研究高血压相关抑郁症的血管内皮细胞、神经元和小胶质细胞三培养模型

A vascular endothelial cell, neuron, and microglia tri-culture model to study hypertension-related depression.

作者信息Hongxia Zhao, Lingge Huang, Jian Liu, Min Feng, Yeqian Liu, Hong Li, Shan Gong, Chunming Chen, Shuiqing Zeng, Weiqiong Ren
PMID40230380
发布时间2025-03-31
DOI10.3389/fncel.2025.1553309

实验完整度

包含体外细胞模型建立与优化、功能验证(CCK-8、活死染色、ELISA、荧光探针)及机制验证(TLR4/NF-κB通路、小胶质细胞极化),并设置药物干预和阳性对照。

主要模型

大鼠主动脉内皮细胞(RAECs) 原代海马神经元 原代皮层小胶质细胞 三细胞共培养模型

重点核对

LPS诱导RAECs内皮损伤的最佳条件:1 μg/mL LPS处理24小时 高血压环境条件培养基(CMHE)的制备:1 μg/mL LPS处理RAECs 24小时,收集上清液 三培养模型诱导条件:10% CMHE联合200 μM皮质酮处理24小时 TLR4抑制剂TAK-242(10 μM)作为干预,氟西汀(10 nM)作为阳性对照 检测指标包括神经元活力、凋亡、ROS、炎症因子、单胺类神经递质及小胶质细胞表型

摘要

高血压相关抑郁症(HD)是一种复杂的精神障碍,对患者的生活质量产生显著的负面影响。以往研究表明,血管内皮和海马的损伤是HD大鼠的主要病理特征。在高血压条件下,外周血管中的炎性细胞因子可通过受损的血脑屏障、外周免疫细胞和神经通路穿透进入中枢神经系统,诱发中枢神经系统炎症,损伤大脑并触发HD。因此,血管内皮细胞、神经元和胶质细胞之间的相互作用对于理解HD至关重要。然而,体内动物模型常常受到内在系统复杂性、个体差异大和严格伦理规定的限制。需要一个易于操作且可靠的模型来研究HD中血管内皮细胞、神经元和胶质细胞之间通讯的机制。因此,我们旨在建立一个由大鼠主动脉内皮细胞(RAECs)、神经元和小胶质细胞组成的复合三培养模型来研究HD。首先,用脂多糖刺激RAECs以模拟高血压条件下的内皮损伤。使用荧光探针和酶联免疫吸附测定评估血管内皮功能和炎症水平。经1 μg/ml LPS处理24小时的RAECs显示一氧化氮水平降低,内皮素-1和炎性介质水平升高。这些发现与自发性高血压大鼠中观察到的内皮功能障碍和炎症反应一致,表明脂多糖诱导的RAECs模型有效模拟了高血压相关内皮损伤的关键病理特征。随后,将脂多糖诱导的RAECs的上清液与200 μM皮质酮结合,并转移到神经元-小胶质细胞共培养中,以模拟HD条件下的海马神经元损伤。为了评估细胞特征,通过CCK-8和活死细胞测定法测量神经元活力。尼氏染色用于评估神经元尼氏体,而培养上清液中炎性因子和单胺类神经递质的水平通过酶联免疫吸附测定进行评估。神经元中的活性氧通过荧光探针可视化,使用TUNEL测定法检测凋亡,免疫荧光用于评估小胶质细胞表型以及TLR4和NF-κB的水平。结果发现,三培养模型中的神经元活力降低,凋亡水平升高,尼氏体减少,炎症增加,单胺类神经递质水平降低。此外,M1型小胶质细胞的数量增加,TLR4和NF-κB蛋白水平升高。这些发现与HD大鼠模型中观察到的海马神经元损伤、单胺类神经递质异常、小胶质细胞极化和海马炎症反应相似。总之,我们的研究结果表明,三培养模型可以有效模拟HD的病理特征,特别是在血管内皮损伤、神经炎症、单胺类神经递质紊乱方面。因此,三培养模型将为HD发病机制和治疗的进一步研究提供可靠且宝贵的实验工具。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
能否建立一种体外三培养模型以模拟高血压相关抑郁症的病理特征,并用于研究其发病机制?
核心机制
通过LPS诱导的内皮损伤释放炎性因子,联合皮质酮激活TLR4/NF-κB信号通路,促进小胶质细胞M1型极化,进而导致神经元损伤和单胺类神经递质紊乱。
主要证据
在模型组中观察到神经元活力降低、凋亡增加、ROS升高、炎症因子(IL-1β、TNF-α)升高、单胺类神经递质(NE、DA、5-HT)降低,小胶质细胞CD16/CD206比值升高(M1极化),TLR4和NF-κB表达上调;TAK-242处理可逆转这些变化。
研究意义
该三培养模型可有效模拟高血压相关抑郁症的病理特征,为研究HD的发病机制和治疗提供可靠的体外实验工具。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立LPS诱导的内皮损伤模型

