ADSC分离、培养和鉴定
验证所获细胞确为具有多向分化潜能的间充质干细胞。
从SD大鼠脂肪组织分离ADSC,培养至P4代,通过流式细胞术检测表面标志物,并诱导成脂和成骨分化。
ADSC-Conditioned Medium Mitigates LPS-Induced Acute Lung Injury by Inhibiting Alveolar Macrophage Pyroptosis.
包含体内大鼠模型(LPS诱导ALI)和体外NR8383细胞实验,并进行了功能验证(组织病理、ELISA)和机制验证(Western blot、RT-qPCR、TEM、IF)。
SD大鼠LPS诱导的ALI模型 NR8383肺泡巨噬细胞系 脂肪间充质干细胞(ADSC)
LPS剂量:体内5 mg/kg,体外1 μg/mL ADSC-CM给入方式:尾静脉注射(体内)或共培养(体外) ADSC-CM制备:血清和生长因子-free DMEM培养48小时,浓缩至约20× TLR4抑制剂TAK-242浓度:100 nM 实验组设置:CON、LPS、LPS+CM、LPS+TAK、LPS+CM+TAK
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证所获细胞确为具有多向分化潜能的间充质干细胞。
从SD大鼠脂肪组织分离ADSC,培养至P4代,通过流式细胞术检测表面标志物,并诱导成脂和成骨分化。
获得富含分泌因子的条件培养基。
P4代ADSC在无血清无生长因子DMEM中培养48小时,收集上清并浓缩。
评估ADSC-CM对LPS诱导的ALI的保护作用。
SD大鼠腹腔注射LPS诱导ALI,随后尾静脉注射ADSC-CM,24小时后处死,采集血液和肺组织。
评估ADSC-CM对肺组织损伤和水肿的影响。
通过H&E染色评估肺组织病理学改变,并计算肺湿干比。
检测ADSC-CM对LPS诱导的肺组织焦亡通路蛋白和mRNA表达的影响。
Western blot检测TLR4、NLRP3、Caspase-1、GSDMD、IL-1β蛋白水平;RT-qPCR检测相应mRNA水平。
进一步验证ADSC-CM对LPS诱导的肺泡巨噬细胞焦亡的抑制作用及其机制。
NR8383细胞分为CON、LPS、LPS+CM、LPS+TAK、LPS+CM+TAK组,通过TEM、IF和Western blot/RT-qPCR检测焦亡相关标志。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞分离培养 | I型胶原酶 | BioFroxx | -- |
| 红细胞裂解液 | Solarbio | -- | |
| 细胞培养 | 磷酸盐缓冲液 | WILBER | -- |
| T25培养瓶 | Corning | -- | |
| DMEM培养基 | Gibco | -- | |
| 胎牛血清 | CAPRICORN | -- | |
| 青霉素 | Solarbio | -- | |
| 链霉素 | Solarbio | -- | |
| 细胞表型鉴定 | CD29抗体 | BioLegend | -- |
| CD44h抗体 | BioLegend | -- | |
| CD45抗体 | BioLegend | -- | |
| CD90抗体 | BioLegend | -- | |
| 分化诱导 | 成脂诱导培养基 | Procell | -- |
| 成骨诱导培养基 | Procell | -- | |
| ADSC-CM制备 | Amicon Ultra-10离心过滤装置 | Merck Millipore | -- |
| 动物实验 | 脂多糖 | Beyotime | -- |
| ELISA | ELISA试剂盒 | mlbio | -- |
| 细胞培养 | NR8383细胞完全培养基 | Procell | -- |
| 细胞处理 | TAK-242 | SparkJade | -- |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | Yeasen | -- |
| 牛血清白蛋白 | -- | -- | |
| GSDMD抗体 | Proteintech | 20770-1-AP | |
| NLRP3抗体 | Proteintech | 68102-1-Ig | |
| DAPI | Agbio | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Beyotime | -- | |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Beyotime | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Mei5bio | -- | |
| 预染蛋白marker | Servicebio | G2091 | |
| 硝酸纤维素膜 | Biosharp | -- | |
| 脱脂奶粉 | BioFroxx | -- | |
| TLR4抗体 | Abcam | ab22048 | |
| MyD88抗体 | Wanleibio | WL02494 | |
| IKKα/β抗体 | Wanleibio | WL01900 | |
| NF-κB抗体 | Affinity | BF8005 | |
| NLRP3抗体 | Affinity | BF8029 | |
| Pro Caspase-1抗体 | Immunoway | YM8437 | |
| Caspase-1抗体 | Wanleibio | WL03450 | |
| GSDMD抗体 | Affinity | AF4012 | |
| IL-1β抗体 | Immunoway | YM8498 | |
| IL-18抗体 | Proteintech | 60070-1-Ig | |
| HRP标记二抗(兔) | Affinity | S0001 | |
| HRP标记二抗(鼠) | Affinity | S0002 | |
| 化学发光成像系统 | Servicebio | -- | |
| RNA提取 | RNAiso Easy试剂盒 | Takara Bio | -- |
| RT-qPCR | Evo M-MLV RT mix试剂盒 | -- | -- |
| SYBR Green Premix Pro Taq HS qPCR试剂盒 | Agbio | -- | |
| 引物 | Genesoul Technology | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | LPS剂量、给药途径(腹腔注射)、ADSC-CM剂量(来自1.5×10^6细胞浓缩物)、给药途径(尾静脉注射)、时间(24小时)、每组样本量n=10 阅读提示:见Materials and Methods 2.3节 |
| ADSC-CM制备 | 细胞培养密度、无血清DMEM孵育时间(48小时)、浓缩倍数(约20×) 阅读提示:见Materials and Methods 2.2节 |
| NR8383细胞处理 | LPS浓度(1 μg/mL)、处理时间(6小时)、ADSC-CM添加量(来自1.25×10^6细胞)、TAK-242浓度(100 nM)、预孵育时间(1小时) 阅读提示:见Materials and Methods 2.7节 |
| 蛋白表达检测 | 抗体使用浓度、孵育时间、内参蛋白(GAPDH) 阅读提示:见Materials and Methods 2.10节 |
| mRNA表达检测 | RNA提取方法、反转录体系、qPCR条件、引物序列、内参基因(GAPDH) 阅读提示:见Materials and Methods 2.11节及Table 1 |