建立LPS诱导的内皮损伤模型
模拟高血压条件下的血管内皮损伤和炎症反应,并确定最佳诱导条件。
用不同浓度(0-10 μg/mL)的LPS处理RAECs不同时间(6-48小时),评估细胞形态、活力、NO水平和炎症因子分泌。
A vascular endothelial cell, neuron, and microglia tri-culture model to study hypertension-related depression.
包含体外细胞模型建立与优化、功能验证(CCK-8、活死染色、ELISA、荧光探针)及机制验证(TLR4/NF-κB通路、小胶质细胞极化),并设置药物干预和阳性对照。
大鼠主动脉内皮细胞(RAECs) 原代海马神经元 原代皮层小胶质细胞 三细胞共培养模型
LPS诱导RAECs内皮损伤的最佳条件:1 μg/mL LPS处理24小时 高血压环境条件培养基(CMHE)的制备:1 μg/mL LPS处理RAECs 24小时,收集上清液 三培养模型诱导条件:10% CMHE联合200 μM皮质酮处理24小时 TLR4抑制剂TAK-242(10 μM)作为干预,氟西汀(10 nM)作为阳性对照 检测指标包括神经元活力、凋亡、ROS、炎症因子、单胺类神经递质及小胶质细胞表型
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟高血压条件下的血管内皮损伤和炎症反应,并确定最佳诱导条件。
用不同浓度(0-10 μg/mL)的LPS处理RAECs不同时间(6-48小时),评估细胞形态、活力、NO水平和炎症因子分泌。
收集LPS诱导的RAECs分泌的炎性因子,形成模拟高血压环境的条件培养基。
RAECs用1 μg/mL LPS处理24小时,收集上清液,离心过滤后作为CMHE;对照组用正常培养基培养收集BM。
为三培养模型提供神经元和小胶质细胞。
从新生大鼠皮层分离小胶质细胞,从E16-18胚胎大鼠分离海马神经元,分别进行原代培养。
模拟神经元与小胶质细胞间的相互作用。
采用改良的Banker共培养方法,将神经元盖玻片倒置于小胶质细胞上方,通过石蜡点分隔,共享培养基进行共培养。
模拟高血压相关抑郁症的复杂病理环境。
向神经元-小胶质细胞共培养体系中加入10% CMHE和200 μM皮质酮,处理24小时,形成HD模型。
验证三培养模型是否重复HD的病理特征,包括神经元损伤、炎症和神经递质异常。
检测神经元活力(CCK-8)、死亡(Calcein-AM/PI)、凋亡(TUNEL)、ROS(DCFH-DA)、尼氏体(Nissl染色)、炎症因子(ELISA)、单胺类神经递质(ELISA)、小胶质细胞表型及TLR4/NF-κB(免疫荧光)。
验证TLR4/NF-κB信号通路在模型损伤中的作用。
在模型基础上加入TLR4抑制剂TAK-242(10 μM)或阳性对照氟西汀(10 nM),评估其对神经元损伤、炎症和神经递质的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | Gibco | 8120254 |
| 胎牛血清 | Gibco | 10270-106 | |
| 青霉素-链霉素 | Solarbio | P1400 | |
| 神经元培养 | Neurobasal培养基 | Gibco | 21103-049 |
| B27添加剂 | Gibco | 17504-044 | |
| Glutamax添加剂 | Gibco | 35050061 | |
| 细胞消化 | 胰蛋白酶 | Gibco | 25200056 |
| 神经元培养 | 多聚赖氨酸 | Solarbio | P8130 |
| 胶原酶I | Solarbio | C8140 | |
| 药物处理 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | L2880 |
| 皮质酮 | MedChemExpress | HY-B1618 | |
| 氟西汀 | Aladdin | F189157 | |
| TAK-242(TLR4抑制剂) | MedChemExpress | HY-11109 | |
| NO检测 | 1,2-二氨基蒽醌 | MedChemExpress | HY-W013435 |
| 细胞核染色 | Hoechst 33342染色剂 | Beyotime | C1022 |
| ROS检测 | DCFH-DA荧光探针 | MedChemExpress | HY-D0940 |
| 活死细胞染色 | Calcein-AM/PI双染试剂 | Solarbio | CA1630 |
| 尼氏染色 | 尼氏染色液 | Beyotime | C0117 |
| 免疫荧光 | DAPI染色液 | Solarbio | S2110 |
| ELISA | IL-1β ELISA试剂盒 | AIDISHENG | ADS-R00040A |
| TNF-α ELISA试剂盒 | Feiya Biotechnology | FY3056-A | |
| IL-6 ELISA试剂盒 | Feiya Biotechnology | FY3066-A | |
| 5-羟色胺ELISA试剂盒 | Feiya Biotechnology | FY3318-A | |
| 多巴胺ELISA试剂盒 | Feiya Biotechnology | FY3231-A | |
| 细胞活力检测 | CCK-8检测试剂盒 | Elabscience | E-CK-A362 |
| 凋亡检测 | 一步法TUNEL凋亡检测试剂盒 | Elabscience | E-CK-A322 |
| 免疫荧光 | Anti-MAP2抗体 | Proteintech | 67015-1-Ig |
| Anti-Iba1抗体 | Fujifilm-Wako | 019-19741 | |
| Anti-CD206抗体 | Proteintech | 60143-1-Ig | |
| Anti-CD16抗体 | Proteintech | 16559-1-AP | |
| Anti-TLR4抗体 | Aifang Biological | AF11010 | |
| Anti-NF-κB抗体 | BOSTER | A00284-1 | |
| Anti-Bcl-2抗体 | Proteintech | 68103-1-Ig | |
| Anti-Bax抗体 | Proteintech | 50599-2-Ig | |
| CoraLite 594标记二抗 | Proteintech | RGAR004 | |
| FITC标记二抗 | Proteintech | SA00003-1 | |
| 显微观察 | 倒置显微镜 | Mshot | MSX2 |
| 激光共聚焦显微镜 | Zeiss | LSM800 | |
| 吸收光检测 | 酶标仪 | Thermo Fisher | MK-3 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 内皮损伤模型 | LPS浓度、处理时间、RAECs代数 阅读提示:见2.3节及图2、图3 |
| 条件培养基制备 | LPS浓度、处理时间、离心和过滤条件 阅读提示:见2.4节 |
| 原代神经元和小胶质细胞培养 | 大鼠品系、年龄、消化酶浓度和时间、细胞密度、培养时间 阅读提示:见2.5和2.6节 |
| 三培养模型 | 共培养时间、CMHE和CORT浓度、处理时间、培养基比例 阅读提示:见2.7和2.8节 |
| 药物干预 | TAK-242和氟西汀浓度、处理时间 阅读提示:见2.8节 |
| 检测分析 | 检测试剂盒、抗体稀释比例、荧光探针浓度、检测仪器设置 阅读提示:见2.9-2.16节及图例 |