建立LIRI小鼠模型并评估Gal3抑制效果
验证抑制Gal3是否能减轻LIRI诱导的肺组织损伤和炎症反应。
建立C57BL/6小鼠LIRI模型,使用TD139抑制Gal3,通过HE染色、肺损伤评分、W/D比值、透射电镜和ELISA评估组织损伤和炎症因子(TNF-α、IL-1β、IL-10)水平。
Galectin-3 as TREM2 upstream factor contributes to lung ischemia-reperfusion injury by regulating macrophage polarization.
包含体内小鼠LIRI模型和体外OGD/R细胞模型,结合TREM2敲除小鼠和激动剂HSP60进行功能验证,涵盖形态学、炎症因子、极化标志物及共定位分析。
C57BL/6小鼠LIRI模型 TREM2敲除(TREM2−/−)小鼠LIRI模型 RAW264.7细胞OGD/R模型
Gal3抑制剂TD139给药剂量:15 mg/kg,腹腔注射 TD139给药时间:缺血诱导前2小时及缺血后2小时 肺缺血时间:1小时,再灌注时间:6小时 RAW264.7细胞TD139处理浓度:10 μM,预处理时间:4小时 TREM2激动剂HSP60的使用及剂量(文中未明确说明具体剂量)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证抑制Gal3是否能减轻LIRI诱导的肺组织损伤和炎症反应。
建立C57BL/6小鼠LIRI模型,使用TD139抑制Gal3,通过HE染色、肺损伤评分、W/D比值、透射电镜和ELISA评估组织损伤和炎症因子(TNF-α、IL-1β、IL-10)水平。
确定抑制Gal3对LIRI中巨噬细胞M1/M2极化的影响。
通过Western blot和免疫荧光检测肺组织中M1型标志物(IL-1β, IL-6, TNF-α, CCL5)和M2型标志物(Arg1, IL-10, Retnla, Chil3)的表达。
在体外验证Gal3抑制对巨噬细胞极化和细胞活力的影响。
RAW264.7细胞经TD139预处理后建立OGD/R模型,检测细胞活力(CCK-8)、Gal3表达和M1/M2标志物表达。
探究Gal3是否与TREM2共定位并调控其表达。
通过免疫荧光共染色、Western blot和RT-qPCR检测体内外模型中Gal3和TREM2的表达及共定位情况。
验证TREM2在LIRI中的保护作用及其对巨噬细胞极化的影响。
使用TREM2−/−小鼠和TREM2激动剂HSP60,通过HE染色、肺损伤评分、W/D比值和免疫荧光评估TREM2对肺损伤和巨噬细胞极化的影响。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 药物处理 | TD139 | GLPBIO | GC19350 |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | Gibco | C11995500BT |
| 胎牛血清 | Gibco | 10099-141 | |
| 磷酸盐缓冲液 | Servicebio | G4202 | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Solarbio | R0010 |
| 蛋白酶抑制剂混合物 | Servicebio | G2006 | |
| 磷酸酶抑制剂混合物 | Cell Signaling Technology | CST_5872s | |
| ELISA | IL-1β ELISA试剂盒 | CUSABIO | CSB-E08054m |
| TNF-α ELISA试剂盒 | CUSABIO | CSB-E04741m | |
| IL-10 ELISA试剂盒 | CUSABIO | CSB-E04594m | |
| Gal3 ELISA试剂盒 | CUSABIO | CSB-E14296m | |
| 细胞活力检测 | CCK-8试剂盒 | Beyotime Biotechnology | C0038 |
| Western blot | BCA蛋白浓度测定试剂盒 | Beyotime Biotechnology | P0011 |
| RT-qPCR | RNAiso plus试剂 | Takara | 9109 |
| Prime Script™逆转录试剂盒 | Takara | RR047A | |
| 抗体 | 小鼠抗半乳糖凝集素3单克隆抗体 | Abcam | ab2785 |
| 兔抗TREM2多克隆抗体 | bioss | bs2723R | |
| 大鼠抗F4/80单克隆抗体 | Abcam | ab6640 | |
| 山羊抗IL-1β多克隆抗体 | R&D systems | AF-401-NA | |
| 兔抗TNF-α单克隆抗体 | Abcam | ab183218 | |
| 兔抗IL-6多克隆抗体 | Novus Biologicals | NB600-1131 | |
| 山羊抗CCL5多克隆抗体 | R&D systems | AF478 | |
| 兔抗Arg1多克隆抗体 | Novus Biologicals | NBP1-32731 | |
| 山羊抗IL-10多克隆抗体 | R&D systems | AF519 | |
| 兔抗Retnla多克隆抗体 | Abcam | ab39626 | |
| 大鼠抗Chil3单克隆抗体 | R&D systems | MAB2446 | |
| 山羊抗小鼠H&L IRDye@800 CW二抗 | Abcam | ab216772 | |
| 山羊抗兔H&L IRDye@800 CW二抗 | Abcam | ab216773 | |
| 驴抗山羊H&L IRDye@800 CW二抗 | Abcam | ab216775 | |
| Alexa驴抗大鼠488二抗 | Abcam | ab150153 | |
| Alexa驴抗兔594二抗 | Abcam | ab150076 | |
| Alexa驴抗山羊594二抗 | Abcam | ab150132 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | 小鼠品系(C57BL/6或TREM2−/−)、年龄(6-8周)、体重(20-25g)、麻醉剂量(戊巴比妥钠50 mg/kg)、机械通气参数、缺血时间(1小时)、再灌注时间(6小时)、给药方案(TD139 15 mg/kg,腹腔注射,术前2小时及缺血后2小时) 阅读提示:STAR★Methods - Lung ischemia reperfusion injury model |
| 细胞模型建立 | RAW264.7细胞来源、培养条件(DMEM+10%FBS+1%PS,37°C,5% CO2)、TD139浓度(10 μM)及预处理时间(4小时)、OGD/R模型建立方法及样本收集时间(OGD/R后6小时) 阅读提示:STAR★Methods - Cell culture and oxygen-glucose deprivation and reoxygenation (OGD/R) model |
| Western blot | 肺组织或细胞裂解液制备(RIPA缓冲液+蛋白酶抑制剂+磷酸酶抑制剂)、离心条件(12,000 g,20分钟,4°C)、蛋白定量(BCA试剂盒)、上样量(文中未明确说明)、一抗和二抗稀释比例(文中未明确说明) 阅读提示:STAR★Methods - Western blotting |
| ELISA | 样本类型(肺组织、BALF、血清)、样本处理方式(如血清需低温静置3小时后离心)、ELISA试剂盒品牌及货号、具体检测步骤 阅读提示:STAR★Methods - Enzyme-linked immunosorbent assay (ELISA) |
| 免疫荧光染色 | 石蜡切片处理(烤片、脱蜡、抗原修复)、一抗及二抗信息、孵育时间和温度、封片和观察条件(荧光显微镜型号) 阅读提示:STAR★Methods - Immunofluorescence staining |