水凝胶制备与表征
制备并表征自愈合水凝胶GOG,验证其力学性能和自愈合能力。
通过氧化葡聚糖(ODex)与明胶甲基丙烯酰(GelMA)反应形成席夫碱初级网络,再通过光聚合形成次级网络。通过FTIR、SEM、压缩测试、流变学等表征。
Harnessing bone marrow mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles and biomimetic peptide WKYMVm in self-healing hydrogel for enhanced bone repair in femoral defects.
研究包含体外细胞实验(BMSCs、UVECs、BMMs)、大鼠股骨缺损模型,以及分子机制验证(RT-qPCR、Western blot、免疫组化),具有多层级证据。
大鼠BMSCs 大鼠UVECs 大鼠BMMs 大鼠股骨缺损模型
BMSCs来源:大鼠骨髓,第3代 EVs分离:超速离心法 WK浓度:500 μg/mL EVs浓度:0.2 μg/μL 大鼠模型:7周龄雄性SD大鼠,股骨缺损4mm深
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
制备并表征自愈合水凝胶GOG,验证其力学性能和自愈合能力。
通过氧化葡聚糖(ODex)与明胶甲基丙烯酰(GelMA)反应形成席夫碱初级网络,再通过光聚合形成次级网络。通过FTIR、SEM、压缩测试、流变学等表征。
从BMSCs培养上清中分离细胞外囊泡(EVs)并鉴定其特性。
通过差速离心和超速离心提取EVs,使用NTA、TEM和Western blot检测EVs的粒径、形态和标志物。
将WK和EVs负载到GOG水凝胶中,评估其释放行为和EVs活性。
将WK和EVs预混到ODex溶液,与GelMA和LAP混合形成水凝胶,通过荧光标记检测释放曲线,并通过TEM、NTA、Western blot检测释放的EVs。
评估GOG@WK-EVs对BMSCs、UVECs、BMMs的细胞毒性。
使用Live/Dead染色、MTT实验、CCK-8实验和细胞骨架染色评估细胞活力和增殖。
评估GOG@WK-EVs对破骨细胞形成的影响。
BMMs在RANKL诱导下分化为破骨细胞,通过TRAP染色、免疫荧光和RT-qPCR检测破骨标志物。
评估GOG@WK-EVs对BMSCs成骨分化的影响。
BMSCs在成骨诱导培养基中培养,通过ALP染色、ARS染色、RT-qPCR和Western blot检测成骨标志物。
评估GOG@WK-EVs对UVECs血管形成能力的影响。
通过Transwell实验、划痕实验和管形成实验评估UVECs迁移和管形成能力,并通过RT-qPCR检测血管相关基因表达。
评估GOG@WK-EVs在体内的骨修复效果。
在SD大鼠股骨缺损处注射水凝胶,8周后通过X-ray、Micro-CT、H&E、Masson、TRAP和免疫组化评估骨再生。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | α-MEM培养基 | HyClone | SH30265.01 |
| 胎牛血清 | Thermo Fisher Scientific | 10091148 | |
| 青霉素-链霉素溶液 | Thermo Fisher Scientific | 10378016 | |
| 细胞鉴定 | CD44-FITC抗体 | Thermo Fisher Scientific | MA5-17522 |
| CD90-PE抗体 | Abcam | ab33694 | |
| CD45-FITC抗体 | Abcam | ab33916 | |
| CD34-PE抗体 | Abcam | ab223930 | |
| EVs分离 | 贝克曼超速离心机(Optima L-90K) | Beckman | -- |
| EVs表征 | NanoSight纳米粒子追踪分析仪 | Malvern Panalytical | -- |
| 磷钨酸溶液 | Sigma-Aldrich | 12501-23-4 | |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Thermo Fisher Scientific | 23227 | |
| EVs标记 | DiR染料 | Thermo Fisher Scientific | D12731 |
| 水凝胶制备 | 葡聚糖 | Sigma-Aldrich | 00271 |
| 明胶甲基丙烯酰 | Sigma-Aldrich | 900629 | |
| WKYMVm肽(WK) | Nanjing Peptide Valley Biotechnology Co., Ltd. | -- | |
| 水凝胶表征 | 傅里叶变换红外光谱仪(NICOLET 6700) | Thermo | -- |
| 扫描电子显微镜(FEI QUANTA200) | FEI | -- | |
| AR-G2流变仪 | TA Instruments | -- | |
| 细胞活力检测 | 活/死细胞活力检测试剂盒 | Invitrogen | L10119 |
| CyQUANT™ MTT细胞活力检测试剂盒 | Invitrogen | V13154 | |
| 细胞增殖检测 | CCK-8试剂盒 | Solarbio | CA1210 |
| 细胞骨架染色 | iFluor™ 488-鬼笔环肽 | Abcam | ab176753 |
| 细胞核染色 | DAPI染色液 | Abcam | ab285390 |
| 成骨分化 | β-甘油磷酸 | Sigma-Aldrich | 50020 |
| 地塞米松 | Sigma-Aldrich | D1756 | |
| 抗坏血酸-2-磷酸 | Sigma-Aldrich | 49752 | |
| GelMA溶解试剂盒 | Suzhou | EFL-GM-LS-001 | |
| ALP染色试剂盒 | Yeasen | 40749ES60 | |
| ALP活性检测试剂盒 | Sigma-Aldrich | MAK411 | |
| 茜素红S溶液 | PHYGENE | PH1354 | |
| 十六烷基吡啶氯化物 | Sigma-Aldrich | C0732 | |
| 破骨细胞诱导 | 核因子κB受体活化因子配体 | STEMCELL Technologies Inc. | 78214.2 |
| 破骨细胞鉴定 | TRAP活性检测试剂盒 | Sigma-Aldrich | CS0740 |
| 血管形成实验 | 基质胶 | BD Biosciences | -- |
