hUCMSC-EVs的分离与鉴定
获取并验证hUCMSC-EVs的纯度和特性
超速离心法从hUCMSC培养上清中分离EVs,通过TEM观察形态、NTA检测粒径分布、WB检测标志物(CD81, Alix, Hsp70)及非EV标志物Calnexin。
Mitigating chemotherapy-induced granulosa cell damage: role of hUCMSC-EVs in regulating the lncRNA HCP5-miR-20a-5p-YAP1 network.
包含体外细胞实验(hGCs损伤模型、功能测定、双荧光素酶、RIP、RNA pull-down)及体内大鼠POF模型(HE、ELISA、TUNEL、IF),多层级验证机制。
人颗粒细胞系hGCs(CP-H192) hUCMSCs(CP-CL11) 环磷酰胺诱导的POF大鼠模型(SD大鼠)
CP诱导hGCs损伤的浓度100 µg/mL和时间24小时 hUCMSC-EVs与GCs共培养的浓度5 µg/mL及时间24小时 EVs的鉴定:NTA粒径50-150 nm,TEM形态,WB标志物(CD81, Alix, Hsp70, Calnexin阴性) hUCMSC-EVs的给药途径:尾静脉注射125 μg(溶于100 μL PBS),在CP注射后第1、5、10天 CP诱导POF大鼠模型的剂量:起始50 mg/kg,随后8 mg/kg/天共14天
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获取并验证hUCMSC-EVs的纯度和特性
超速离心法从hUCMSC培养上清中分离EVs,通过TEM观察形态、NTA检测粒径分布、WB检测标志物(CD81, Alix, Hsp70)及非EV标志物Calnexin。
验证hUCMSC-EVs能否将HCP5递送至颗粒细胞
使用PKH67标记EVs与GCs共培养观察摄取;用Cy3标记HCP5转染hUCMSCs后提取EVs,与GCs共培养观察递送;RNase保护实验验证HCP5包裹于EVs内部。
评估hUCMSC-EVs递送HCP5对CP诱导GC损伤的功能影响
敲低hUCMSCs中HCP5(sh-HCP5)后提取EVs,与CP诱导的GCs共培养,检测细胞活力、凋亡相关基因和DNA损伤标志物。
阐明HCP5调控YAP1的分子机制
生物信息学预测HCP5、miR-20a-5p和YAP1的相互作用;双荧光素酶报告基因实验验证结合;RIP和RNA pull-down验证RNA-蛋白及RNA-RNA相互作用;RT-qPCR和WB检测表达变化。
在动物模型中验证hUCMSC-EVs递送HCP5对CP诱导卵巢损伤的保护作用
建立CP诱导POF大鼠模型,尾静脉注射hUCMSC-EVs(或sh-HCP5-EVs),检测卵巢组织病理、内分泌功能、细胞凋亡和DNA损伤标志物。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | Gibco | 11320033 |
| 胎牛血清 | Gibco | 12483020 | |
| 药物处理 | 环磷酰胺 | Sigma-Aldrich | 6055-19-2 |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Invitrogen | 15596026 |
| 细胞培养 | 人脐带间充质干细胞 | Procell Life Science & Technology Co., Ltd. | CP-CL11 |
| 人颗粒细胞 | Procell Life Science & Technology Co., Ltd. | CP-H192 | |
| EV分离 | 超速离心机 | Beckman Coulter Inc. | Optima |
| EV鉴定 | NanoSight纳米颗粒追踪分析系统 | Malvern Instruments | -- |
| 透射电子显微镜 | Hitachi | H7650 | |
| EV标记与追踪 | PKH67荧光标记试剂盒 | Sigma-Aldrich | PKH67GL |
| PKH26 | Sigma-Aldrich | PKH26GL | |
| 细胞转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | L3000015 |
| 嘌呤霉素 | Thermo Fisher Scientific | A1113803 | |
| 慢病毒包装 | 293T细胞系 | ATCC | CRL-3216 |
| 流式分析 | BD FACSVerse流式细胞仪 | BD | -- |
| 双荧光素酶报告基因 | 双荧光素酶报告基因检测系统 | Promega | E1910 |
| RNA免疫沉淀 | Magna-RNA结合蛋白免疫沉淀试剂盒 | Millipore | 17-700 |
| RNA pull-down | 链霉亲和素磁珠 | Sigma-Aldrich | LSKMAGT |
| CCK-8 | CCK-8试剂盒 | Yeasen | 40203ES60 |
| 细胞增殖检测 | Multiskan FC酶标仪 | Thermo Fisher Scientific | 51119180ET |
