单细胞转录组测序和细胞类型注释
对TNBC肿瘤组织进行单细胞转录组测序,识别不同细胞类型并分析其异质性。
使用Seurat对scRNA-seq数据进行分析,包括质量控制、标准化、聚类和差异表达分析,鉴定上皮细胞、T细胞、髓系细胞等细胞类型。
Multi-omics integration uncovers key transcriptional regulators in triple-negative breast cancer spatial heterogeneity.
包含scRNA-seq与空间转录组学整合、转录因子调控网络构建、qPCR验证和免疫组化验证等多个独立证据层级,且有功能验证。
三阴性乳腺癌患者肿瘤组织(scRNA-seq数据,10例患者) TNBC空间转录组样本(CID44971) MCF7细胞系
样本来源:10例TNBC患者肿瘤样本,CID44971空间转录组样本 细胞系:MCF7,培养基MEM NEAA,10%胎牛血清,37°C,5% CO2 药物处理:苦参碱(oxymatrine)12.5 μg/mL处理72小时(24小时预处理加48小时刺激或非刺激) qRT-PCR分析基因:EMX2, TFF3, RARG, GAPDH(内参) 生存分析:KM-plotter,335例TNBC患者
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
对TNBC肿瘤组织进行单细胞转录组测序,识别不同细胞类型并分析其异质性。
使用Seurat对scRNA-seq数据进行分析,包括质量控制、标准化、聚类和差异表达分析,鉴定上皮细胞、T细胞、髓系细胞等细胞类型。
将单细胞数据映射到空间转录组数据,以刻画细胞类型的空间分布。
使用Tangram将scRNA-seq定义的细胞类型映射到ST数据,并可视化细胞类型在组织切片上的分布。
分析TNBC组织中的细胞间通讯,鉴定肿瘤区域中潜在的受体-配体对。
使用stLearn和CellPhoneDB分析空间转录组数据中的配体-受体共表达和细胞间通讯。
构建上皮细胞和间充质细胞的基因调控网络,识别关键转录因子。
使用SCENIC分析scRNA-seq数据,计算调控子活性,通过RSS和CSI识别细胞类型特异性调控子。
验证鉴定的转录因子在TNBC中的表达和功能。
使用MCF7细胞系进行药物处理(苦参碱),通过qRT-PCR检测关键转录因子的表达变化,并使用KM-plotter进行生存分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | MEM NEAA培养基 | Procell | -- |
| 胎牛血清 | Sijiqing | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Solarbio Science and Technology Co. Ltd. | -- | |
| 药物处理 | 苦参碱 | -- | -- |
| RNA提取 | 总RNA纯化试剂盒 | Axygen | -- |
| cDNA合成 | cDNA合成试剂盒 | TaKaRa | -- |
| qPCR | SYBR Green PCR预混Ex Taq II | TaKaRa | -- |
| 实时荧光定量PCR系统 | Tianlong, Gentier 96E | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 单细胞RNA测序分析 | 数据来源:GSE176078,10例TNBC患者;质量控制阈值:检测基因数>200,线粒体基因含量<20%;聚类分辨率:0.4。 阅读提示:Methods 2.2 |
| 空间转录组整合 | ST样本:CID44971;质量控制后保留1,162个点;Tangram映射使用的标记基因数量(前20个DEG)。 阅读提示:Methods 2.4 |
| 空间细胞通讯分析 | CellPhoneDB默认参数;基因过滤标准(至少在三个位置检测到);归一化方法(CPM,log,缩放)。 阅读提示:Methods 2.5 |
| 转录因子调控网络分析 | SCENIC参数;人类特异性转录因子注释和基序数据库;CSI阈值>0.7。 阅读提示:Methods 2.6 |
| 细胞培养和qRT-PCR | MCF7细胞培养条件:MEM NEAA,10% FBS,37°C,5% CO2;苦参碱处理:12.5 μg/mL,72小时(24小时预处理+48小时刺激);qPCR使用内参GAPDH。 阅读提示:Methods 2.7 |