构建Smad7过表达及MVs制备
获得负载Smad7的微囊泡(Smad7-MVs),并验证其特性。
通过pCMV5-Smad7转染大鼠BMSCs,超速离心法收集MVs;通过透射电镜、粒径分析、Western blot验证MVs特征和Smad7蛋白水平;通过荧光标记评估细胞摄取。
Microvesicles-delivering Smad7 have advantages over microvesicles in suppressing fibroblast differentiation in a model of Peyronie's disease.
包含体外细胞实验(LPS诱导RAW264.7、TGF-β1诱导成纤维细胞)和体内大鼠模型验证,并进行了功能验证(M1极化、成纤维分化)及机制验证(Smad通路)。
LPS诱导的RAW264.7巨噬细胞 TGF-β1诱导的大鼠阴茎白膜成纤维细胞 TGF-β1诱导的大鼠阴茎硬结症模型
MVs或Smad7-MVs的浓度:100 μg/mL(体外)和50 μg/只(体内) LPS浓度:100 ng/mL处理RAW264.7细胞24小时 TGF-β1浓度:10 ng/mL处理成纤维细胞24小时;体内注射0.5 μg 处理时间:体外共培养24小时;体内注射MVs在TGF-β1后一天,4周后取材
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
获得负载Smad7的微囊泡(Smad7-MVs),并验证其特性。
通过pCMV5-Smad7转染大鼠BMSCs,超速离心法收集MVs;通过透射电镜、粒径分析、Western blot验证MVs特征和Smad7蛋白水平;通过荧光标记评估细胞摄取。
评估MVs和Smad7-MVs对LPS诱导的RAW264.7细胞M1极化的影响。
RAW264.7细胞用LPS刺激,并用MVs或Smad7-MVs处理,通过ELISA检测IL-6、IL-1β、TNF-α,通过流式细胞术和免疫荧光检测CD86和iNOS表达。
评估MVs和Smad7-MVs对TGF-β1诱导的成纤维细胞分化的影响。
成纤维细胞用TGF-β1刺激,并用MVs或Smad7-MVs处理,通过Transwell检测迁移,通过Western blot和免疫荧光检测α-SMA和胶原III表达。
评估MVs和Smad7-MVs在体内对PD模型TA纤维化的影响。
大鼠TA注射TGF-β1诱导PD模型,次日注射MVs或Smad7-MVs,4周后取材,通过H&E、Masson染色观察病理,免疫组化检测Smad7、p-Smad3、iNOS、IL-1β、α-SMA和胶原III。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 大鼠骨髓间充质干细胞 | Cyagen | RASMX-01001 |
| BMSC完全培养基 | Cyagen | RASMX90011 | |
| RAW264.7细胞 | Procell | CL-0190 | |
| DMEM培养基 | -- | -- | |
| 大鼠阴茎白膜来源的成纤维细胞 | Procell | CP-R316 | |
| 成纤维细胞完全培养基 | Procell | CM-R316 | |
| 细胞转染 | PEI25k/pCMV5-Smad7载体 | Addgene | -- |
| 空PEI25k/pCMV5载体 | Addgene | -- | |
| 微囊泡表征 | 透射电子显微镜 | FEI Tecnai Spirit | TEM T12 |
| qNano粒子分析仪 | Malvern | ZEN3690 | |
| 生物相容性实验 | Alexa Fluor 647荧光染料 | Beyotime | P0180 |
| PKH67荧光染料 | Sigma | Mini67 | |
| DAPI染色液 | -- | -- | |
| 共聚焦显微镜 | Zeiss | LSM800 | |
| 细胞模型处理 | 脂多糖 | MedChemExpress | HY-D1056 |
| 重组TGF-β1 | MedChemExpress | HY-P7118 | |
| Western blotting | Smad7抗体 | Affinity Biosciences | AF5147 |
| α-SMA抗体 | Affinity Biosciences | AF1032 | |
| 胶原III抗体 | Affinity Biosciences | AF5457 | |
| β-actin抗体 | Affinity Biosciences | AF7018 | |
| 抗兔IgG(H+L)二抗 | Boster | BM3894 | |
| ELISA | IL-6 ELISA试剂盒 | Beyotime | PI326 |
| IL-1β ELISA试剂盒 | Beyotime | PI301 | |
| TNF-α ELISA试剂盒 | Beyotime | PT512 | |
| 流式细胞术 | FITC抗大鼠CD86抗体 | BioLegend | 200305 |
| APC抗iNOS抗体 | BioLegend | 696807 | |
| 流式细胞仪 | Beckman | CytoFlex | |
| 免疫荧光 | iNOS抗体 | BioLegend | 696807 |
| CD86抗体 | BioLegend | 200305 | |
| FITC标记二抗 | Abcam | ab6717 | |
| Cy3标记二抗 | Abcam | ab6939 | |
| 病理观察 | Masson染色试剂盒 | Solarbio | G1340 |
| 免疫组化 | Smad7抗体 | Affinity Biosciences | AF5147 |
| p-Smad3抗体 | Affinity Biosciences | AF8315 | |
| iNOS抗体 | Affinity Biosciences | AF0199 | |
| IL-1β抗体 | Affinity Biosciences | AF5103 | |
| 二抗 | -- | S0001 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 细胞培养 | 细胞系及培养条件:大鼠BMSCs、RAW264.7细胞、大鼠阴茎白膜成纤维细胞;培养条件37℃,5% CO2;细胞融合度约80%(2×10^4每孔) 阅读提示:Materials and methods: Cell culture |
| 微囊泡制备 | 超速离心步骤:2,500×g 5分钟,10,000×g 30分钟,100,000×g 120分钟两次;PBS重悬;存储于-20℃ 阅读提示:Materials and methods: Isolation of BMSCs-derived MVs by ultracentrifugation |
| 体外巨噬细胞处理 | LPS浓度100 ng/mL处理24小时;MVs或Smad7-MVs浓度100 μg/mL共培养24小时 阅读提示:Materials and methods: Cell model and treatments |
| 体外成纤维细胞处理 | TGF-β1浓度10 ng/mL处理24小时;MVs或Smad7-MVs浓度100 μg/mL共培养24小时 阅读提示:Materials and methods: Cell model and treatments |
| 动物模型构建和处理 | 大鼠品系:雄性Sprague-Dawley大鼠(11-12周龄,300-350g);TGF-β1注射量:50 μL(0.5 μg)注入右侧中段背内侧TA;次日注射MVs或Smad7-MVs 50 μL(50 μg);4周后取材 阅读提示:Materials and methods: Animal model and treatments |