富含miR-183-5p的细胞外囊泡通过SIK1/PI3K/AKT和CCL20/CCR6信号通路促进肝细胞癌与内皮细胞之间的相互作用

miR-183-5p-enriched extracellular vesicles promote the crosstalk between hepatocellular carcinoma cell and endothelial cell via SIK1/PI3K/AKT and CCL20/CCR6 signaling pathways.

作者信息Ye Han, Wu-Shuang Gong, Xue-Sha Xing, Hang Zhou, Xiao-Lei Wang, Yi Xu, Xian-Li Zhou, Wei-Li Xue
PMID40115013
发布时间2025-03-06
DOI10.3389/fonc.2025.1532239

实验完整度

包含临床样本(组织、血浆EVs)、体外细胞功能实验、双荧光素酶验证、体内动物模型及RNA-seq等至少两个独立证据层级,并进行功能与机制验证。

主要模型

HCC细胞系(MHCC97H、Huh7、Huh1、Hep3B) 人脐静脉内皮细胞(HUVECs) 裸鼠皮下移植瘤模型 裸鼠肺转移模型

重点核对

miR-183-5p在HCC组织和血浆EVs中的表达水平 HCC细胞来源EVs对HUVECs增殖、迁移、血管生成和通透性的影响 siK1作为miR-183-5p直接靶基因的验证 PI3K/AKT信号通路激活与SIK1表达的关系 CCL20/CCR6轴在HCC进展和转移中的作用

摘要

背景:原发性肝癌的癌症相关死亡率在全球排名第三,其中肝细胞癌(HCC)占主导地位,对患者健康构成严重威胁。了解HCC的发病机制和靶分子对于早期诊断和预后至关重要。细胞外囊泡(EVs)及其携带的miRNA影响肿瘤进展。本研究旨在探讨HCC细胞来源的EVs中miR-183-5p对血管生成、进展和转移的作用,并为诊断和治疗提供证据。方法:采用qRT-PCR评估HCC组织和血浆EV样本中miR-183-5p的表达。使用对比增强超声和癌症基因组图谱评估其与血管生成和预后的相关性。在体外,使用细胞计数试剂盒-8(CCK-8)、集落形成、Transwell、管形成和通透性实验检测HCC细胞来源的EVs对人脐静脉内皮细胞(HUVECs)的影响。在裸鼠皮下肿瘤和肺转移模型中验证其体内作用。RNA测序和数据库预测下游基因和通路,双荧光素酶和蛋白质印迹实验验证结合和激活。将处理过的HUVECs的条件培养基用于HCC细胞,并检测趋化因子水平。通过敲低CCR6在体外和体内研究CCL20/CCR6轴的作用。结果:本研究揭示了HCC患者组织和血浆EVs中miR-183-5p的异常上调,及其与不良预后的关联。在体内实验中,通过皮下肿瘤形成模型和裸鼠肺转移模型验证了HCC细胞来源的EVs中miR-183-5p对进展、转移和血管生成的促进作用。我们证明,HCC细胞来源的EVs中的miR-183-5p通过下调SIK1表达并激活PI3K/AKT信号通路,在体外诱导HUVECs增殖、迁移、血管生成和通透性。此外,受刺激的HUVECs可分泌趋化因子CCL20,并通过CCL20/CCR6信号通路在体外和体内诱导HCC进展和转移。结论:研究结果表明,HCC细胞EVs传递的miR-183-5p通过调节SIK1/PI3K/AKT和CCL20/CCR6信号通路,在介导HUVECs与HCC细胞之间的通讯中起关键作用,EVs-miR-183-5p可能成为HCC患者的潜在治疗靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
HCC细胞来源的细胞外囊泡(EVs)中的miR-183-5p在介导肿瘤细胞与内皮细胞相互作用中发挥什么作用,其机制如何?
核心机制
miR-183-5p下调SIK1表达并激活PI3K/AKT信号通路,促进HUVECs血管生成,同时刺激HUVECs分泌CCL20,通过CCL20/CCR6轴反馈促进HCC进展和转移。
主要证据
临床样本分析(组织、血浆EVs)显示miR-183-5p高表达与预后不良相关;体外实验证明miR-183-5p促进HUVECs功能;双荧光素酶验证SIK1为直接靶标;体内模型证实对肿瘤生长和转移的促进作用。
研究意义
研究提示EVs-miR-183-5p可能作为HCC患者的潜在治疗靶点,并为液体活检和HCC诊断及预后评估提供新方向。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

