RELNs的分离与表征
获取并验证RELNs的纳米颗粒特性,包括大小、形态、表面电荷等。
从红甘蓝中提取RELNs,通过NTA测定粒径和浓度,Zetasizer测定zeta电位,TEM观察形态,BCA测定蛋白含量。
Red cabbage exosome-like nanoparticles inhibited LPS-induced inflammation and oxidative stress in RAW264.7 cells.
实验包括细胞活力、摄取、炎症因子检测、信号通路分析、氧化应激指标检测及抑制剂验证,但主要限于体外细胞实验,缺乏动物模型和患者样本验证,整体完整度中等。
RAW264.7小鼠巨噬细胞系
细胞系:RAW264.7,购自Procell Life Science and Technology Company(武汉,中国) LPS处理浓度:1 μg/mL,处理时间24小时 RELNs浓度:40和80 μg/mL,与LPS共处理24小时 Nrf2抑制剂ML385浓度:5 μM 统计方法:单因素方差分析(ANOVA)后Tukey事后检验,显著性水平P<0.05
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证RELNs的纳米颗粒特性,包括大小、形态、表面电荷等。
从红甘蓝中提取RELNs,通过NTA测定粒径和浓度,Zetasizer测定zeta电位,TEM观察形态,BCA测定蛋白含量。
评估RELNs对RAW264.7细胞的毒性和摄取能力。
MTT法检测不同浓度RELNs处理24和48小时的细胞活力;使用DIO标记RELNs,检测其被细胞摄取的情况。
验证RELNs对LPS诱导的RAW264.7细胞炎症反应的影响。
使用Griess试剂检测NO含量,RT-qPCR和ELISA检测炎症因子(iNOS, TNF-α, IL-1β, IL-6)以及M1/M2标记物(CD86, Mincle, CD206, Arg1)的表达。
探究RELNs是否通过抑制TLR4/NF-κB通路发挥抗炎作用。
RT-qPCR检测TLR4、CD14、MyD88、TRAF6、NF-κB的mRNA水平,ELISA检测TLR4和NF-κB蛋白水平,免疫荧光检测NF-κB p65的核转位。
评估RELNs对LPS诱导的氧化应激和线粒体损伤的保护作用。
DCFH-DA荧光探针检测ROS,Rh123染色检测线粒体膜电位(MMP),Mito-Tracker Green染色观察线粒体含量,同时检测MDA含量和SOD、CAT、GSH-Px活性。
探究RELNs是否通过激活Nrf2/Keap1通路来增强抗氧化能力。
RT-qPCR检测Nrf2、Keap1、HO-1、NQO1、GCLM的mRNA表达,免疫荧光检测Nrf2的核转位。
验证RELNs的抗炎作用是否依赖于Nrf2表达。
使用Nrf2特异性抑制剂ML385(5 μM)阻断Nrf2,通过RT-qPCR和Western blot检测Nrf2、HO-1及炎症因子(TNF-α、IL-1β、IL-6、NF-κB)的表达,以及核内NF-κB p65水平。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM基础培养基 | Invitrogen-Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Clark Bioscience | -- | |
| 青霉素 | Invitrogen-Gibco | -- | |
| 链霉素 | Invitrogen-Gibco | -- | |
| 药物处理 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | -- |
| 细胞活力检测 | MTT | Aladdin Biochemical Technology | -- |
| 细胞摄取 | DIO染料 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 细胞核染色 | DAPI | -- | -- |
| ROS检测 | DCFH-DA荧光探针 | Aladdin Biochemical Technology | -- |
| 线粒体膜电位检测 | 罗丹明123 | Macklin Biochemical | -- |
| 线粒体含量检测 | Mito-Tracker Green溶液 | Beyotime Biotechnology | -- |
| 蛋白提取 | Western及IP细胞裂解液 | Beyotime Biotechnology | -- |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- |
| 核蛋白提取 | 核浆蛋白提取试剂盒 | Beyotime Biotechnology | -- |
| Western blot | PVDF膜 | -- | -- |
| 增强化学发光系统 | Beyotime | -- | |
| ELISA | TNF-α、IL-1β、IL-6、TLR4、NF-κB ELISA试剂盒 | Sino Best Bio | -- |
| 氧化应激检测 | MDA检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | -- |
| SOD检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | -- | |
| CAT检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | -- | |
| GSH-Px检测试剂盒 | Nanjing Jiancheng | -- | |
| 纳米颗粒分离 | 外泌体分离试剂盒 | Umibio | -- |
| 纳米颗粒表征 | Zetasizer Nano-ZSE粒度仪 | Malvern | -- |
| 透射电子显微镜 | JEM-1400 flash | -- | |
| RT-qPCR | CFX Connect PCR仪 | Bio-Rad | -- |
| 细胞培养 | 酶标仪 | Bio-Tek | -- |
| 细胞成像 | 共聚焦激光扫描显微镜 | Zeiss-800 | -- |
| 荧光显微镜 | 荧光显微镜 | Molecular Devi | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与处理 | 细胞系:RAW264.7;培养基:DMEM基础培养基加10%FBS、1%青霉素、1%链霉素;LPS处理浓度:1 μg/mL;RELNs浓度:40和80 μg/mL;处理时间:24小时 阅读提示:见Materials and methods中的Cell culture部分 |
| 炎症因子检测 | NO含量检测(Griess试剂);炎症因子TNF-α、IL-1β、IL-6的mRNA和蛋白水平;M1/M2标记物(CD86, Mincle, CD206, Arg1)的mRNA水平 阅读提示:见Materials and methods中的The content of nitric oxide (NO)、RT-qPCR、ELISA部分,以及Figure 2 |
| TLR4/NF-κB通路检测 | TLR4、CD14、MyD88、TRAF6、NF-κB的mRNA和蛋白水平;NF-κB p65的核转位情况(免疫荧光) 阅读提示:见Materials and methods中的RT-qPCR、ELISA、Cell immunofluorescence analysis部分,以及Figure 3 |
| 氧化应激和线粒体功能检测 | ROS水平(DCFH-DA);MDA含量;SOD、CAT、GSH-Px活性;线粒体膜电位(Rh123);线粒体含量(Mito-Tracker Green) 阅读提示:见Materials and methods中的ROS detection、Measurement of MMP、Measurement of mitochondrial content、Antioxidant enzyme activity and lipid peroxidation assay部分,以及Figure 4和Figure S1 |
| Nrf2/Keap1通路检测 | Nrf2、Keap1、HO-1、NQO1、GCLM的mRNA水平;Nrf2的核转位(免疫荧光) 阅读提示:见Materials and methods中的RT-qPCR、Cell immunofluorescence analysis部分,以及Figure 5 |
| Nrf2依赖性验证 | ML385(Nrf2抑制剂)浓度:5 μM;处理方式:ML385预处理后与RELNs共处理;检测Nrf2、HO-1、炎症因子(TNF-α、IL-1β、IL-6、NF-κB)的mRNA和蛋白水平;核内NF-κB p65水平 阅读提示:见Materials and methods中的Cell culture、RT-qPCR、Western blotting部分,以及Figure 6 |