材料制备与表征
构建PVA-CS-PANI-GSNO(PCPG)复合纳米纤维膜,并验证其形貌、化学结构、亲水性、降解性、光热性能和NO释放能力。
采用静电纺丝技术制备PCPG膜,通过SEM、FT-IR、接触角、吸水率、降解率、光热性能测试和Griess试剂法检测NO释放。
Photothermal-triggered NO-releasing nanofiber membrane mitigates intervertebral disc degeneration via inflammation inhibition and matrix stabilization.
包含体外细胞实验(LPS诱导的AFCs损伤模型)、大鼠尾椎AF损伤模型、RNA测序转录组分析、生物力学测试等多层级验证,并涵盖功能与机制验证。
人纤维环细胞(AFCs) 大鼠尾椎AF损伤模型
人纤维环细胞(AFCs)培养条件、传代数(第三代) 体外IVDD模型建立:LPS浓度(100 μg/mL)和处理时间(4 h) NIR照射参数:808 nm激光,1 W/cm2,循环照射5 min(每30 s一次,间隔冷却至37 °C) 大鼠分组:Sham、Defect、PCP、PCP+G、PCP+N、PCPG+N,每组6只,治疗时间点(4周和8周)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
构建PVA-CS-PANI-GSNO(PCPG)复合纳米纤维膜,并验证其形貌、化学结构、亲水性、降解性、光热性能和NO释放能力。
采用静电纺丝技术制备PCPG膜,通过SEM、FT-IR、接触角、吸水率、降解率、光热性能测试和Griess试剂法检测NO释放。
评估PCPG膜对AFCs的细胞毒性、增殖、以及温和光热和NO协同治疗对炎症、ECM合成、凋亡和迁移的影响。
AFCs与膜共培养,设立对照组(Ctrl、LPS、PC、PCG、PCP、PCPG)和NIR照射组,使用CCK-8、活/死染色、RT-qPCR、Western blot、免疫荧光、流式细胞术和划痕实验。
评估PCPG膜在大鼠尾椎AF损伤模型中的修复效果,包括影像学、组织学和生物力学评估。
通过针刺建立大鼠尾椎AF损伤模型,植入不同膜,NIR照射组隔日处理,于4周和8周取材,进行X-ray、MRI、H&E、SO/FG染色、免疫组化和生物力学测试。
揭示PCPG+N协同治疗的分子机制。
对LPS和PCPG+N处理后的AFCs进行RNA-seq,分析差异表达基因,并进行GO、KEGG和GSEA富集分析。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 纳米纤维膜制备 | 聚苯胺 | -- | -- |
| S-亚硝基谷胱甘肽 | MACKLIN | -- | |
| 聚乙烯醇 | MACKLIN | -- | |
| 壳聚糖 | MACKLIN | -- | |
| 盐酸 | -- | -- | |
| 材料表征 | 扫描电子显微镜 | Hitachi | Regulus8100 |
| 傅里叶变换红外光谱仪 | NICOLET | Nexus 670 | |
| 光学接触角测量仪 | Dataphysics | OCA20 | |
| 光热性能测试 | 808纳米激光器 | LEIRUI | 808 |
| 红外热像仪 | UNI-T | UTi120S | |
| NO释放检测 | Griess试剂 | Sigma-Aldrich | G4410-10G |
| 酶标仪 | ThermoFisher | Multiskan FC | |
| 细胞培养 | 人纤维环细胞 | Procell | CP-H174 |
| AFCs完全培养基 | Procell | CM-H174 | |
| Transwell插入小室 | CORNING | -- | |
| 细胞实验 | 脂多糖 | Solarbio | L8880 |
| 细胞增殖 | CCK-8试剂盒 | -- | -- |
| 细胞活性 | 活/死荧光试剂盒 | Bestbio | -- |
| 荧光显微镜成像 | 荧光显微镜 | Nikon | ECLIPSE Ti2-E |
| 荧光显微镜 | Nikon | Eclipse C1 | |
| 划痕实验 | 光学显微镜 | Olympus | -- |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | ThermoFisher | 15596026CN |
| NanoDrop One分光光度计 | ThermoFisher | -- | |
| PrimeScript RT试剂盒 | TaKaRa | RR037A | |
| ABI 7500实时荧光定量PCR系统 | ThermoFisher | -- | |
| TB Green Premix Ex Taq II | TaKaRa | RR820A | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 蛋白酶抑制剂 | Beyotime | -- | |
| 磷酸酶抑制剂 | Beyotime | -- | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| PVDF膜 | MilliporeSigma | -- | |
| 抗HSP70抗体 | Abcam | ab181606 | |
| 抗HSP47抗体 | Abcam | ab109117 | |
| 抗COL1抗体 | Abcam | ab270993 | |
| 抗COL2抗体 | Abclonal | RP02991 | |
| 抗BCL2抗体 | Abcam | ab117115 | |
| 抗BAX抗体 | Abcam | ab32503 | |
| 抗IL-1β抗体 | Proteintech | 26048-1-AP | |
| 抗TNF-α抗体 | Proteintech | 17590-1-AP | |
| 抗GAPDH抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| TBST缓冲液 | Servicebio | -- | |
| 化学发光试剂 | UElandy | S6009M | |
| Bio-Rad ChemiDoc Touch成像系统 | Bio-Rad | -- | |
| 免疫荧光 | Triton X-100 | -- | -- |
| 牛血清白蛋白 | Solarbio | -- | |
| 抗COL1抗体 | Abcam | ab270993 | |
| 抗COL2抗体 | Proteintech | 28459-1-AP | |
| 抗HSP70抗体 | Abcam | ab181606 | |
| 抗TNF-α抗体 | Abcam | ab307164 | |
| 山羊抗兔IgG H&L(Alexa Fluor 488) | Abcam | ab150077 | |
| DAPI | Beyotime | -- | |
| 流式细胞术 | Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | MultiSciences | -- |
| 流式细胞仪 | Beckman Coulter | -- | |
| 动物实验 | 聚维酮碘 | -- | -- |
| 影像学 | 数字X射线系统 | DAWEI | RV-20A |
| 4.7 T磁共振成像系统 | Bruker | BioSpec 47/30 | |
| 组织学 | 旋转切片机 | Leica | -- |
| 免疫组化 | DAB底物试剂盒 | Servicebio | G1212 |
| RNA-seq | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| Illumina NovaSeq 6000测序平台 | Illumina | -- | |
| 统计分析 | Prism 8.0软件 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 纳米纤维膜制备 | PVA/CS比例、PANI和GSNO浓度、静电纺丝参数(电压、流速、距离、滚筒转速)、交联条件(戊二醛和盐酸用量、压力、时间) 阅读提示:见Experimental section 2.1和2.2,以及Supporting Information |
| 体外细胞实验 | AFCs代数、细胞密度、LPS浓度和处理时间、共培养方式(transwell)、NIR照射参数(功率密度、时间、循环)、检测时间点 阅读提示:见Experimental section 2.10-2.16,以及Figure legends |
| 动物实验 | 大鼠品系、性别、周龄、分组、针刺造模方法(针号、椎间盘位置)、膜植入方式、NIR照射参数、取材时间点 阅读提示:见Experimental section 2.17,以及Figure 5 legend |
| 生物力学测试 | 加载频率、周期数、温度、力控制模式、参数计算(刚度、ROM、NZ) 阅读提示:见Experimental section 2.21,以及Figure 7 legend |