临床样本分析

检测HCC患者组织和血浆EVs中miR-183-5p的表达及其与临床病理参数和预后的相关性。

收集HCC患者组织和血浆样本,通过qRT-PCR检测miR-183-5p表达,结合CEUS和TCGA数据进行分析。

2

EVs提取与表征

确认HCC细胞来源的EVs的特征及其携带的miR-183-5p。

通过超速离心提取细胞培养上清中的EVs,使用TEM和NTA表征,并通过Western blot检测标志物。

3

体外功能实验

检测HCC细胞来源的EVs及其携带的miR-183-5p对HUVECs功能的影响。

将HCC细胞来源的EVs与HUVECs共培养,检测增殖、迁移、血管生成和通透性。

4

机制验证

验证miR-183-5p直接靶向SIK1并激活PI3K/AKT信号通路。

通过RNA-seq、双荧光素酶报告基因、Western blot等方法验证。

5

反馈作用验证

验证经HCC细胞EVs刺激的HUVECs通过分泌趋化因子反馈促进HCC进展。

收集处理后的HUVECs条件培养基(CM)培养HCC细胞,检测增殖、迁移和侵袭,并评估CCL20分泌。

6

体内验证

在动物模型中验证miR-183-5p及其介导的HUVECs反馈作用对HCC进展和转移的影响。

构建皮下肿瘤和肺转移模型,分别注射Hep3B细胞和EVs,或CM处理后的Hep3B细胞,评估肿瘤生长和转移。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
16G Tru-Cut活检针Bard--
Aplio i900彩色多普勒超声诊断设备Canon Medical Systems--
i8CX1凸阵探头----
i18LX5线阵探头----
声诺维Bracco--
SonoLiverTomTec Imaging Systems--
Sepharose CL-2BSigma-Aldrich--
0.22 μm注射器过滤器Millipore--
贝克曼库尔特Optima XPN-100超速离心机Beckman Coulter--
SW41Ti转子----
SW45Ti转子----
Trizol试剂Invitrogen15596026
Molpure细胞/组织miRNA试剂盒VazymeRC201
Transcriptor第一链cDNA合成试剂盒Roche04897030001
FastStart Universal SYBR Green Master (ROX)Roche04913914001
Zeta View PMX 110Particle Metrix--
PKH26Sigma-Aldrich--
细胞计数试剂盒-8 (CCK-8)BeyotimeC0038
结晶紫染色液BeyotimeC0121
基质胶Corning356234
结晶紫染色液BeyotimeC0078
活细胞示踪剂Yeasen40721ES50
基质胶Corning356234
钙黄绿素-AMSolarbioCA1630
RIPA裂解液BeyotimeP0013B
增强型BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0010
SDS-PAGE凝胶EpizymePG112, PG113
PVDF膜MerkmillibeauIPFL00010
增强化学发光试剂盒MeilunbioMA0186
Bio-Rad ChemiDoc MP系统Bio-Rad--
双荧光素酶检测试剂盒PromegaE1910
Bio-Plex Pro 40-Plex人趋化因子检测panelBio-Rad171AK99MR2
人CCL20 ELISA试剂盒Coibo Biotechnology Co., ChinaCB12912-Hu
枸橼酸钠抗原修复液BeyotimeP0081
内源性过氧化物酶阻断剂H2O2ZSGB-BIOPV6000
牛血清白蛋白BeyotimeST023
二抗ZSGB-BIOPV6000
DAB显色液BeyotimeP0202
苏木素BeyotimeC0107
HE染色试剂盒BeyotimeC0105S
Trizol试剂Invitrogen15596206
Agilent 2100生物分析仪Agilent Technologies--
VAHTS Universal V6 RNA-seq文库制备试剂盒Vazyme--
Illumina Novaseq 6000平台Illumina--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
临床样本分析
HCC组织及血浆样本的收集标准、患者数量、年龄范围、病理分级;qRT-PCR内参选择(GAPDH、U6、cel-miR-39-3p);血浆EVs提取方法(SEC)及储存条件
阅读提示:Methods中的Tissue samples、Plasma sample、RNA extraction and quantitative real-time polymerase chain reaction
EVs提取与表征
细胞培养条件及EVs-free FBS制备;超速离心参数(时间和g值);EVs鉴定标志物(CD9、CD81、Alix)及阴性标志物(Calnexin、GM130)
阅读提示:Methods中的Extracellular vesicles extraction、EVs characterization, identification and uptake assay
体外功能实验
HUVECs与EVs共培养的浓度和时间;增殖、迁移、管形成、通透性实验的具体条件;miR-183-5p mimics/inhibitor转染效率确认
阅读提示:Methods中的Cell proliferation assays、Cell migration and invasion assays、Endothelial cell permeability assay、Tube formation assay
机制验证
RNA-seq样本处理及分析标准;双荧光素酶报告基因实验中的载体构建(WT/MUT)及转染条件;Western blot检测的抗体信息(SIK1、p-PI3K、PI3K、p-AKT、AKT)
阅读提示:Methods中的Luciferase reporter assay、Western blotting assay and antibodies、Figure legends of Figure 5
体内动物模型
小鼠品系、年龄、性别、SPF级;细胞注射数量、途径(皮下/尾静脉);EVs注射剂量和频率;肿瘤体积测量和计算;组别设置(对照组、miR-183-5p mimics、敲低等)
阅读提示:Methods中的Animals、Cell transduction、Figure legends of Figures 4 and 8