鼠源抗HBsAg单克隆抗体的制备和表征
通过杂交瘤技术获得高亲和力鼠源抗体。
用重组HBsAg免疫BALB/c小鼠,融合脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞,筛选阳性克隆,通过腹水生产和蛋白A亲和纯化获得抗体,并用SDS-PAGE和Western blot验证。
Performance Evaluation of a HBsAg-Specific Immunoadsorbent Based on a Humanized Anti-HBsAg Monoclonal Antibody.
包含体外吸附实验及两名CHB患者的临床前试验,但样本量小,缺乏动物模型和长期安全性数据。
CHO-K1细胞系 BALB/c小鼠 人工HBsAg阳性牛血清 两名慢性乙型肝炎患者
HmAb-12抗体的KD为0.36 nM,EC50为79.39 ng/mL。 免疫吸附剂制备时抗体偶联效率>95%,最佳配体密度为4 mg/g微球。 动态吸附实验采用5 mL柱,流量10 mL/min,总循环40分钟,每10分钟为一个循环。 临床前试验中,血浆处理体积为1.8-2.5 L,血流量100-120 mL/min,共两个循环。 HBsAg浓度通过化学发光免疫测定,总蛋白和白蛋白通过血液生化监测。
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
通过杂交瘤技术获得高亲和力鼠源抗体。
用重组HBsAg免疫BALB/c小鼠,融合脾细胞与SP2/0骨髓瘤细胞,筛选阳性克隆,通过腹水生产和蛋白A亲和纯化获得抗体,并用SDS-PAGE和Western blot验证。
通过CDR移植和框架残基优化降低免疫原性,同时保持高亲和力。
使用MOE软件进行同源建模、CDR移植和框架优化,产生12个人源化变体(HmAb-1至12),瞬时转染HEK293E细胞表达,通过iELISA和SPR评估结合活性和亲和力。
建立能稳定高表达HmAb-12的CHO-K1细胞系。
通过电穿孔将重轻链质粒转染CHO-K1细胞,经MSX筛选稳定池,单细胞打印分离克隆,筛选高产克隆进行补料分批培养,并通过SEC-HPLC和CE-SDS分析产物纯度。
将HmAb-12偶联至琼脂糖微球,制备具有高清除效率的免疫吸附剂。
采用高碘酸钠氧化法将抗体偶联到Focurose HPL琼脂糖微球上,优化配体密度,通过SEM观察形态,MTT评估细胞毒性,并进行静态和动态吸附实验。
在两名CHB患者中评估免疫吸附柱的安全性、HBsAg和HBV DNA清除效果。
采用体外循环血浆净化系统,串联血浆分离器和免疫吸附柱,进行双重血浆吸附,监测HBsAg、HBV DNA和血液成分。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 抗体纯度分析 | 预制梯度胶 | Sangon Biotech | -- |
| SDS-PAGE | 考马斯亮蓝染色液 | Biosharp Life Sciences | -- |
| Western blot | HRP标记的山羊抗小鼠IgG抗体 | ABclonal | AS003 |
| ECL化学发光底物 | Solarbio | PR1200 | |
| RNA提取 | 细胞总RNA提取试剂盒 | FOREGENE | RE-03111 |
| cDNA合成 | ReverTra Ace-α第一链cDNA合成试剂盒 | TOYOBO | FSK-100 |
| 抗体结合实验 | HRP标记的马抗小鼠IgG抗体 | Cell Signaling Technology | 7076S |
| HRP标记的驴抗人IgG抗体 | Proteintech | SA00001-11 | |
| 细胞培养 | HyClone HyCell TransFx-C培养基 | Cytiva | SH30941.02 |
| L-谷氨酰胺 | Gibco | A2916801 | |
| Pluronic F-68 | Gibco | 24040-032 | |
| 甲硫氨酸亚砜亚胺 | Sigma | M5379 | |
| 嘌呤霉素 | InvivoGen | ant-pr-1 | |
| 单克隆筛选 | EX-CELL CHO克隆培养基 | Merck | C6366 |
| 单细胞打印机 | Cytena | C.sight | |
| 细胞成像仪 | Solentim | Cell | |
| 分子相互作用分析仪 | ForteBio | Octet | |
| 细胞培养 | TPP TubeSpin生物反应器 | TPP | 87050 |
| 补料分批培养 | HyClone Cell Boost 5添加剂 | Cytiva | -- |
| 重组人LR3胰岛素样生长因子-1 | PrimeGene | -- | |
| 氯化锰 | Sigma | -- | |
| MaxFX补料培养基 | MediumBank | -- | |
| MaxFB补料培养基 | MediumBank | -- | |
| 细胞计数 | 台盼蓝溶液 | -- | -- |
| 抗体亲和力测定 | Biacore 8K系统 | Cytiva | -- |
| SEC-HPLC | ZENIX SEC-300色谱柱 | SEPAX | -- |
| Agilent 1290高效液相色谱系统 | Agilent | -- | |
| CE-SDS | PA800 Plus药物分析系统 | SCIEX | -- |
| 免疫吸附剂制备 | Focurose HPL琼脂糖微球 | -- | -- |
| 偶联效率测定 | Bradford检测试剂盒 | Solarbio | PC0010 |
| SEM | 离子溅射仪 | Leica Microsystems | Model |
| 场发射扫描电子显微镜 | Hitachi High-Tech Corporation | Model | |
| 临床前试验 | 血浆分离器 | Asahi Kasei Medical Co., Ltd. | Model |
| HBsAg特异性免疫吸附柱 | Wuhan Refine Medical Devices Co., Ltd. | Model |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 抗体人源化 | CDR移植的具体框架残基、点突变位点;HmAb-12的VH/VL序列 阅读提示:Methods 2.4 和 3.2 节 |
| 稳定细胞系建立 | 电穿孔参数(300V, 950μF);筛选药物浓度(MSX 25μM,嘌呤霉素20μg/mL) 阅读提示:Methods 2.5 和 2.6 节 |
| 补料分批培养 | 初始接种密度(1×106 cells/mL)、培养温度(36.5°C)、转速(220rpm)、补料策略 阅读提示:Methods 2.7 节 |
| 免疫吸附剂制备 | 偶联方法(高碘酸钠氧化法)、配体密度(4 mg/g)、储存液(1 g/L NaN3) 阅读提示:Methods 2.12 和 3.4 节 |
| 体外动态吸附 | 柱体积(5 mL)、流量(10 mL/min)、循环时间(40分钟)、HBsAg初始浓度 阅读提示:Methods 2.13 节,Figure 5D |
| 临床前试验 | 处理血浆量(1.8-2.5 L)、血流量(100-120 mL/min)、采样时间点 阅读提示:Methods 2.14 节 |