GPER1作为MASLD的治疗靶点:激动剂G1在临床前模型中减轻脂肪变性的证据

GPER1 as a therapeutic target in MASLD: evidence for steatosis attenuation by agonist G1 in preclinical models.

作者信息Yifang Li, Jian Jiao
PMID41929249
发布时间2026-03-18
DOI10.3389/fphar.2026.1764287

实验完整度

该研究包含人体肝脏样本、体外细胞模型和动物模型等多个独立证据层级,并通过功能验证(G1/G15处理)和机制验证(蛋白质组学、Co-IP)支持结论。

主要模型

C57BL/6J小鼠Western diet诱导的MASLD模型 HepG2和Huh7细胞游离脂肪酸(FFA)诱导的肝细胞脂肪变性模型 人类肝脏样本(正常与MASLD组)

重点核对

G1给药剂量:200 μg/天,每周三次,皮下注射,共9周 FFA处理浓度:1 mM(油酸钠:棕榈酸钠 = 2:1),处理24小时 G1和G15处理浓度:1 μM,处理6小时 动物模型:6周龄雌性C57BL/6J小鼠,喂食西方饮食(WD)12周诱导MASLD 人类肝脏样本分级:基于H&E染色,脂肪变性≥34%为MASLD组(G3),<5%为正常组(G0/G1)

摘要

背景:代谢功能障碍相关脂肪性肝病(MASLD)是肝脏相关发病率和死亡率的主要原因。绝经前女性患MASLD的风险低于绝经后女性。G蛋白偶联雌激素受体1(GPER1)发挥肝脏保护作用,GPER1特异性激动剂(G1)在改善代谢紊乱方面已显示出临床前潜力。然而,G1的代谢益处和GPER1在人类肝脏组织中的临床相关性的临床研究仍不清楚。本研究旨在通过验证G1在改善MASLD相关肝脏脂肪变性中的功效、探索其分子机制并阐明GPER1与人类MASLD的关联,来弥合基础与临床研究之间的差距。方法:我们研究了GPER1在人类肝脏组织中的表达及其与脂肪变性严重程度的相关性。通过体外(使用游离脂肪酸诱导的肝细胞脂肪变性模型,用GPER1激动剂G1或拮抗剂G15处理)和体内实验验证了GPER1的功能,并评估了脂质代谢相关基因、活性氧和细胞凋亡。通过蛋白质组学测序和免疫共沉淀鉴定了GPER1相关蛋白。结果:GPER1在MASLD患者中低表达,与脂肪变性严重程度呈负相关。G1上调GPER1,减轻肝细胞脂肪变性和脂质沉积,调节脂质代谢相关蛋白,改善肝脏脂肪变性,并与GAIP相互作用蛋白C末端1(GIPC1)相互作用。G15拮抗这些有益作用。结论:基于临床数据,本研究表明低GPER1表达与MASLD中的肝脏脂肪变性密切相关。GPER1激动剂G1通过多种GPER1依赖性机制改善肝脏脂肪变性,包括调节脂质代谢、抑制氧化应激和减少细胞凋亡。值得注意的是,GIPC1可能参与GPER1介导的调节通路,其在这种情况下的作用值得进一步研究。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
GPER1在人类MASLD中的表达及其与脂肪变性的关系,以及GPER1激动剂G1能否在临床前模型中改善MASLD相关肝脂肪变性及其机制。
核心机制
GPER1激活通过调节脂质代谢(抑制脂肪合成、促进脂肪氧化)、抑制氧化应激和减少细胞凋亡等多重机制减轻肝脂肪变性;GIPC1可能与GPER1相互作用参与该过程。
主要证据
临床样本中GPER1低表达与脂肪变性程度负相关;体外FFA诱导的肝细胞模型中G1上调GPER1、减少脂质沉积、ROS和凋亡;体内WD小鼠模型中G1改善肝脏脂质沉积和血清/肝脏脂质水平;Co-IP证实GPER1与GIPC1相互作用。
研究意义
该研究为靶向GPER1治疗MASLD提供了临床前概念验证,并首次通过蛋白质组学筛选发现GIPC1与GPER1结合,为MASLD干预和药物开发提供理论支持。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