| 免疫荧光 | 抗γH2AX抗体 | Abcam | ab2893 |
| Alexa Fluor 488山羊抗兔IgG | Cell Signaling Technology | 4412S | |
| miRNA检测 | MiRcute miRNA RT-qPCR试剂盒 | TIANGEN | FP411 |
| RT-qPCR | PrimeScript RT试剂盒 | Takara | RR047A |
| SYBR Premix Ex Taq II | Takara | -- | |
| 蛋白提取 | 裂解缓冲液 | Thermo Fisher Scientific | 89901 |
| 总ExoRNA和蛋白分离试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 4478545 | |
| 蛋白定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Sigma-Aldrich | BCA1 |
| Western blot | HRP标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab205718 |
| HRP标记的山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab205719 | |
| 增强化学发光底物试剂盒 | Yeasen | 36222ES60 | |
| HE染色 | 伊红 | -- | -- |
| ELISA | FSH和E2 ELISA试剂盒 | NanJing JianCheng Bioengineering Institute | H206-1-2/H101-1-2/H102-1-1 |
| 核染色 | DAPI | Sigma-Aldrich | MBD0020 |
| 细胞骨架染色 | 鬼笔环肽-iFluor 488试剂 | Abcam | ab176753 |
| RNase保护实验 | RNase A | Sigma-Aldrich | 11119915001 |
| Triton X-100 | Sigma-Aldrich | 93443 | |
| EV分离 | 0.22 μm滤器 | -- | -- |
| 荧光显微镜 | 荧光显微镜 | Nikon | ECLIPSE |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养与处理 | hUCMSCs和hGCs的培养条件(DMEM/F12+10% FBS,37°C,5% CO2);hUCMSCs传代至3-7代用于实验;CP诱导hGCs损伤的浓度100 μg/mL和时间24小时 阅读提示:Materials and methods: In vitro cell treatment |
| EV分离与鉴定 | EV分离的超速离心步骤(500g, 2000g, 10000g, 110000g);粒径50-150 nm;标志蛋白(CD81, Alix, Hsp70)阳性、Calnexin阴性 阅读提示:Materials and methods: EV isolation and purification; EV identification |
| EV与GCs共培养及HCP5递送验证 | EVs共培养浓度5 μg/mL和时间24小时;PKH67标记EVs共培养12小时;RNase保护实验处理条件 阅读提示:Materials and methods: Uptake of EVs by GCs; Validation of HCP5 loading to EVs |
| 转染与慢病毒感染 | 慢病毒感染hUCMSCs的MOI=20、筛选嘌呤霉素浓度1 μg/mL、筛选时间3天;GCs转染oe-HCP5、sh-HCP5、miR-20a-5p mimic等使用Lipofectamine 2000 阅读提示:Materials and methods: Lentiviral infection and cell treatment |
| 动物模型建立与处理 | SD大鼠周龄、性别(7周龄雌性);CP给药方案(起始50 mg/kg,随后8 mg/kg/天共14天);EVs给药剂量125 μg(100 μL PBS)尾静脉注射,时间点(第1、5、10天);每组10只;取材时间(第30天) 阅读提示:Materials and methods: Construction of a CP-induced POF mouse model; Results Figure 7A |
| RNA提取与RT-qPCR | miRNA RT-qPCR使用茎环引物,内参U6;lncRNA和mRNA使用PrimeScript RT试剂盒,内参GAPDH;2-ΔΔCt方法 阅读提示:Materials and methods: RNA extraction and RT-qPCR |
| Western blot | 蛋白提取使用裂解缓冲液,定量使用BCA;一抗稀释比例(如anti-γH2AX 1:1000,anti-YAP1等);二抗稀释比例(1:5000) 阅读提示:Materials and methods: RNA extraction and RT-qPCR and WB; Table S4 |