生物信息学筛选和高表达验证
筛选与Keap1结合的潜在miRNA,并验证其在乳腺癌中的表达。
在GEO数据集GSE154255中分析差异表达miRNA,结合Targetscan预测靶向Keap1的miRNA,取交集获得miR-141-3p;通过qRT-PCR在乳腺癌细胞系和正常细胞系中验证miR-141-3p表达。
miR-141-3p promotes paclitaxel resistance by attenuating ferroptosis via the Keap1-Nrf2 signaling pathway in breast cancer.
结合体外细胞实验、双荧光素酶报告实验、分子机制验证以及体内裸鼠移植瘤模型,涵盖多个独立证据层级。
MCF-7乳腺癌细胞系 MDA-MB-231乳腺癌细胞系 MCF-10A正常乳腺上皮细胞系 293T细胞系 裸鼠乳腺癌皮下移植瘤模型
乳腺癌细胞系MCF-7和MDA-MB-231中miR-141-3p过表达或抑制 Keap1 3'UTR双荧光素酶报告基因验证 paclitaxel处理浓度:MCF-7为20 nM,MDA-MB-231为30 nM ML385处理浓度2 μM 动物实验中紫杉醇剂量20 mg/kg,每2天腹腔注射,共7次
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
筛选与Keap1结合的潜在miRNA,并验证其在乳腺癌中的表达。
在GEO数据集GSE154255中分析差异表达miRNA,结合Targetscan预测靶向Keap1的miRNA,取交集获得miR-141-3p;通过qRT-PCR在乳腺癌细胞系和正常细胞系中验证miR-141-3p表达。
验证miR-141-3p与Keap1 3'UTR的特异性结合。
构建Keap1 3'UTR野生型和突变型质粒,与miR-141-3p mimics共转染293T细胞,检测荧光强度。
观察miR-141-3p对Keap1-Nrf2通路及紫杉醇耐药的影响。
在MCF-7和MDA-MB-231细胞中转染miR-141-3p mimics或inhibitors,检测细胞活力、相关蛋白表达及IC50。
评估抑制miR-141-3p对乳腺癌细胞铁死亡的影响。
检测SLC7A11和GPX4表达、GSH/GSSG比值、MDA含量、线粒体膜电位及RSL3的IC50。
验证miR-141-3p的作用是否依赖Nrf2。
使用ML385抑制Nrf2,观察miR-141-3p对铁死亡和紫杉醇耐药的影响。
在体内验证miR-141-3p对紫杉醇耐药的作用。
构建稳定转染miR-141-3p mimics或inhibitors的MDA-MB-231细胞系,皮下接种裸鼠,腹腔注射紫杉醇,比较肿瘤体积和重量。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素和链霉素 | -- | -- | |
| Opti-MEM培养基 | -- | -- | |
| 质粒转染 | Lip2000转染试剂 | Thermo | 11668019 |
| miR-141-3p模拟物 | GenePharma | -- | |
| miR-141-3p抑制剂 | GenePharma | -- | |
| miR-NC模拟物 | GenePharma | -- | |
| miR-NC抑制剂 | GenePharma | -- | |
| 慢病毒感染 | 病毒载体 | GenePharma | -- |
| 嘌呤霉素 | -- | -- | |
| 药物处理 | 紫杉醇 | -- | -- |
| ML385 | -- | -- | |
| RSL3 | -- | -- | |
| 双荧光素酶报告实验 | Keap1 3'UTR野生型质粒 | GenePharma | -- |
| Keap1 3'UTR突变型质粒 | GenePharma | -- | |
| 荧光素酶试剂盒 | -- | -- | |
| qRT-PCR | M5茎环miRNA cDNA合成试剂盒 | Mei5Bio | MF878-01 |
| 茎环miRNA荧光定量检测试剂盒 | Mei5Bio | MF879 | |
| PrimeScript™逆转录预混液 | Takara | RR036A | |
| 2X M5 UltraSYBR混合物(低ROX) | Mei5Bio | MF015 | |
| 引物 | Sangon Biotech | -- | |
