谷氨酰胺代谢重编程通过FGF17-FGFR4轴介导上皮-间质转化驱动非小细胞肺癌进展的机制研究

Mechanistic study of glutamine metabolic reprogramming driving non-small cell lung cancer progression via the FGF17-FGFR4 axis mediating epithelial-mesenchymal transition.

作者信息Qinghua Kong, Xiaoyan Wang, Wei Ding
PMID41551579
发布时间2026-01-12
DOI10.3389/fmolb.2025.1728698

实验完整度

包含临床样本验证、细胞功能实验(增殖、迁移、侵袭)、机制研究(WB、代谢检测)以及体内异种移植模型的多层级验证。

主要模型

NCI-H1299细胞系 患者来源异种移植(PDX)小鼠模型 临床NSCLC组织样本

重点核对

谷氨酰胺剥夺条件:1 mM谷氨酰胺处理24小时 FGF17敲低慢病毒构建及敲低效率验证 代谢回补实验:α-酮戊二酸(2 mM)处理 顺铂剂量:5 mg/kg,每72小时腹腔注射 shFGF17慢病毒剂量:2 × 10^7 TU,每周瘤内注射

摘要

摘要:背景:谷氨酰胺代谢的重编程在肿瘤的能量供应和生物合成中占据关键地位。然而,这种现象在非小细胞肺癌(NSCLC)中的调控机制仍未被充分理解。NSCLC是一种全球发病率和死亡率均较高的恶性肿瘤。迫切需要在病理机制中阐明谷氨酰胺代谢的作用。这可能为开发新的治疗方法提供理论指导。方法:通过整合公共数据库中的单细胞转录组和RNA测序数据,筛选谷氨酰胺代谢的核心靶点。通过免疫组织化学(IHC)和蛋白质印迹(WB)在临床样本中验证靶点表达,并分析其与临床特征的相关性。采用慢病毒基因沉默建立谷氨酰胺剥夺细胞模型和异种移植小鼠模型。为了评估靶点对细胞增殖、氧化还原平衡和迁移/侵袭行为在细胞培养和动物模型中的影响,我们使用了Transwell实验、集落形成实验、氧化还原检测试剂盒和海马代谢通量分析。随后,WB和IHC用于阐明下游通路和药物的潜在协同作用。结果:单细胞图谱分析显示,在NSCLC的肿瘤微环境中,上皮(Epi)细胞群体显著增加。通过整合加权基因共表达网络分析(WGCNA)和RNA测序,成纤维细胞生长因子17(FGF17)被确定为一个关键调控因子。高FGF17表达与患者不良预后显著相关(p = 0.0078)。一致的临床数据进一步表明,FGF17上调与更高的TNM分期和淋巴结转移的存在相关。功能和机制分析显示,沉默FGF17抑制了FGFR4/MEK5/ERK5信号级联,干扰了NRF2依赖的氧化还原稳态,并因此损害了上皮-间质转化(EMT),导致癌细胞运动和侵袭能力显著降低。在体内,靶向FGF17显示与顺铂的抗肿瘤活性协同并逆转EMT表型。结论:作为谷氨酰胺代谢重编程的关键驱动因子,在GLUL过表达条件下激活的FGF17刺激FGFR4/MEK5/ERK5/NRF2信号级联以维持氧化还原稳态并促进侵袭,从而加速NSCLC进展。靶向干预该通路可逆转恶性表型并增强化疗敏感性。这些发现突出了FGF17作为NSCLC潜在治疗靶点的价值,并为肿瘤代谢和EMT提供了新的见解,可能为新的联合疗法铺平道路。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
谷氨酰胺代谢重编程如何通过FGF17-FGFR4轴介导EMT促进非小细胞肺癌进展?
核心机制
GLUL介导的谷氨酰胺代谢激活FGF17-FGFR4轴,进而刺激MEK5/ERK5/NRF2信号级联,维持氧化还原稳态并促进EMT和肿瘤侵袭。
主要证据
临床样本中FGF17高表达与不良预后相关;细胞实验中shFGF17抑制FGFR4/MEK5/ERK5通路、升高ROS并抑制EMT;PDX模型中shFGF17联合顺铂显著抑制肿瘤生长并逆转EMT。
研究意义
FGF17可能作为NSCLC的潜在治疗靶点,为联合治疗策略提供新思路。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

