多组学整合揭示三阴性乳腺癌空间异质性中的关键转录调控因子

Multi-omics integration uncovers key transcriptional regulators in triple-negative breast cancer spatial heterogeneity.

作者信息Ning Zhang, Ye Zhang, Rui-Fei Yang, Hai-Qing Chu, Abdur Rehman, Lu-Yu Yang, Ya-Yu Li, Xin Zhou, Shou-Ping Gong, Hui-Ling Cao
PMID40969325
发布时间2025-09-03
DOI10.3389/fgene.2025.1614254

实验完整度

包含scRNA-seq与空间转录组学整合、转录因子调控网络构建、qPCR验证和免疫组化验证等多个独立证据层级,且有功能验证。

主要模型

三阴性乳腺癌患者肿瘤组织(scRNA-seq数据,10例患者) TNBC空间转录组样本(CID44971) MCF7细胞系

重点核对

样本来源:10例TNBC患者肿瘤样本,CID44971空间转录组样本 细胞系:MCF7,培养基MEM NEAA,10%胎牛血清,37°C,5% CO2 药物处理:苦参碱(oxymatrine)12.5 μg/mL处理72小时(24小时预处理加48小时刺激或非刺激) qRT-PCR分析基因:EMX2, TFF3, RARG, GAPDH(内参) 生存分析:KM-plotter,335例TNBC患者

摘要

背景:三阴性乳腺癌(TNBC)是一种侵袭性乳腺癌亚型,其特征是缺乏激素受体,使其难以治疗。方法:我们通过一种结合单细胞RNA测序(scRNA-seq)和空间转录组学的多组学整合方法,生成了TNBC的综合空间细胞图谱。这种整合使我们能够刻画TNBC组织中的空间微环境并绘制细胞类型特异性分布。结果:我们的分析揭示了细胞类型和空间分布的显著异质性,正常区域富集胰岛素抵抗功能,而癌变区域则显示出多样的细胞群体,包括免疫细胞、癌症相关成纤维细胞(CAFs)和间充质细胞。通过构建转录因子(TF)调控网络,我们确定了TFF3、RARG、GRHL1、RORC和KLF5是上皮细胞的关键调控因子,而EMX2、TWIST1、TWIST2、NFATC4和HOXC6在间充质细胞中发挥重要作用。免疫组织化学验证支持了这些TF在TNBC中的参与。对受体-配体相互作用的进一步分析强调了KNG1_BDKRB2和NRG1_ERBB4信号在促进肿瘤侵袭性中的作用,提示了潜在的治疗靶点。GO富集分析揭示了上皮细胞和间充质细胞之间的重叠通路,聚焦于迁移、信号传导和发育,表明共享的调控机制有助于癌症进展。结论:我们的发现为TNBC微环境提供了新的见解,强调了不同细胞类型之间复杂的空间相互作用,并突出了可能用于未来治疗干预的关键调控通路。该空间细胞图谱为进一步探索肿瘤微环境动力学和精准肿瘤学方法奠定了基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
三阴性乳腺癌组织中细胞类型和空间分布存在何种异质性,以及哪些转录调控因子和信号通路在肿瘤进展中起关键作用?
核心机制
TFF3、RARG、GRHL1、RORC和KLF5是上皮细胞的关键调控因子,EMX2、TWIST1、TWIST2、NFATC4和HOXC6在间充质细胞中发挥关键作用;KNG1_BDKRB2和NRG1_ERBB4信号促进肿瘤侵袭性。
主要证据
通过scRNA-seq和空间转录组学整合分析,SCENIC调控网络识别关键TF,qPCR验证表达变化,免疫组化验证蛋白表达,受体-配体分析揭示信号通路。
研究意义
为TNBC微环境提供新见解,强调细胞间复杂空间相互作用,突出可作为未来治疗干预靶点的关键调控通路,为精准肿瘤学奠定基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

单细胞转录组测序和细胞类型注释

对TNBC肿瘤组织进行单细胞转录组测序,识别不同细胞类型并分析其异质性。

使用Seurat对scRNA-seq数据进行分析,包括质量控制、标准化、聚类和差异表达分析,鉴定上皮细胞、T细胞、髓系细胞等细胞类型。

2

空间转录组数据整合与细胞类型映射

将单细胞数据映射到空间转录组数据,以刻画细胞类型的空间分布。

使用Tangram将scRNA-seq定义的细胞类型映射到ST数据,并可视化细胞类型在组织切片上的分布。

3

空间细胞通讯分析

分析TNBC组织中的细胞间通讯,鉴定肿瘤区域中潜在的受体-配体对。

使用stLearn和CellPhoneDB分析空间转录组数据中的配体-受体共表达和细胞间通讯。

4

转录因子调控网络推断

构建上皮细胞和间充质细胞的基因调控网络,识别关键转录因子。

使用SCENIC分析scRNA-seq数据,计算调控子活性,通过RSS和CSI识别细胞类型特异性调控子。

5

关键转录因子验证

验证鉴定的转录因子在TNBC中的表达和功能。

使用MCF7细胞系进行药物处理(苦参碱),通过qRT-PCR检测关键转录因子的表达变化,并使用KM-plotter进行生存分析。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
MEM NEAA培养基Procell--
胎牛血清Sijiqing--
青霉素/链霉素Solarbio Science and Technology Co. Ltd.--
苦参碱----
总RNA纯化试剂盒Axygen--
cDNA合成试剂盒TaKaRa--
SYBR Green PCR预混Ex Taq IITaKaRa--
实时荧光定量PCR系统Tianlong, Gentier 96E--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
单细胞RNA测序分析
数据来源:GSE176078,10例TNBC患者;质量控制阈值:检测基因数>200,线粒体基因含量<20%;聚类分辨率:0.4。
阅读提示:Methods 2.2
空间转录组整合
ST样本:CID44971;质量控制后保留1,162个点;Tangram映射使用的标记基因数量(前20个DEG)。
阅读提示:Methods 2.4
空间细胞通讯分析
CellPhoneDB默认参数;基因过滤标准(至少在三个位置检测到);归一化方法(CPM,log,缩放)。
阅读提示:Methods 2.5
转录因子调控网络分析
SCENIC参数;人类特异性转录因子注释和基序数据库;CSI阈值>0.7。
阅读提示:Methods 2.6
细胞培养和qRT-PCR
MCF7细胞培养条件:MEM NEAA,10% FBS,37°C,5% CO2;苦参碱处理:12.5 μg/mL,72小时(24小时预处理+48小时刺激);qPCR使用内参GAPDH。
阅读提示:Methods 2.7