建立哮喘模型与细胞损伤模型
构建体内OVA诱导的哮喘小鼠模型和体外CoCl2诱导的mtCC1-2细胞损伤模型,以评估EPO-BM-MSCs的治疗效果。
使用C57BL/6小鼠,OVA致敏和激发建立哮喘模型;用400 μM CoCl2处理mtCC1-2细胞12小时模拟哮喘表型。
EPO-modified bone marrow MSCs alleviate asthma inflammation through enhanced mitochondrial activation and transfer by upregulating HO-1.
包含体内OVA小鼠模型、体外CoCl2细胞模型、线粒体转移荧光示踪、TNT抑制实验、HO-1抑制剂回补及M-sec/Miro1敲低验证等多个独立证据层级,并进行功能与机制验证。
OVA诱导的哮喘小鼠模型(C57BL/6小鼠) 小鼠Clara细胞系mtCC1-2(CoCl2处理模拟哮喘) EPO-BM-MSCs及其修饰细胞
OVA致敏和激发方案:第1、8天腹腔注射100 μg OVA吸附9%氢氧化铝,第15-17天气管内激发100 μg OVA EPO-BM-MSCs移植剂量与途径:5×10^5细胞/只,气管内递送 CoCl2处理浓度和时间:400 μM,12小时 TNT抑制实验使用Gap26(0.25 mg/mL)和HO-1抑制剂SnPPIX(10 μM,体内10 mM/kg) 共培养时间:24小时
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建体内OVA诱导的哮喘小鼠模型和体外CoCl2诱导的mtCC1-2细胞损伤模型,以评估EPO-BM-MSCs的治疗效果。
使用C57BL/6小鼠,OVA致敏和激发建立哮喘模型;用400 μM CoCl2处理mtCC1-2细胞12小时模拟哮喘表型。
验证EPO-BM-MSCs对哮喘小鼠气道炎症和细胞因子的影响。
通过气管内移植EPO-BM-MSCs或BM-MSCs(5×10^5细胞/只),随后进行组织学、BALF细胞计数、细胞因子检测和气道反应性评估。
检测EPO-BM-MSCs是否减轻哮喘相关的线粒体功能障碍。
使用流式细胞术检测肺组织和mtCC1-2细胞的线粒体膜电位,并通过Western blot检测凋亡相关蛋白。
确认EPO-BM-MSCs是否通过TNT向靶细胞捐赠线粒体。
共培养CFSE或CellTrace Violet标记的mtCC1-2细胞与Mito或GFP标记的EPO-BM-MSCs,使用Gap26抑制TNT,通过荧光显微镜和流式细胞术检测线粒体转移。
探究HO-1在EPO-BM-MSCs介导的线粒体转移和抗炎效果中的作用。
用SnPPIX抑制HO-1,检测线粒体转移、MMP以及体内炎症指标。
确定M-sec和Miro1是否参与TNT形成和线粒体转移。
通过siRNA敲低EPO-BM-MSCs中的M-sec或Miro1,检测TNT形成百分比和线粒体转移效率。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Bovogen Biologicals | -- |
| 青霉素/链霉素 | Beyotime | -- | |
| 胎牛血清 | Bovogen Biologicals | -- | |
| 药物处理 | 锡原卟啉IX | Frontier Scientific | -- |
| Gap26 | APExBIO | -- | |
| 动物造模 | 卵清蛋白 | Macklin | -- |
| 氢氧化铝水合物 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 乙酰胆碱 | -- | -- | |
| 细胞标记 | CFSE | Thermo Fisher Scientific | -- |
| CellTrace Violet | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| MitoTracker Red | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 线粒体检测 | JC-1 | Sigma-Aldrich | -- |
| MitoSOX Red | Thermo Fisher Scientific | -- | |
| 细胞核染色 | DAPI | Servicebio | -- |
| 细胞骨架标记 | 肌动蛋白示踪绿 | -- | -- |
| 转染 | Lipofectamine 3000 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 聚凝胺 | -- | -- | |
| ELISA | 小鼠IL-13 ELISA试剂盒 | Multi Sciences | -- |
| 小鼠IL-5 ELISA试剂盒 | Abcam | -- | |
| 小鼠IL-4 ELISA试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 小鼠IL-33 ELISA试剂盒 | Abcam | -- | |
| 小鼠TSLP ELISA试剂盒 | Multi Sciences | -- | |
| 蛋白提取 | 蛋白提取试剂盒 | Beyotime | -- |
| 蛋白定量 | BCA测定 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| Western blot | PVDF膜 | Beyotime | -- |
| 抗体 | 抗cleaved caspase 9抗体 | Invitrogen | PA5-105271 |
| 抗caspase 9抗体 | Proteintech | 10380-1-AP | |
| 抗cleaved caspase 3抗体 | Invitrogen | PA5-114687 | |
| 抗caspase 3抗体 | Invitrogen | 43-7800 | |
| 抗HO-1抗体 | Abcam | ab189491 | |
| 抗M-sec抗体 | Abcam | ab196659 | |
| 抗Miro1抗体 | Abcam | ab188029 | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| RNA提取 | AxyPrep多功能总RNA提取试剂盒 | AXYGEN | -- |
| 逆转录 | 第一链cDNA合成试剂盒 | Novoprotein | -- |
| qPCR | Novostart SYBR qPCR SuperMix Plus | Novoprotein | -- |
| 7300 Plus实时荧光定量PCR系统 | Applied Biosystems | -- | |
| 流式细胞术 | FACS Calibur流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| 荧光显微镜 | 奥林巴斯FV3000共聚焦显微镜 | Olympus | -- |
| 显微镜 | 奥林巴斯GX-71显微镜 | Olympus | -- |
| 图像分析 | LAS-4000 Mini图像分析仪 | Fuji Film | -- |
| 酶标仪 | iMark酶标仪 | Bio-Rad | -- |
| 线粒体分离 | 线粒体分离试剂盒 | Sigma-Aldrich | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | BM-MSCs代数(6-10代)、培养条件(37°C、5% CO2)、培养基(Procell标准培养基);mtCC1-2细胞培养基(10% FBS DMEM,含1%青霉素/链霉素) 阅读提示:Materials and methods:BM-MSCs and establishment of EPO-BM-MSCs;mtCC1-2 cell culture and treatment |
| OVA诱导哮喘模型 | 小鼠品系、性别、年龄(6-8周雌性C57BL/6)、OVA致敏和激发剂量及时间(第1、8天腹腔注射100 μg OVA吸附9%氢氧化铝;第15-17天气管内100 μg OVA)、移植时间(激发前18-24小时) 阅读提示:Materials and methods:Animal studies |
| 线粒体转移检测 | 细胞标记(CFSE、CellTrace Violet、MitoTracker Red、GFP)、共培养时间(24小时)、Gap26浓度(0.25 mg/mL) 阅读提示:Materials and methods:Determination of mitochondrial transfer;Figure 4 legend |
| 药物处理 | CoCl2浓度和时间(400 μM,12小时);SnPPIX浓度(体外10 μM,体内10 mM/kg) 阅读提示:Materials and methods:mtCC1-2 cell culture and treatment;Animal studies |
| siRNA敲低 | siRNA序列(si-M-sec, si-Miro1, si-NC)、转染试剂(Lipofectamine 3000)、转染效率验证 阅读提示:Materials and methods:Constructs and transfection of EPO-BM-MSCs |