筛选关键靶点

通过生信分析筛选谷氨酰胺代谢相关的关键基因。

整合scRNA-seq和RNA-seq数据,结合WGCNA和差异表达分析,确定FGF17为关键靶点。

2

临床样本验证

验证FGF17和GLUL在临床样本中的表达及其与临床特征的关系。

通过WB和免疫荧光检测临床NSCLC肿瘤和癌旁组织中GLUL和FGF17表达,并与临床指标进行相关性分析。

3

体外细胞功能实验

评估FGF17对谷氨酰胺剥夺条件下NSCLC细胞增殖、迁移和侵袭的影响。

使用CCK-8、EdU、集落形成和Transwell实验检测细胞活力、增殖、迁移和侵袭。

4

机制探究

阐明FGF17调控的潜在信号通路和代谢变化。

通过WB检测FGFR4/MEK5/ERK5通路蛋白表达,使用Seahorse分析代谢率,检测ROS和GSH/GSSG水平。

5

体内动物实验

验证FGF17敲低和顺铂联合治疗在PDX小鼠模型中对肿瘤生长和EMT的影响。

建立PDX小鼠模型,分为PDX、顺铂单药、shFGF17和联合治疗组,测量肿瘤体积和重量,并通过免疫荧光和WB分析EMT标志物。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI 1640培养基Corning#15-040-CV
胎牛血清GibcoA5669701
青霉素/链霉素溶液Gibco#15070063
嘌呤霉素----
L-谷氨酰胺SigmaG8540
pLKO.1-puro载体ThermoTR30021
慢病毒包装混合液InvitrogenA35684CN
FGF17一抗ThermoPA5-109722
山羊抗兔IgG二抗ThermoA-11008
DAPIBeyotimeC1314L
封片剂BeyotimeP0131-25 mL
CCK-8试剂盒SolarbioCA1210
Click-iT™ EdU试剂ThermoC10639
基质胶Corning#354480
结晶紫SigmaC0775
顺铂Selleckchem#S1166
H2DCFDA探针MCEHY-D0940
JC-1线粒体膜电位检测试剂盒MCEHY-K0601
Seahorse XF Pro分析仪Agilent--
RIPA裂解液BeyotimeP0013E
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0009
5×SDS上样缓冲液ThermoAM8547
SDS-PAGE凝胶EpizymePG112
PVDF膜MilliporeIPVH00010
E-cadherin抗体CST#3195
Vimentin抗体CST#5741
GLUL抗体CST#80636
FGF17抗体ThermoPA5-109722
FGFR4抗体CST#8562
MEK5抗体CST#40473
磷酸化MEK5抗体ThermoPA5-105899
ERK5抗体CST#12950
磷酸化ERK5抗体ThermoPA5-114573
NRF2抗体CST#12721
GAPDH抗体ThermoMA5-15738
HRP标记的山羊抗兔IgGAbcamab97051

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与处理
谷氨酰胺剥夺浓度(1 mM)和处理时间(24小时)
阅读提示:参见Materials and Methods中Cell culture部分
构建慢病毒载体
shRNA靶向序列及载体(pLKO.1-puro)
阅读提示:参见Materials and Methods中Construction of lentiviral vectors部分
体内实验
顺铂剂量(5 mg/kg)和给药频率(每72小时)、shFGF17慢病毒剂量(2×10^7 TU)和给药方式(瘤内注射)及治疗周期(28天)
阅读提示:参见Materials and Methods中Animal model establishment部分
代谢和氧化还原检测
Seahorse分析、ROS、GSH/GSSG和JC-1检测的具体操作步骤
阅读提示:参见Materials and Methods中Assessment of metabolic and redox parameters部分
蛋白质印迹
一抗稀释比例及孵育条件
阅读提示:参见Materials and Methods中Western blot analysis部分