模拟高血压条件下的血管内皮损伤和炎症反应,并确定最佳诱导条件。

用不同浓度(0-10 μg/mL)的LPS处理RAECs不同时间(6-48小时),评估细胞形态、活力、NO水平和炎症因子分泌。

2

制备高血压环境条件培养基(CMHE)和空白培养基(BM)

收集LPS诱导的RAECs分泌的炎性因子,形成模拟高血压环境的条件培养基。

RAECs用1 μg/mL LPS处理24小时,收集上清液,离心过滤后作为CMHE;对照组用正常培养基培养收集BM。

3

原代皮层小胶质细胞和原代海马神经元的制备

为三培养模型提供神经元和小胶质细胞。

从新生大鼠皮层分离小胶质细胞,从E16-18胚胎大鼠分离海马神经元,分别进行原代培养。

4

构建神经元-小胶质细胞共培养体系

模拟神经元与小胶质细胞间的相互作用。

采用改良的Banker共培养方法,将神经元盖玻片倒置于小胶质细胞上方,通过石蜡点分隔,共享培养基进行共培养。

5

建立三培养模型并模拟HD环境

模拟高血压相关抑郁症的复杂病理环境。

向神经元-小胶质细胞共培养体系中加入10% CMHE和200 μM皮质酮,处理24小时,形成HD模型。

6

模型损伤特征评估

验证三培养模型是否重复HD的病理特征,包括神经元损伤、炎症和神经递质异常。

检测神经元活力(CCK-8)、死亡(Calcein-AM/PI)、凋亡(TUNEL)、ROS(DCFH-DA)、尼氏体(Nissl染色)、炎症因子(ELISA)、单胺类神经递质(ELISA)、小胶质细胞表型及TLR4/NF-κB(免疫荧光)。

7

药物干预验证机制

验证TLR4/NF-κB信号通路在模型损伤中的作用。

在模型基础上加入TLR4抑制剂TAK-242(10 μM)或阳性对照氟西汀(10 nM),评估其对神经元损伤、炎症和神经递质的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM/F12培养基Gibco8120254
胎牛血清Gibco10270-106
青霉素-链霉素SolarbioP1400
Neurobasal培养基Gibco21103-049
B27添加剂Gibco17504-044
Glutamax添加剂Gibco35050061
胰蛋白酶Gibco25200056
多聚赖氨酸SolarbioP8130
胶原酶ISolarbioC8140
脂多糖Sigma-AldrichL2880
皮质酮MedChemExpressHY-B1618
氟西汀AladdinF189157
TAK-242(TLR4抑制剂)MedChemExpressHY-11109
1,2-二氨基蒽醌MedChemExpressHY-W013435
Hoechst 33342染色剂BeyotimeC1022
DCFH-DA荧光探针MedChemExpressHY-D0940
Calcein-AM/PI双染试剂SolarbioCA1630
尼氏染色液BeyotimeC0117
DAPI染色液SolarbioS2110
IL-1β ELISA试剂盒AIDISHENGADS-R00040A
TNF-α ELISA试剂盒Feiya BiotechnologyFY3056-A
IL-6 ELISA试剂盒Feiya BiotechnologyFY3066-A
5-羟色胺ELISA试剂盒Feiya BiotechnologyFY3318-A
多巴胺ELISA试剂盒Feiya BiotechnologyFY3231-A
CCK-8检测试剂盒ElabscienceE-CK-A362
一步法TUNEL凋亡检测试剂盒ElabscienceE-CK-A322
Anti-MAP2抗体Proteintech67015-1-Ig
Anti-Iba1抗体Fujifilm-Wako019-19741
Anti-CD206抗体Proteintech60143-1-Ig
Anti-CD16抗体Proteintech16559-1-AP
Anti-TLR4抗体Aifang BiologicalAF11010
Anti-NF-κB抗体BOSTERA00284-1
Anti-Bcl-2抗体Proteintech68103-1-Ig
Anti-Bax抗体Proteintech50599-2-Ig
CoraLite 594标记二抗ProteintechRGAR004
FITC标记二抗ProteintechSA00003-1
倒置显微镜MshotMSX2
激光共聚焦显微镜ZeissLSM800
酶标仪Thermo FisherMK-3

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
内皮损伤模型
LPS浓度、处理时间、RAECs代数
阅读提示:见2.3节及图2、图3
条件培养基制备
LPS浓度、处理时间、离心和过滤条件
阅读提示:见2.4节
原代神经元和小胶质细胞培养
大鼠品系、年龄、消化酶浓度和时间、细胞密度、培养时间
阅读提示:见2.5和2.6节
三培养模型
共培养时间、CMHE和CORT浓度、处理时间、培养基比例
阅读提示:见2.7和2.8节
药物干预
TAK-242和氟西汀浓度、处理时间
阅读提示:见2.8节
检测分析
检测试剂盒、抗体稀释比例、荧光探针浓度、检测仪器设置
阅读提示:见2.9-2.16节及图例