转座子对不同类型免疫细胞顺式调控元件图谱贡献的多组学分析

Multiomic analyses on the contribution of transposable elements to the cis-regulatory landscape of different types of immune cells.

作者信息Cui Du, Hairui Fan, Jiayao Jiang, Juan Yang, Shuai Chen, Nadezhda E Vorobyeva, Congrui Zhu, Liming Mao, Chenxi Li, Yanhua Li, Wenbin Bao, Ming-An Sun
PMID41299220
发布时间2025-11-26
DOI10.1186/s12864-025-12285-3

实验完整度

包含单细胞多组学数据、H3K27ac ChIP-seq和RNA-seq的整合分析,并通过siRNA敲降SPI1的功能验证及荧光素酶报告实验进行验证,涉及体外细胞和跨物种比较。

主要模型

人外周血单个核细胞(PBMCs) THP-1单核细胞系 K562细胞系

重点核对

scATAC-seq和scRNA-seq数据来源及细胞类型注释(来自10x Genomics) SPI1 siRNA敲降的效率和浓度(THP-1细胞,36h处理) H3K27ac ChIP-seq的细胞数量和抗体(约1e7细胞,3 μg抗体) 荧光素酶报告实验中TE序列克隆和共转染的对照 人类和小鼠单核细胞增强子比较的物种和细胞类型(CD14+ vs Ly6C+)

摘要

背景:转座子(TEs)是其核生物基因组中丰富的可移动DNA元件。虽然被认为是顺式调控元件(CREs)的关键贡献者,但其与各种免疫细胞特异性调控图谱的关联仍不清楚。本研究旨在描绘外周血中不同类型人类免疫细胞CREs与TE的关联,特别关注对先天免疫至关重要的单核细胞。结果:利用人外周血单个核细胞(PBMCs)的单细胞多组学数据,我们注释了不同免疫细胞类型的细胞特异性CREs(csCREs),包括B/T淋巴细胞、单核细胞、自然杀伤细胞和树突状细胞的亚群。共有63个TE家族在注释的csCREs中显著富集,包括属于内源逆转录病毒(ERVs)的32个灵长类特异家族。我们观察到不同免疫细胞类型的csCREs中TE富集图谱具有高度细胞特异性,其中单核细胞表现出最高程度的TE富集。聚焦于单核细胞,我们发现其表观遗传注释的增强子中超过30%来源于TE,并且这些增强子常被关键髓系调控因子如PU.1、ATF4和CEBP蛋白结合。敲低SPI1(编码PU.1的基因)损害了数百个免疫相关基因的表达,包括许多与TE衍生增强子相关的基因。跨物种比较进一步显示,人类和小鼠特异性单核细胞增强子中近一半是由TE插入创建的,且TE衍生增强子与跨物种的基因表达改变相关。通过荧光素酶报告基因实验,我们进一步验证了SDSL和TPK1邻近的ERV元件的增强子活性,这些基因在人类单核细胞中的表达高于小鼠。结论:在这里,我们表征了不同人类血液免疫细胞类型中TE衍生的CREs的高度细胞特异性图谱。综合分析进一步证明了TE在创建单核细胞增强子(包括人类或小鼠特异的增强子)中的频繁贡献,并表明TE可能参与介导物种特异的单核细胞基因表达。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
转座子如何构成不同人类免疫细胞的顺式调控图谱,并影响单核细胞基因表达及跨物种进化?
核心机制
转座子,特别是灵长类特异的内源逆转录病毒,形成增强子,被关键转录因子如PU.1结合,调控免疫基因表达,并驱动物种特异的单核细胞基因调控。
主要证据
单细胞多组学数据显示TE在csCREs中细胞特异性富集;siRNA敲降SPI1改变免疫基因表达和H3K27ac水平;跨物种比较和报告基因实验验证了TE增强子活性。
研究意义
本研究提供了TE在免疫细胞中调控作用的全局图谱,并表明TE可能参与塑造物种特异的单核细胞免疫特性。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

单细胞多组学分析鉴定免疫细胞特异性CREs

鉴定不同免疫细胞类型的细胞特异性顺式调控元件并表征其功能。

分析人类PBMC的单细胞RNA和ATAC-seq数据,注释细胞类型,基于染色质可及性定义csCREs,并进行GO和motif分析。

2

TE家族富集分析

检查不同免疫细胞csCREs中TE的富集模式。

对远距离csCREs进行TE富集分析,识别显著富集的TE家族,并比较不同细胞类型间的多样性。

3

单核细胞增强子的表观遗传注释

注释单核细胞增强子并评估TE的贡献。

整合H3K27ac ChIP-seq数据定义活性增强子,并计算TE重叠率及富集家族。

4

TE衍生增强子的调控因子筛选

识别可能调控单核细胞TE增强子的转录因子。

使用motif分析和公共ChIP-seq数据,预测候选TF并检查其结合模式。

5

PU.1功能验证

验证PU.1对TE增强子和免疫基因的调控作用。

通过siRNA敲降THP-1细胞中SPI1,结合RNA-seq和H3K27ac ChIP-seq分析转录和增强子活性变化。

6

跨物种比较和报告基因验证

探究TE增强子对单核细胞基因表达跨物种差异的贡献。

比较人鼠单核细胞的增强子和转录组,并通过荧光素酶报告实验验证特定TE元件的增强子活性。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
RPMI-1640培养基----
胎牛血清----
β-巯基乙醇----
青霉素/链霉素----
JetPrime转染试剂----
RIPA裂解液----
蛋白酶抑制剂混合物----
BCA蛋白定量试剂盒Solarbio--
PVDF膜Immobilon--
抗PU.1抗体Santa Cruz Biotechnologysc-390405
增强化学发光试剂AbbikeBMU102
Tanon 4600凝胶成像系统Tianneng--
抗HSP90抗体----
pGL3-basic载体GeneCreate--
pRL-TK载体----
双荧光素酶报告检测系统VazymeDL101
Trizol裂解液Qiagen--
poly-T寡核苷酸磁珠----
AMPure XP磁珠纯化系统Beckman Coulter--
BGISEQ-500测序平台BGI-Shenzhen--
甲醛Sigma-Aldrich252549
Covaris S220超声破碎仪Covaris--
H3K27ac抗体Abcamab177178
蛋白A/G磁珠Selleck.cnB23201
MinElute PCR纯化试剂盒VazymeDC301
MGIEasy DNA文库构建试剂盒BGI-Shenzhen1000006985
BGISEQ-500测序平台BGI-Shenzhen--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
单细胞数据来源
scRNA-seq和scATAC-seq数据的具体来源(10x Genomics)和样本编号
阅读提示:见Methods中scRNA-seq和scATAC-seq部分及Table S2
细胞系和培养条件
THP-1和K562细胞的来源(Procell, Prof. Shaobin Shang)及培养基组成
阅读提示:见Methods中Cell culture部分
基因敲降
SPI1 siRNA的序列信息及转染条件(浓度、时间)
阅读提示:见Methods中Gene knockdown部分及Table S1
ChIP-seq
细胞数量、抗体类型和用量、片段化条件、建库方法
阅读提示:见Methods中ChIP-seq部分
增强子注释
H3K27ac峰的定义及阈值(距离TSS >500bp)
阅读提示:见Methods中Epigenetic annotation of regulatory elements部分