBK1抗体Cell Signaling Technology3013
抗泛素抗体Cell Signaling Technology3936
抗K63连接泛素抗体Cell Signaling Technology5621
抗K48连接泛素抗体Cell Signaling Technology8081
抗HA抗体Biolegend901513
抗Flag抗体Santa Cruz Biotechnologysc-166355
抗Myc抗体Santa Cruz Biotechnologysc-47694
抗β-actin抗体Santa Cruz Biotechnologysc-47778
抗JMJD6抗体(Abcam)Abcamab176172
抗JMJD6抗体(Proteintech)Proteintech16476-1-AP
抗GAPDH抗体Proteintech60004-1-Ig
Lipofectamine 2000转染试剂Invitrogen--
pcDNA3.1/myc-His A载体Invitrogen--
TRIzol试剂Invitrogen--
M-MLV逆转录酶Promega--
SYBR Premix ExTaq试剂TaKaRa--
Mx3005P实时荧光定量PCR系统Agilent Technologies--
小干扰RNAGenePharma--
pLV-ISRE-Puro载体Clontech--
psPAX2包装质粒Addgene12260
pMD2.G包膜质粒Addgene12259
嘌呤霉素GibcoA1113803
人IFN-β ELISA试剂盒ElabscienceE-EL-H0085c
小鼠IFN-β ELISA试剂盒MLBioml063095
Immobilon-P膜Millipore--
增强化学发光检测试剂Thermo--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与病毒感染
细胞系来源(HEK293T、HeLa)、培养条件(DMEM、10%FBS)、病毒株(VSV-GFP、SeV)及感染剂量(MOI)和时间
阅读提示:材料与方法:病毒和细胞
基因敲低与敲除
siRNA序列及浓度、sgRNA序列、转染试剂、筛选药物(嘌呤霉素)及浓度
阅读提示:材料与方法:RNA干扰、CRISPR-Cas9敲除
过表达与报告基因实验
质粒种类及量(报告质粒、表达质粒、内参)、转染试剂及时间、SeV感染时间、双荧光素酶检测
阅读提示:材料与方法:转染和报告基因实验
蛋白相互作用与降解实验
抗体(p-IRF3、IRF3、Myc、Flag等)、免疫共沉淀条件、CHX浓度及时间、MG132浓度、λPPase处理条件
阅读提示:材料与方法:免疫共沉淀和Western blot、体外λ蛋白磷酸酶处理
体内小鼠实验
小鼠品系(C57BL/6J)、年龄(6周龄)、性别(雄性)、每组数量(5只)、piggyBac转座子注射剂量(12μg+4μg)、VSV感染剂量(5×10^7 PFU/只)及途径(尾静脉)
阅读提示:材料与方法:PiggyBac敲低转基因(TG)小鼠