建立骨癌痛小鼠模型并评估疼痛行为
模拟骨癌痛状态并验证模型的疼痛表型。
通过将LLC细胞注入C57BL/6小鼠股骨骨髓腔建立BCP模型,评估机械性异常性疼痛(von Frey)、热痛觉过敏、自发性抬腿及冷异常性疼痛,并验证吗啡镇痛作用。
ZC3H15 suppression ameliorates bone cancer pain through inhibiting neuronal oxidative stress and microglial inflammation.
包含动物模型(小鼠BCP模型)、细胞实验(原代神经元和小胶质细胞)、分子机制验证(泛素化、Co-IP)及功能回复实验(NRF2敲低),证据层级至少两层且含机制验证。
小鼠骨癌痛(BCP)模型(Lewis肺癌细胞股骨内注射) 原代小鼠脊髓神经元(MSCNCs) 小胶质细胞系BV2
AAV-shZC3H15椎管内注射剂量、时间及效率验证(RT-qPCR、Western blot) 骨癌痛模型建立:LLC细胞浓度及注射体积(1.0×10^5细胞/5μl PBS) H2O2处理浓度及时间(200 μM,12小时) LPS处理浓度(100 ng/ml) siRNA转染效率验证(si-ZC3H15-2#和si-Nrf2-1#)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
模拟骨癌痛状态并验证模型的疼痛表型。
通过将LLC细胞注入C57BL/6小鼠股骨骨髓腔建立BCP模型,评估机械性异常性疼痛(von Frey)、热痛觉过敏、自发性抬腿及冷异常性疼痛,并验证吗啡镇痛作用。
确定ZC3H15是否在BCP过程中表达异常及其细胞类型。
使用RT-qPCR、Western blot检测脊髓背角ZC3H15 mRNA和蛋白水平,免疫荧光共染标记NeuN(神经元)、CD11b(小胶质细胞)和GFAP(星形胶质细胞)。
评估体内沉默ZC3H15是否能改善BCP小鼠的疼痛行为及运动功能。
通过椎管内注射AAV-shZC3H15或对照AAV,两周后建立BCP模型,评估疼痛行为、运动能力(开放场)及肿瘤负荷和骨破坏。
验证ZC3H15敲低是否减轻脊髓组织的氧化应激。
检测ROS产生(DHE染色)、MDA水平、SOD和CAT活性、4-HNE表达,以及KEAP1/NRF2通路相关基因和蛋白表达。
在体外神经元模型中确认ZC3H15敲低对氧化应激的影响。
用si-ZC3H15转染MSCNCs,然后H2O2处理,检测LDH释放、SOD活性、MDA水平、ROS(DCF-DA)、以及KEAP1/NRF2通路分子表达。
探究ZC3H15如何调控KEAP1/NRF2信号通路。
在MSCNCs中过表达或敲低ZC3H15,用H2O2处理,检测KEAP1蛋白半衰期(CHX实验)、泛素化水平(Co-IP)以及NRF2降解。
确定ZC3H15敲低对神经元氧化应激的改善是否依赖于NRF2。
在MSCNCs中共转染si-ZC3H15和si-Nrf2,H2O2处理后检测ROS水平、SOD活性、MDA水平、抗氧化基因表达及细胞毒性。
验证ZC3H15敲低能否抑制小胶质细胞活化和炎症反应。
在BCP小鼠脊髓组织检测CD11b表达、炎症因子(TNF-α, IL-1β, IL-6)mRNA水平及磷酸化IκBα/NF-κB蛋白;在BV2细胞中验证LPS刺激后的炎症反应和信号通路。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | #10099-141C | |
| 抗生素-抗真菌溶液 | Sigma-Aldrich | -- | |
| 脊髓神经元培养基 | Procell | CM-M178 | |
| 药物处理 | 脂多糖 | Sigma-Aldrich | 055:B5 |
| 过氧化氢 | NANJING CHEMICAL REAGENT CO., LTD. | -- | |
| MG132 | MedChemExpress | -- | |
| 转染 | Lipofectamine 3000转染试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| 动物实验 | 表达ZC3H15 shRNA的腺相关病毒 | Hanbio | -- |
| D-荧光素 | MedChemExpress | -- | |
| 免疫荧光 | ZC3H15抗体 | Biorbyt | #orb186618 |
| NeuN抗体 | Thermo Fisher Scientific | #MA5-33103 | |
| CD11b抗体 | Santa Cruz | #sc-53086 | |
| GFAP抗体 | Proteintech | #CL594-60190 | |
| 4-HNE抗体 | Thermo Fisher Scientific | #MA5-27570 | |
| 蛋白质印迹 | KEAP1抗体 | Proteintech | -- |
| NRF2抗体 | Proteintech | #CL488-16396 | |
| NQO1抗体 | Santa Cruz | #sc-393736 | |
| GAPDH抗体 | Santa Cruz | #sc-47724 | |
| HA抗体 | Beyotime | #AH158 | |
| FLAG抗体 | Santa Cruz | #sc-807 | |
| IκBα抗体 | Proteintech | #66418-1-PBS | |
| NF-κB抗体 | Proteintech | #10745-1-AP | |
| 磷酸化IκBα抗体 | Proteintech | #82349-1-PBS | |
| 磷酸化NF-κB抗体 | Proteintech | #82335-1-PBS | |
| 细胞增殖 | CCK-8试剂盒 | Beyotime | #C0038 |
| EdU细胞增殖试剂盒 | Beyotime | #C0081L | |
| Hoechst 33342染色液 | Beyotime | #C1026 | |
| 氧化应激测定 | 丙二醛测定试剂盒 | Beyotime | #S0131 |
| 超氧化物歧化酶活性试剂盒 | Beyotime | #S0101 | |
| 过氧化氢酶活性试剂盒 | Beyotime | #S0051 | |
| 二氢乙啶染料 | MedChemExpress | -- | |
| DCFH-DA荧光探针 | Beyotime | -- | |
| ELISA | 小鼠TNF-α ELISA试剂盒 | Beyotime | #PT512 |
| 小鼠IL-6 ELISA试剂盒 | Beyotime | #PI326 | |
| 仪器 | 酶标仪 | Thermo Scientific | -- |
| 共聚焦显微镜 | Zeiss | -- | |
| 显微CT系统 | Skyscan | -- | |
| IVIS Spectrum活体成像系统 | PerkinElmer | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系、性别、周龄、体重;LLC细胞注射浓度、体积、部位;sham组注射PBS体积;肿瘤生长时间点 阅读提示:Materials and methods: Animals and treatments |
| AAV注射 | AAV血清型、滴度、注射体积、注射部位、注射速度、预处理时间 阅读提示:Materials and methods: Animals and treatments |
| 行为学测试 | 测试时间点、测试设备(von Frey filaments、热辐射刺激器)、具体参数(如刺激强度、间隔时间)、观察者盲法 阅读提示:Materials and methods: Nociceptive behaviors tests |
| 细胞培养与处理 | 细胞系来源、培养条件、siRNA序列及转染浓度和时长、H2O2和LPS浓度及处理时间 阅读提示:Materials and methods: Cells and treatments |
| 氧化应激指标检测 | 检测试剂盒品牌、检测波长、组织或细胞样本制备方法 阅读提示:Materials and methods: Oxidative stress biochemical parameters analysis, ROS production determination |