建立高脂饮食诱导肥胖模型并给予ISL处理
评估ISL对高脂饮食诱导肥胖的影响
六周龄雄性C57BL/6小鼠随机分为两组,全程给予高脂饮食,其中一组每日灌胃ISL(50 mg/kg体重),另一组给予生理盐水作为对照,持续8周。期间记录体重变化,实验结束后取肩胛间BAT称重。
Isoliquiritigenin Ameliorates High-Fat Diet-Induced Obesity in Mice by Activating Brown Adipose Tissue.
包含体内动物实验(HFD小鼠模型)和体外细胞实验(C3H10-T1/2细胞)两个层级,并进行了功能验证(体重、基因表达)和机制验证(RNA-seq通路富集)。但缺乏对核心机制的直接干预验证,如NNAT/SGK1的敲低或过表达。
C57BL/6小鼠高脂饮食诱导肥胖模型 C3H10-T1/2细胞系(棕色脂肪细胞分化模型)
ISL给药剂量:50 mg/kg体重/天,灌胃给药,持续8周 C3H10-T1/2细胞分化培养基成分及ISL处理浓度20 μM RNA-seq差异表达基因筛选阈值(p < 0.05,fold change > 1.5) 关键基因表达验证:UCP1、PPARGC1a、NNAT、SGK1的mRNA和蛋白水平 动物伦理审批号:IACUC-20230227-01
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
评估ISL对高脂饮食诱导肥胖的影响
六周龄雄性C57BL/6小鼠随机分为两组,全程给予高脂饮食,其中一组每日灌胃ISL(50 mg/kg体重),另一组给予生理盐水作为对照,持续8周。期间记录体重变化,实验结束后取肩胛间BAT称重。
观察ISL对BAT形态和脂滴形态的影响
对BAT组织进行H&E染色,观察脂肪细胞大小和脂滴形态。
探究ISL对脂肪生成基因表达的影响
采用qRT-PCR和Western blot检测BAT中脂肪生成相关基因(ADIPOQ、PPARG、C/EBPa等)的mRNA和蛋白水平。
评估ISL对BAT产热和线粒体生物发生的影响
通过qRT-PCR和Western blot检测BAT中产热基因(UCP1、UCP2、PPARGC1a)的表达,并通过免疫组化检测UCP1蛋白分布。
验证ISL在细胞水平上对产热基因表达的促进作用
使用C3H10-T1/2细胞系,在分化培养基中加入ISL,通过CCK-8检测细胞活力,油红O染色观察脂滴,qRT-PCR和Western blot检测产热基因表达。
阐明ISL调节BAT功能的潜在分子机制
对ISL处理和对照小鼠的BAT进行RNA-seq,分析差异表达基因,并进行GO、KEGG、Reactome通路富集分析以及GSEA分析。
验证RNA-seq差异表达基因的可靠性
选取6个差异表达基因(NNAT, PBLD1, RARRES2, SGK1, CCDC80, IMPHD1)进行qRT-PCR验证。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 动物实验 | 异甘草素 | Macklin | I811911 |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | Gibco | 8123199 |
| 胎牛血清 | Gibco | A3161002C | |
| 细胞分化 | IBMX | Sigma | -- |
| 胰岛素 | Beyotime | -- | |
| 3-异丁基-1-甲基黄嘌呤 | Sigma | -- | |
| 三碘甲状腺原氨酸 | Sigma | -- | |
| 罗格列酮 | Sigma | -- | |
| 地塞米松 | Sigma | -- | |
| 细胞培养 | 胎牛血清 | Gemini | -- |
| 油红O溶液 | Sigma | -- | |
| 细胞活力检测 | CCK-8细胞计数试剂盒 | Beyotime | -- |
| 组织固定 | 专用脂肪固定液 | Servicebio | G1119 |
| 免疫组织化学 | UCP1抗体 | Proteintech | -- |
| RNA提取 | TRIzol试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 逆转录 | All-In-One 5X RT预混液 | Abm | G592 |
| qPCR | BlasTaq 2X qPCR预混液 | Abm | G891 |
| 实时荧光定量PCR仪 | Bio-Rad | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | CWBIO | CW2333 |
| 蛋白酶抑制剂 | CWBIO | CW2200 | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | -- | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| C/EBPa抗体 | Proteintech | 18311-1-AP | |
| FASN抗体 | Proteintech | 10624-2-AP | |
| GLUT4抗体 | Santa Cruz Biotechnology | sc-53566 | |
| PPARG抗体 | Proteintech | 16643-1-AP | |
| FABP4抗体 | Proteintech | 12802-1-AP | |
| ATGL抗体 | Proteintech | 55190-1-AP | |
| PPARGC1a抗体 | Proteintech | 66369-1-Ig | |
| CKB抗体 | Proteintech | 15137-1-AP | |
| UCP1抗体 | Proteintech | 23673-1-AP | |
| GAPDH抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| HRP标记的山羊抗小鼠二抗 | Beyotime | A0216 | |
| HRP标记的山羊抗兔二抗 | Beyotime | A0208 | |
| Immobilon Western化学发光HRP底物 | Millipore | WBKLS0500 | |
| 组织固定 | 蔡司Axio Observer 3显微镜 | Zeiss | -- |
| RNA-seq | Illumina测序平台 | Illumina | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物实验 | 小鼠品系、性别、年龄;ISL给药剂量(50 mg/kg体重/天)及给药方式(灌胃);处理周期(8周);对照组(生理盐水);饲养环境(12小时光暗循环、50%相对湿度);伦理审批号(IACUC-20230227-01) 阅读提示:Methods 4.1 Animal Experiment |
| 细胞培养与分化 | C3H10-T1/2细胞来源;培养基成分(DMEM/F12、10% FBS);分化诱导培养基成分(IBMX、胰岛素、三碘甲状腺原氨酸、罗格列酮、地塞米松)及处理时间;ISL处理浓度(20 μM) 阅读提示:Methods 4.2 C3H10-T1/2 Cells Differentiation and Oil Red O Staining |
| 细胞活力检测 | 细胞接种密度(未明确说明);CCK-8处理时间(3小时) 阅读提示:Methods 4.3 Cell Viability Assay |
| 组织学分析 | BAT固定液(专用脂肪固定液);切片厚度(5 μm);染色方法(H&E) 阅读提示:Methods 4.4 Hematoxylin–Eosin (H&E) Staining |
| 基因表达检测 | RNA提取方法(TRIzol);逆转录试剂盒(All-In-One 5X RT MasterMix);qPCR试剂(BlasTaq 2X qPCR MasterMix);内参基因(GAPDH);相对定量方法(2-ΔΔCT) 阅读提示:Methods 4.6 RNA Extraction and Quantitative Real-Time PCR |
| 蛋白表达检测 | 蛋白提取(RIPA缓冲液);蛋白定量(BCA);上样量(25 μg);SDS-PAGE浓度(12%);转膜(PVDF);封闭(5%脱脂牛奶,1.5小时);一抗及稀释比例;二抗及稀释比例;检测底物(Immobilon Western Chemiluminescent HRP substrate) 阅读提示:Methods 4.7 Western Blotting Analysis |
| 转录组分析 | RNA-seq平台(Illumina);差异表达阈值(p<0.05, fold change>1.5);GSEA分析通路(TCA循环、氧化磷酸化、脂肪酸降解) 阅读提示:Methods 4.8 RNA-Seq and Data Analysis |