探索ASPN作为泛癌生物标志物,重点关注胃癌

Exploring ASPN as a pan-cancer biomarker with a focus on gastric cancer.

作者信息Yue Feng, Sijiang Zhou, Bing Yang, Jian Yang, Shengyu Wang, Zhu Yu, Chao Quan, Junqiang Chen
PMID41258306
发布时间2025-11-19
DOI10.1007/s12672-025-03978-y

实验完整度

高

包含多数据库生物信息学分析、单细胞分析及体外细胞功能实验(敲低、增殖、迁移、侵袭、凋亡和蛋白检测),多个独立证据层级。

主要模型

胃癌细胞系HGC-27、AGS TCGA和GTEx泛癌数据队列 胃癌和前列腺癌组织样本(IHC)

重点核对

ASPN在胃癌细胞系中的表达水平(RT-qPCR) siRNA敲低效率验证(RT-qPCR和WB) CCK-8细胞活力检测(24、48、72小时) Transwell迁移和侵袭实验(8-μm孔径,24小时) 流式细胞术凋亡检测(PI和FITC染色)

摘要

背景:癌症仍然是全球死亡的主要原因,对公共卫生构成严重威胁。ASPN蛋白已成为某些癌症的关键角色;然而,其精确机制和调控作用仍不明确。方法:我们探讨了ASPN在各种癌症中的表达及其预后意义。使用京都基因与基因组百科全书(KEGG)和基因本体论(GO)进行功能富集分析。检查了ASPN表达与免疫细胞浸润、免疫检查点基因、微卫星不稳定性(MSI)、肿瘤突变负担(TMB)、药物敏感性、启动子甲基化和肿瘤突变类型等因素之间的关联。最后,使用RT-qPCR、WB、Cell Counting Kit-8、Transwell、划痕和流式细胞术检测了ASPN在胃腺癌(STAD)中的功能,重点关注ASPN对细胞增殖、迁移、侵袭和凋亡的影响。结果:ASPN在多种癌症中高表达,高表达与较差的预后相关。基因富集分析表明ASPN参与多种细胞通路,并与免疫细胞浸润、TMB和MSI相关。单细胞分析显示ASPN主要在成纤维细胞中表达,ASPN突变主要为错义突变。siRNA敲低ASPN后,CCK-8实验和伤口愈合实验显示胃癌细胞活力及迁移能力受到抑制,Transwell实验显示两种胃癌细胞系的迁移和侵袭能力降低。与细胞凋亡结果一致,降低ASPN提高了两种胃癌细胞的凋亡率。ASPN抑制导致促凋亡的BAX和cleaved Caspase-3上调,抗凋亡的BCL2下调。这些发现表明ASPN促进胃癌的侵袭性。结论:ASPN在多种癌症中的高表达与较差的预后相关,凸显其作为预后生物标志物和治疗靶点的潜力,尤其是在胃癌中。补充信息:在线版本包含补充材料,可在10.1007/s12672-025-03978-y获取。关键词:ASPN,泛癌,预后,STAD

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
ASPN在泛癌中的表达、预后意义及在胃癌中的功能机制是什么?
核心机制
ASPN通过上调BAX、cleaved Caspase-3,下调BCL2,促进胃癌细胞增殖、迁移和侵袭,抑制凋亡。
主要证据
基于TCGA、GTEx、HPA等多数据库分析及体外实验,在胃癌细胞系中敲低ASPN后,CCK-8、划痕、Transwell和流式实验显示细胞活力、迁移、侵袭能力下降,凋亡率升高,WB验证凋亡相关蛋白变化。
研究意义
ASPN可能作为多种癌症的预后生物标志物和潜在治疗靶点,尤其是在胃癌中。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

ASPN表达分析

评估ASPN在泛癌和正常组织中的表达差异。

使用TIMER2.0、SangerBox和HPA数据库分析ASPN mRNA和蛋白表达。

2

预后分析

评估ASPN表达与患者生存预后的关联。

使用GEPIA2进行OS和DFS分析,并使用Kaplan-Meier曲线分析STAD中的OS、FP和PPS。

3

功能富集分析

探索ASPN相关基因及其参与的通路。

使用LinkedOmics获取相关基因,进行GO和KEGG富集分析。

4

免疫微环境分析

评估ASPN表达与免疫细胞浸润、免疫检查点基因、TMB、MSI的关联。

使用SangerBox和ESTIMATE算法分析免疫评分、免疫细胞浸润、免疫检查点基因、TMB和MSI相关性。

5

细胞功能实验

验证ASPN对胃癌细胞增殖、迁移、侵袭和凋亡的影响。

在AGS和HGC-27细胞中siRNA敲低ASPN,进行CCK-8、划痕、Transwell和流式凋亡检测。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
F12培养基Gibco--
RPMI 1640培养基----
Lipofectamine 3000转染试剂Invitrogen--
Opti-MEM培养基Gibco--
靶向ASPN的siRNAHanbio--
SYBR Green荧光试剂Vazyme--
RIPA裂解液SolarbioR0010
PMSF蛋白酶抑制剂SolarbioP0100
PVDF膜MilliporeIPVH00010
ASPN一抗Proteintech27602-1-AP
GAPDH一抗Proteintech60004-1-Ig
Bcl2一抗Proteintech12789-1-AP
BAX一抗Proteintech50599-2-Ig
Caspase3一抗Proteintech25128-1-AP
HRP标记二抗ProteintechSA00001-2
Transwell小室(3422,8µm孔径)Corning3422
CCK-8试剂盒Vazyme--
异硫氰酸荧光素----
碘化丙啶----
BD FACSVerse流式细胞仪BD Biosciences--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞转染
siRNA序列,转染试剂浓度(Lipo3000 3.75µL,siRNA 5µL per well),转染时细胞密度(60-70%),转染后孵育时间(48小时)
阅读提示:Methods:Cell transfection
细胞培养
细胞系(HGC-27, AGS, SNU-216, MKN-28, GES-1),培养基(F12或RPMI 1640),培养条件(37°C,5% CO2)
阅读提示:Methods:Cell culture and RT-qPCR
RT-qPCR
引物序列,内参基因(β-actin),SYBR Green试剂
阅读提示:Methods:Cell culture and RT-qPCR,补充表1
Western blot
抗体信息(ASPN、GAPDH、Bcl2、BAX、Caspase3),裂解液(RIPA),蛋白酶抑制剂(PMSF),PVDF膜
阅读提示:Methods:Western blotting
细胞增殖和迁移实验
CCK-8检测时间点(24,48,72h),划痕实验时间点(0,24h),Transwell实验细胞数(2×10^4),孔径(8µm),孵育时间(24h)
阅读提示:Methods:Wound healing assay, Cell invasion, proliferation, and migration assays
流式凋亡检测
染料用量(10µL PI,5µL FITC),孵育时间(5分钟),仪器(BD FACSVerse)
阅读提示:Methods:Flow cytometry apoptosis assay