外泌体分离与核酸递送系统构建
获得高纯度的BMSC来源外泌体,并构建负载miR155-5p agomir或antagomir的外泌体核酸递送系统。
从SD大鼠骨髓分离原代BMSCs,收集上清,通过差速离心(300×g、2000×g、10,000×g、100,000×g)分离外泌体;使用Exo-Fect试剂盒将miR155-5p agomir/antagomir转染进入外泌体。
Decoding the exosomal nucleic acid delivery system axis of macrophage autophagy and immune reprogramming via multi-omics analysis.
包含外泌体构建与表征、体外细胞实验、体内毒性实验、转录组与蛋白质组学分析及功能验证等多个独立证据层级,并明确验证了自噬表型和信号通路机制。
RAW264.7小鼠巨噬细胞系 SD大鼠骨髓间充质干细胞来源的外泌体 SD大鼠体内模型
外泌体分离采用差速离心,最终超速离心条件为100,000×g、70分钟、4°C miR155-5p agomir/antagomir转染外泌体使用Exo-Fect试剂盒,转染体系含10 μL Exo-Fect、20 pmol miRNA、70 μL PBS、50 μL外泌体,37°C孵育10分钟 巨噬细胞与外泌体核酸递送系统共孵育浓度为10 μg/μL,时间为12小时 自噬诱导使用EBSS培养基孵育1小时 实验均独立重复三次,数据以均值±SD表示,组间比较采用t检验或单因素方差分析,P<0.05为显著差异
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得高纯度的BMSC来源外泌体,并构建负载miR155-5p agomir或antagomir的外泌体核酸递送系统。
从SD大鼠骨髓分离原代BMSCs,收集上清,通过差速离心(300×g、2000×g、10,000×g、100,000×g)分离外泌体;使用Exo-Fect试剂盒将miR155-5p agomir/antagomir转染进入外泌体。
验证构建的外泌体核酸递送系统的形态、粒径、标志蛋白表达和miR155-5p装载效率。
采用TEM观察形态,NTA分析粒径分布,Western blot检测外泌体标志蛋白(TSG101、CD9、CD63),流式细胞术分析Cy5标记的miR155-5p转染效率,RT-qPCR检测miR155-5p表达水平。
验证巨噬细胞对外泌体核酸递送系统的摄取能力。
将PKH 67标记的外泌体核酸递送系统与RAW264.7细胞共孵育12小时,固定后DAPI染色,共聚焦显微镜观察并定量荧光强度。
评估外泌体核酸递送系统的体外细胞毒性和体内毒性。
CCK-8法检测不同浓度下细胞活力;细胞活/死染色;对SD大鼠腹腔注射10 μg/μL外泌体核酸递送系统,24小时后处死,HE染色观察主要脏器病理变化,并检测肝肾功能和心肌酶谱。
筛选外泌体核酸递送系统干预后巨噬细胞的差异表达基因和蛋白质,并富集相关信号通路。
收集吞噬外泌体核酸递送系统的巨噬细胞样本,进行转录组测序和蛋白质组质谱分析;对差异分子进行GO和KEGG富集分析。
验证外泌体核酸递送系统对巨噬细胞自噬水平和关键信号通路的影响。
巨噬细胞与外泌体核酸递送系统共孵育12小时,EBSS处理1小时诱导自噬;TEM观察自噬体,MDC染色检测自噬溶酶体,Western blot检测自噬相关蛋白(LC3Ⅱ、p62、Beclin1)和通路蛋白(p-mTOR、p-AMPK、TLR4、p-p65、总mTOR、总AMPK、p65),RT-qPCR检测LC3B、p62、Beclin1的mRNA表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 胎牛血清 | Gibco, Thermo Fisher Scientific | 10099141C |
| 外泌体分离 | Exo-Fect外泌体转染试剂盒 | System Bioscience | -- |
| 外泌体转染 | microRNA-155-5p激动剂 | Tsingke Biotechnology | -- |
| microRNA-155-5p拮抗剂 | Tsingke Biotechnology | -- | |
| 外泌体表征 | ZetaView纳米颗粒跟踪分析仪 | Particle Metrix | -- |
| 透射电子显微镜 | HITACHI | -- | |
| Western blot | BCA蛋白定量试剂盒 | GenScript Biotech Corporation | M00521 |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| ECL化学发光检测系统 | Affinity Biosciences | KF8003 | |
| GAPDH抗体 | Sanying Biotechnology | 60004-1-Ig | |
| TSG101抗体 | Sanying Biotechnology | 28283-1-AP | |
| CD9抗体 | Abclonal | A1703 | |
| CD63抗体 | Sanying Biotechnology | 25682-1-AP | |
| 流式分析 | FACScalibur流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| RT-qPCR | TaqMan MicroRNA逆转录试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 4366596 |
| TaqMan通用预混液II | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 吞噬检测 | PKH 67染色剂 | MCE | 257277-27-3 |
| DAPI染色液 | Servicebio | G1012-100ML | |
| 共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| 毒性检测 | CCK-8试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- |
| 蛋白质组学 | Orbitrap™质谱仪 | Thermo Scientific | -- |
| Astral™质谱仪 | Thermo Scientific | -- | |
| Western blot | LC3Ⅱ抗体 | Abclonal | A19665 |
| p62抗体 | Abclonal | A19700 | |
| 磷酸化mTOR抗体 | Sanying Biotechnology | 67778-1-IG | |
| 磷酸化AMPK抗体 | Cell Signaling Technology | 2535S | |
| 磷酸化p65抗体 | Cell Signaling Technology | 3033 | |
| TLR4抗体 | Sanying Biotechnology | 66350-1-Ig | |
| Beclin1抗体 | Sanying Biotechnology | 11306-1-AP | |
| RT-qPCR | RevertAid第一链cDNA合成试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | K1622 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 外泌体分离 | BMSC来源(SD大鼠骨髓)、差速离心参数(300×g、2000×g、10,000×g、100,000×g,70分钟,4°C)、去外泌体培养基处理12小时 阅读提示:Methods 2.1.1 |
| 外泌体转染 | miR155-5p序列(agomir/antagomir)、转染试剂盒(Exo-Fect)、各组分量(10 μL Exo-Fect、20 pmol miRNA、70 μL PBS、50 μL外泌体)、孵育时间和温度(37°C 10分钟)、ExoQuick-TC沉淀 阅读提示:Methods 2.1.2 |
| 细胞处理 | RAW264.7细胞系、共孵育浓度(10 μg/μL)和时间(12小时)、EBSS诱导自噬时间(1小时) 阅读提示:Methods 2.6 |
| 自噬检测 | TEM观察自噬体、MDC染色、LC3B/Beclin1/p62 mRNA和蛋白水平,Western blot抗体稀释比例,RT-qPCR引物序列 阅读提示:Figure 10 legend; Methods 2.6; Table 1 |
| 体内毒性实验 | SD大鼠品系、性别(雄性)、年龄(6-8周)、注射剂量(10 μg/μL)、注射方式(腹腔注射)、检测时间(24小时后)、戊巴比妥剂量(100 mg/kg) 阅读提示:Methods 2.4 |