FVIO的合成与表征
制备具有高磁热转换效率的FVIO纳米环,并验证其物理化学性质。
通过水热法和还原法制备α-Fe2O3纳米环,再经油酸修饰和还原得到Fe3O4,最后用多巴胺修饰形成亲水性FVIO。使用TEM、SEM、XRD、FT-IR、DLS和Zeta电位进行表征,并测量SAR值。
Intracellular magnetic hyperthermia reverses sorafenib resistance in hepatocellular carcinoma through its action on signaling pathways.
包含细胞实验(耐药细胞系构建、IC50测定、克隆形成、凋亡、ROS检测、Western blot)和动物实验(异种移植瘤模型、生存分析),并进行机制验证(PD98059和LPS干预)。
HuH-7/SR细胞(索拉非尼耐药人肝癌细胞系) HuH-7细胞(亲本人肝癌细胞系) BALB/c裸鼠皮下异种移植瘤模型
索拉非尼耐药细胞系构建:HuH-7/SR细胞经逐渐增加浓度(0.5-30 μM)处理9个月 MH处理条件:FVIO孵育24 h,AMF 300 Oe, 360 kHz,10 min 动物实验分组:6组,每组5只,FVIO瘤内注射3 mg Fe/cm3,AMF处理3次(第1、3、5天) 索拉非尼给药:小鼠每日口服30 mg/kg,PD98059静脉注射2 mg/kg隔日 p-ERK表达:MH处理后显著下调,NAC可逆转,外源热疗无此效应
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
制备具有高磁热转换效率的FVIO纳米环,并验证其物理化学性质。
通过水热法和还原法制备α-Fe2O3纳米环,再经油酸修饰和还原得到Fe3O4,最后用多巴胺修饰形成亲水性FVIO。使用TEM、SEM、XRD、FT-IR、DLS和Zeta电位进行表征,并测量SAR值。
建立对索拉非尼耐药的HCC细胞模型,用于研究耐药机制及逆转策略。
将HuH-7细胞暴露于递增浓度的索拉非尼(0.5-30 μM)持续9个月,获得耐药细胞系HuH-7/SR,并评估其IC50。
评估细胞内MH是否增强索拉非尼对耐药细胞的敏感性。
使用CCK-8测定不同处理组的细胞活力和索拉非尼IC50,比较FVIO、AMF、MH单独或联合索拉非尼的效果。
验证MH通过ROS抑制p-ERK,并区分于外源热疗的效应。
检测MH处理后的ROS产生和温度变化,分析MEK-ERK通路蛋白表达,并使用NAC(ROS清除剂)、PD98059(p-ERK抑制剂)和LPS(p-ERK激动剂)进行干预。
验证MH联合索拉非尼在动物模型中的抑瘤效果和生存获益。
建立索拉非尼耐药HCC异种移植瘤模型,进行分组治疗,监测肿瘤生长、体重和生存率,并通过免疫组化和H&E染色分析。
评估FVIO在正常细胞和动物体内的安全性。
对正常肝细胞AML-12进行CCK-8毒性检测,对SD大鼠静脉注射FVIO后检测血液生化指标和组织切片。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | -- |
| 胎牛血清 | Biological Industries | -- | |
| 青霉素-链霉素溶液 | Hyclone | -- | |
| 0.25% EDTA胰蛋白酶 | Gibco | -- | |
| 索拉非尼 | Selleck | S7397 | |
| PD98059 | Selleck | S1177 | |
| 细胞处理 | 脂多糖 | Beyotime | S1732 |
| N-乙酰半胱氨酸 | -- | -- | |
| FVIO合成 | 磷酸二氢铵 | Sigma-Aldrich | 216003 |
| 氯化钠 | Sigma-Aldrich | 793566 | |
| 1-十八烯 | Sigma-Aldrich | 74740 | |
| 油酸 | Sigma-Aldrich | 01008 | |
| 盐酸多巴胺 | Thermo Fisher Scientific | A11136.14 | |
| 蛋白提取 | RIPA裂解液 | Beyotime | P0013B |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Beyotime | C0038 |
| 克隆形成 | 结晶紫染色液 | Beyotime | C0121 |
| 细胞凋亡检测 | Annexin V-FITC凋亡检测试剂盒 | Beyotime | C1062 |
| 活性氧检测 | 活性氧检测试剂盒 | Beyotime | S0033 |