| 免疫荧光 | 抗骨桥蛋白抗体 | Abcam | ab11503 |
| 抗RUNX2抗体 | CST | #12556 | |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | Invitrogen | 16096020 |
| 逆转录试剂盒 | Roche | 11483188001 | |
| LightCycler 480 SYBR Green I 预混液 | Roche | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Sigma-Aldrich | C0481 |
| 蛋白酶抑制剂 | Beyotime | ST019-5mg | |
| 磷酸酶抑制剂 | Beyotime | -- | |
| PVDF膜 | Millipore | IPVH00010 | |
| 抗HSP70抗体 | Abcam | ab2787 | |
| 抗CD9抗体 | Abcam | ab307085 | |
| 抗CD81抗体 | Abcam | ab109201 | |
| 抗Calnexin抗体 | Abcam | ab133615 | |
| 抗RUNX2抗体 | Abcam | ab76956 | |
| 抗ALPL抗体 | Abcam | ab65834 | |
| 抗GAPDH抗体 | Abcam | ab8245 | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab205718 | |
| HRP标记的山羊抗小鼠IgG | Abcam | ab6789 | |
| 化学发光底物 | Pierce | NCI4106 | |
| 动物实验 | Sprague-Dawley大鼠 | Beijing Vital River Laboratory Animal Technology Co., Ltd. | -- |
| 组织学染色 | Masson三色染色试剂盒 | Solarbio | G1340 |
| TRAP染色试剂盒 | Solarbio | G1492 | |
| 免疫组化 | 正常山羊血清封闭液 | Shanghai Haoran Biotechnology Co., Ltd. | C-0005 |
| 抗OPN抗体 | Abcam | ab63856 | |
| 抗PECAM1抗体 | Abcam | ab182981 | |
| 抗TRAP抗体 | Abcam | ab65854 | |
| 山羊抗兔IgG | Abcam | ab6721 | |
| 辣根过氧化物酶标记的链霉亲和素工作液 | Yimo Biotechnology Co., Ltd. | 0343-10000U | |
| DAB显色液 | Guangzhou Weijia Technology Co., Ltd. | ST033 | |
| 统计分析 | SPSS 21.0软件 | IBM | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| BMSCs培养 | 培养基:α-MEM;FBS浓度:15%;青霉素-链霉素:100 U/mL;培养条件:37℃、5% CO₂;传代:80%融合;使用第3代 阅读提示:见Materials and methods - Cell culture and identification |
| EVs分离 | 超速离心:110,000g、70min、4℃;过滤:0.22μm;EVs浓度:0.2 μg/μL 阅读提示:见Materials and methods - Isolation, purification, and identification of EVs derived from BMSCs |
| 水凝胶制备 | GelMA浓度:10% w/v;LAP浓度:0.25% w/v;ODex浓度:1% w/v;405 nm光照强度:25 mW/cm²,时间90s;WK浓度:500 μg/mL;EVs浓度:0.2 μg/μL 阅读提示:见Materials and methods - Preparation of GOG@WK-EVs hydrogels |
| 体外细胞实验 | 细胞密度:Live/Dead和MTT为2×10⁴ cells/well,CCK-8为1×10⁴ cells/well;培养时间:6、12、24、48h(活力),1、3、5、7天(增殖) 阅读提示:见Materials and methods - Cell counting kit-8 (CCK-8) method, live/dead cell staining for cell viability, and proliferation assessment |
| 成骨分化实验 | 成骨诱导成分:10 mM β-甘油磷酸、100 nM地塞米松、50 mg/mL抗坏血酸-2-磷酸;ALP染色:第7天;ARS染色:第21天 阅读提示:见Materials and methods - Induction and identification of osteoblast differentiation |
| 破骨细胞分化实验 | RANKL浓度:50 ng/mL;M-CSF浓度:30 ng/mL 阅读提示:见Materials and methods - Osteoclast induction and identification |
| 血管形成实验 | UVECs细胞代数:P2–P5;Matrigel:BD Biosciences;细胞密度:管形成2.5×10⁴ cells/well 阅读提示:见Materials and methods - Transwell, scratch assay, and tube formation experiments |
| 大鼠模型 | 大鼠品系:SD,雄性,7周龄,体重250-300g;每组6只;缺损:4mm深;注射体积:100μL;观察时间:8周 阅读提示:见Materials and methods - Establishment of rat tibial bone defect model and Surgical procedure for tibial bone defects |
| Micro-CT分析 | 扫描参数:280 μA、90 kV、550ms;定量指标:BV/TV、BMC、BMD 阅读提示:见Materials and methods - Observation of new bone tissue formation at rat tibial bone defects by micro-CT and X-ray imaging |