| Western blot | 核浆蛋白提取试剂盒 | Beyotime | P0027 |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Kangwei | CW014 | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 兔抗Keap1多克隆抗体 | Proteintech | 10503-2-AP | |
| 兔抗Nrf2多克隆抗体 | Proteintech | 16396-1-AP | |
| 小鼠抗GPX4单克隆抗体 | Proteintech | 67763-1-Ig | |
| 兔抗SLC7A11多克隆抗体 | Proteintech | 36864-1-AP | |
| 小鼠抗GAPDH单克隆抗体 | Proteintech | 60004-1-Ig | |
| 抗α-微管蛋白单克隆抗体 | Proteintech | 66031-1-Ig | |
| 小鼠抗组蛋白H3单克隆抗体 | Proteintech | 68345-1-Ig | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗小鼠IgG(H+L) | Proteintech | SA00001-1 | |
| 辣根过氧化物酶标记的山羊抗兔IgG(H+L) | Proteintech | SA00001-2 | |
| CCK-8实验 | CCK-8试剂盒 | Biosharp | BS350B |
| MDA检测 | 丙二醛(MDA)含量检测试剂盒 | Solarbio | BC0025 |
| JC-1实验 | JC-1线粒体膜电位检测试剂盒 | Beyotime Biotechnology | C2006 |
| 动物实验 | 裸鼠 | Jinan Pengyue Laboratory Animal Breeding Co. | -- |
| 统计 | GraphPad Prism 9.0 | GraphPad | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系(MCF-10A、MCF-7、MDA-MB-231),培养基(DMEM+10%FBS+1%双抗),培养条件(37°C,5% CO2),传代比例(1:2,融合度85%-90%) 阅读提示:参见Materials and Methods中的Cell culture部分 |
| 质粒转染 | 转染试剂Lip2000,质粒和Lip2000的比例(MCF-7 1:1,MDA-MB-231 1:0.8),细胞密度(1×10^5/六孔板),转染时间(6h),检测时间点(qRT-PCR 24h,Western blot 48h) 阅读提示:参见Materials and Methods中的Plasmid transfection and viral infection部分 |
| 药物处理 | paclitaxel浓度(MCF-7 20 nM,MDA-MB-231 30 nM),ML385浓度(2 μM),处理时间(转染后24-36h) 阅读提示:参见Materials and Methods中的Plasmid transfection and viral infection部分 |
| 双荧光素酶报告实验 | 293T细胞,Keap1 3'UTR野生型和突变型质粒,miR-141-3p mimics共转染,检测时间(36-48h) 阅读提示:参见Materials and Methods中的Dual luciferase reporter assay部分 |
| qRT-PCR | RNA提取、逆转录试剂、PCR试剂、引物序列(表1)、反应条件按说明书 阅读提示:参见Materials and Methods中的qRT-PCR assay部分及Table 1 |
| Western blot | 蛋白提取方法(全蛋白和核蛋白提取),BCA定量,SDS-PAGE,PVDF膜,封闭液(5%脱脂牛奶),一抗和二抗孵育条件 阅读提示:参见Materials and Methods中的Western blot assay部分及Table 2 |
| CCK-8实验 | 细胞密度(每孔3000-5000个),CCK-8溶液添加量,孵育时间(37°C 1-4h),检测波长450 nm 阅读提示:参见Materials and Methods中的CCK-8 assay部分 |
| 体内实验 | 动物品系(4周龄裸鼠),分组(3组,每组7只),细胞接种量(5×10^6),紫杉醇剂量(20 mg/kg),给药方案(第10天起每2天一次,共7次),取材时间(第30天) 阅读提示:参见Materials and Methods中的In vivo tumorigenesis assay部分及Figure 6 legend |