| 蛋白定量 | 增强型BCA蛋白定量试剂盒 | Beyotime | P0010 |
| Western blot | PVDF膜 | Biosharp | -- |
| RAF1多克隆抗体 | Proteintech | 26863-1-AP | |
| MEK1/2多克隆抗体 | Proteintech | 11049-1-AP | |
| ERK1/2多克隆抗体 | Proteintech | 16443-1-AP | |
| 磷酸化ERK1/2 (Thr202/Tyr204)多克隆抗体 | Proteintech | 28733-1-AP | |
| GAPDH多克隆抗体 | Proteintech | 10494-1-AP | |
| HRP标记亲和纯化山羊抗兔IgG(H+L) | Proteintech | SA00001-2 | |
| 抗MEK1/2 (phospho-S221 + S222)抗体 | Abcam | ab278723 | |
| 磷酸化MEK1/2 (Ser221)抗体 | Affinity | AF3385 | |
| 免疫组化 | 抗p-ERK抗体 | Proteintech | -- |
| 抗p-MEK抗体 | Affinity | -- | |
| 细胞系 | HuH-7细胞系 | Procell Life Science & Technology Corporation | CL-0120 |
| AML-12细胞系 | American Type Culture Collection | CRL-2254 | |
| 动物模型 | BALB/c裸鼠 | Vital River Laboratory Animal Technology Corporation | 401 |
| 磁热疗设备 | 中频电磁场仪器 | Xi’an SuperMag Nanobiotechnology Co., Ltd. | -- |
| 表征 | 透射电子显微镜 | FEI | -- |
| 扫描电子显微镜 | Hitachi | -- | |
| X射线衍射仪 | Bruker | -- | |
| 傅里叶变换红外光谱仪 | Bruker | -- | |
| Zetasizer粒度仪 | Malvern | -- | |
| 电感耦合等离子体质谱仪 | Agilent | 7900 | |
| 流式分析 | CyFlow Space流式细胞仪 | Sysmex Corporation | -- |
| 显微镜 | 激光扫描共聚焦显微镜 | Nikon | -- |
| 光学显微镜 | Nikon | -- | |
| 血液生化分析 | 血液生化自动分析仪7100 | Hitachi | -- |
| Western blot成像 | 蛋白质印迹成像系统 | Tanon | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 耐药细胞系构建 | HuH-7/SR细胞构建步骤:索拉非尼浓度递增(0.5-30 μM)及处理时长(每个浓度2周,总9个月),培养维持浓度2 μM 阅读提示:见STAR Methods中的“Induction of a sorafenib-resistant cell line” |
| MH处理 | FVIO浓度(75 μg/mL)、孵育时间(24 h)、AMF参数(300 Oe, 360 kHz)、处理时长(10 min) 阅读提示:见STAR Methods中的“MH treatment and water bath heating of HuH-7/SR cells” |
| 机制验证 | NAC浓度(3 mM)、PD98059浓度(20 μM)、LPS浓度(2 μg/mL),孵育时间(24 h) 阅读提示:见Results and discussion中“Mechanism of sorafenib resistance...”部分及Figure 4、5 |
| 动物模型 | 小鼠品系(BALB/c裸鼠)、接种细胞数(1×10^7)、肿瘤体积约100 mm^3时分组、每组5只 阅读提示:见STAR Methods中的“Development of a sorafenib-resistant HCC mouse model”和“Evaluation of in vivo antitumor efficacy” |
| 治疗方案 | FVIO瘤内注射剂量(3 mg Fe/cm^3)、AMF处理天数(第1、3、5天)、索拉非尼剂量(30 mg/kg/天口服)、PD98059剂量(2 mg/kg/隔日静脉) 阅读提示:见STAR Methods中的“Evaluation of in vivo antitumor efficacy” |