PCNA表达与预后分析
评估PCNA在肝细胞癌组织中的表达及其与患者预后的关联。
利用TCGA和HPA数据库分析PCNA在HCC与正常组织中的表达差异,进行ROC曲线和生存分析(Kaplan-Meier)。
Targeting PCNA/PARP1 axis inhibits the malignant progression of hepatocellular carcinoma.
包含体外细胞实验、体内异种移植瘤模型、RNA测序和临床数据(TCGA)等多层级验证,且明确进行功能验证和机制研究(如Co-IP验证相互作用)。
HepG2细胞 Huh7细胞 Hep3B细胞 BALB/c裸鼠异种移植瘤模型
PCNA敲低或过表达的HepG2、Huh7、Hep3B细胞模型 AOH1160处理浓度(0.5、1.0、1.5 μM)及Olaparib浓度(10 μM) 药物联用剂量比(AOH1160:Olaparib = 1:8)及CI值 体内给药方案:Olaparib 40 mg/kg、AOH1160 20 mg/kg、联合组(10+20 mg/kg)、序贯给药(40 mg/kg 10天+20 mg/kg 10天) 关键检测指标:DNA损伤(彗星实验、γH2AX foci)、细胞周期(流式)、凋亡、蛋白表达(WB、IHC)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估PCNA在肝细胞癌组织中的表达及其与患者预后的关联。
利用TCGA和HPA数据库分析PCNA在HCC与正常组织中的表达差异,进行ROC曲线和生存分析(Kaplan-Meier)。
验证PCNA对肝癌细胞增殖、凋亡和克隆形成的影响。
在HepG2、Huh7和Hep3B细胞中敲低或过表达PCNA,通过MTT、克隆形成和流式凋亡检测细胞增殖和凋亡。
鉴定PCNA敲低后的差异表达基因及其参与的通路。
对shPCNA和shNC的HepG2细胞进行RNA-seq,并进行GO、KEGG、GSEA富集分析。
评估PCNA抑制对DNA损伤修复能力的影响。
通过碱性彗星实验和γH2AX免疫荧光检测DNA损伤程度。
评估PCNA抑制对细胞周期进程的影响。
通过流式细胞术检测细胞周期分布,并分析细胞周期调控因子的表达。
验证PCNA与PARP1的相互作用及上下游调控关系。
通过Co-IP验证蛋白质相互作用;检测敲低PCNA对PARP1表达的影响。
评估PCNA抑制对PARP抑制剂敏感性的影响及联合用药的协同效应。
使用shPCNA或AOH1160处理HepG2细胞,并联合Olaparib,检测增殖、凋亡、DNA损伤及体内肿瘤生长。
验证PCNA/PARP1轴抑制对肿瘤生长的抑制作用。
在裸鼠皮下接种HepG2细胞,给予不同处理,记录肿瘤体积和重量,并进行免疫组化检测Ki67和PCNA/PARP1表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | AOH1160 | Targetmol | -- |
| 奥拉帕利(AZD2281) | Targetmol | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | KeyGEN Biotech | KGL1206 |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 细胞转染 | HitransG A | -- | -- |
| 嘌呤霉素 | -- | -- | |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Vazyme | -- |
| RNA-seq文库构建 | NEBNext Ultra RNA文库制备试剂盒 | Illumina | -- |
| RNA-seq | Illumina HiSeq 2500/4000测序仪 | Illumina | -- |
| RNA质量检测 | Agilent 2100生物分析仪 | Agilent | -- |
| 细胞活力实验 | MTT试剂 | -- | -- |
| 克隆形成实验 | 结晶紫 | Solarbio Life Sciences | -- |
| 流式分析 | Annexin V-FITC/PI凋亡检测试剂盒 | MultiSciences | AT101 |
| 细胞周期检测试剂盒 | MultiSciences | CCS012 | |
| 蛋白质提取及定量 | RIPA细胞裂解液 | KeyGEN Biotech | KGB5203-100 |
| 蛋白质定量 | BCA蛋白定量试剂盒 | Solarbio | PC0020 |
| Western blot | PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 |
| PVDF膜 | Millipore | ISEQ00010 | |
| 免疫共沉淀 | Protein A/G磁珠免疫共沉淀试剂盒 | ACE Biotechnology | -- |
| RT-PCR | HiScript II一步法RT-PCR试剂盒 | Vazyme | P612-01 |
| Q-PCR | ChamQ SYBR Q-PCR预混液 | Vazyme | Q311-02 |
| 免疫荧光 | DAPI | -- | -- |
| 组织染色 | DAB显色液 | Sigma | -- |
| 伊红Y溶液 | Beyotime | -- | |
| 显微镜 | 尼康ECLIPSE 80i显微镜 | Nikon | -- |
| 蔡司LSM 900激光共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| 成像系统 | EVOS M7000成像系统 | Thermo Fisher | -- |
| 流式细胞仪 | NovoCyte Quanteon流式细胞仪 | -- | -- |
| 酶标仪 | 酶标仪(Synergy NEO2) | BioTek | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系来源(HepG2、Hep3B、Huh7),培养条件(DMEM+10% FBS,37°C,5% CO2),传代次数限制(不超过6次),STR鉴定频率(每半年) 阅读提示:见Materials and Methods: Cell culture |
| 基因敲低与过表达 | 慢病毒载体(shPCNA, shPARP1, oePCNA)序列,感染时间(3天),嘌呤霉素筛选浓度(2.0 μg/mL)和维持浓度(1.0 μg/mL),转染效率验证 阅读提示:见Materials and Methods: Lentivirus transfection |
| 药物处理 | AOH1160和Olaparib的溶剂(DMSO)、储存浓度(10 mM)、储存温度(-20°C),使用浓度(AOH1160 0.5-1.5 μM,Olaparib 10 μM),处理时间(6天) 阅读提示:见Materials and Methods: Reagents, primers, antibodies |
| 细胞活力与联合指数 | 细胞接种密度(1.5×10^3-4×10^3/孔),处理时间(6天),MTT检测波长(490 nm),CI值计算(Chou-Talalay法) 阅读提示:见Materials and Methods: Cell viability assay and determination of drug synergy |
| DNA损伤检测 | 细胞处理时间(6天),彗星实验条件(裂解2h,解旋30min,电泳25V 40min),γH2AX foci计数 阅读提示:见Materials and Methods: Alkaline comet assay and Immunofluorescence assay |
| 细胞周期分析 | 药物处理时间(6天),PI染色,流式分析 阅读提示:见Materials and Methods: Analysis of apoptosis and cell cycle |
| 体内模型 | 小鼠品系(BALB/c裸鼠,雌性,6-8周龄),接种细胞数(5×10^6),给药方案(Olaparib 40 mg/kg,AOH1160 20 mg/kg,联合10+20 mg/kg,序贯40 mg/kg 10天+20 mg/kg 10天),给药方式(腹腔注射,21天),肿瘤测量频率(每2天) 阅读提示:见Materials and Methods: Mouse xenograft tumor model |