人体样本分析

评估GPER1在人类肝脏组织中的表达及其与MASLD和脂肪变性严重程度的相关性

收集14例人类肝脏样本(正常和MASLD),通过H&E和油红O染色评估脂肪变性,免疫组化、Western blot、RT-qPCR检测GPER1表达,并进行相关性分析

2

体外细胞模型建立

建立游离脂肪酸(FFA)诱导的肝细胞脂肪变性模型,并验证GPER1表达变化

HepG2和Huh7细胞用1 mM FFA(油酸钠:棕榈酸钠=2:1)处理24小时诱导脂肪变性,Western blot、RT-qPCR、免疫荧光检测GPER1表达

3

体外功能验证(G1和G15处理)

验证GPER1激动剂G1和拮抗剂G15对肝细胞脂肪变性、脂质沉积、ROS和凋亡的影响

FFA诱导后用G1(1 μM)或G15(1 μM)处理6小时,检测油红O染色、TG/TC水平、脂肪酸合成和氧化相关基因/蛋白表达、ROS水平和凋亡率

4

体内动物模型验证

验证G1在西方饮食(WD)诱导的MASLD小鼠模型中的保护作用

C57BL/6J雌性小鼠喂食WD 12周,第4周后皮下注射G1(200 μg/天,每周三次)或溶剂,检测肝/体重、组织学(H&E、油红O、Masson)、血清/肝脏脂质水平、蛋白表达

5

机制探索:蛋白质组学和Co-IP

鉴定G1处理上调的蛋白,并验证GPER1与GIPC1的相互作用

对FFA诱导的HepG2细胞进行无标记定量蛋白质组学(LC-MS/MS),筛选差异蛋白;通过Western blot、RT-qPCR验证GIPC1表达;通过Co-IP验证GPER1与GIPC1相互作用

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Zhong Qiao Xin Zhou Biotechnology--
青霉素链霉素溶液Zhong Qiao Xin Zhou Biotechnology--
胎牛血清Zhong Qiao Xin Zhou Biotechnology--
无脂肪酸牛血清白蛋白Solarbio Science & TechnologyA8850
油红O染料Solarbio Science & TechnologyG1262
油酸钠Sigma-AldrichO7501
棕榈酸钠Sigma-AldrichP9767
GPER1特异性激动剂(G1)MCEHY-107216
GPER1拮抗剂(G15)MCEHY-103449
甘油三酯检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA110-1-1
总胆固醇检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA111-1-1
高密度脂蛋白胆固醇检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA112-1-1
低密度脂蛋白胆固醇检测试剂盒Nanjing Jiancheng Bioengineering InstituteA113-1-1
逆转录试剂盒EZBioscienceA0010CGQ
SYBR Green qPCR预混液EZBioscienceA0012-R2
Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒Tianjin Simu Biotech Co., Ltd.A5001-02P-L
流式细胞仪Becton Dickinson--
Trizol试剂Thermo--
双色红外激光成像系统Licor Odyssey--
免疫沉淀/免疫共沉淀试剂盒Thermo Pierce--
兔抗人GPER1抗体(ab39742)Abcamab39742
山羊抗兔IgGServicebioGB23303
二甲基亚砜文中未明确说明D8370
Chemray 800全自动生化分析仪Rayto--
正置显微镜Olympus--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
人类样本分析
样本纳入标准(排除了饮酒和其他病因)、脂肪变性分级标准(G0-G3)、样本量(正常组n=6,MASLD组n=8)
阅读提示:材料与方法2.2节,图1图注
细胞培养与处理
FFA浓度(1 mM,油酸钠:棕榈酸钠=2:1)、处理时间(24小时)、G1和G15浓度(1 μM)及处理时间(6小时)
阅读提示:材料与方法2.4节,图2、图3图注
动物实验
小鼠品系(C57BL/6J)、性别(雌性)、年龄(6周)、饮食类型(Western diet,41%脂肪)、诱导时间(12周)、G1给药剂量(200 μg/天)及频率(每周三次)
阅读提示:材料与方法2.3节,图4图注
蛋白质组学
筛选阈值(|FC|≥1.5,p<0.05)、生物学重复数(3个/组)、样本量(共9个)
阅读提示:材料与方法2.14节,图5图注