单细胞测序结合空间转录组学揭示M1巨噬细胞中IRF7基因通过调控脂质代谢相关机制抑制胰腺癌的发生

Single-cell sequencing combined with spatial transcriptomics reveals that the IRF7 gene in M1 macrophages inhibits the occurrence of pancreatic cancer by regulating lipid metabolism-related mechanisms.

作者信息Ting Zhan, Yanli Zou, Zheng Han, XiaoRong Tian, Mengge Chen, Jiaxi Liu, Xiulin Yang, Qingxi Zhu, Meng Liu, Wei Chen, Mingtao Chen, Xiaodong Huang, Jie Tan, Weijie Liu, Xia Tian
PMID39118300
发布时间2024-08
DOI10.1002/ctm2.1799

实验完整度

高

包含体外细胞模型(THP-1来源M1巨噬细胞、PANC-1/BxPC-3细胞)、CRISPR/Cas9敲除、慢病毒过表达、外泌体共培养、代谢组学、体内原位小鼠模型及多种功能验证,证据层级丰富。

主要模型

THP-1单核细胞诱导的M1型巨噬细胞 PANC-1和BxPC-3人胰腺腺癌细胞系 C57BL/6J小鼠原位胰腺癌移植模型

重点核对

M1巨噬细胞中IRF7敲除(IRF7-KO)和过表达(oe-IRF7)对RPS18转录及mRNA稳定性的影响 M1巨噬细胞来源外泌体(M1-Exos)中RPS18含量及其向PAAD细胞的转移 PAAD细胞中ILF3表达受RPS18调控的验证 体内实验中oe-IRF7-Exos对肿瘤生长、肿瘤重量和体积的影响

摘要

目的:本研究的主要焦点是探讨胰腺腺癌(PAAD)组织中IRF7对M1型巨噬细胞中RPS18转录的调控分子机制,以及IRF7通过外泌体将RPS18转移至PAAD细胞并调控ILF3表达。方法:利用Gene Expression Omnibus数据库中的单细胞RNA测序(scRNA‐seq)数据和空间转录组学(ST)数据,我们鉴定了PAAD组织中具有显著表达差异的不同细胞类型。在这些细胞类型中,我们鉴定了与脂质代谢密切相关的细胞类型。分析了这些细胞类型中的差异表达基因,并鉴定了与预后相关的靶基因。采用流式细胞术评估M1和M2巨噬细胞中靶基因的表达水平。使用CRISPR/Cas9编辑技术构建靶基因敲除的细胞系,并使用慢病毒载体建立靶基因敲低和过表达的细胞系。此外,建立了M1巨噬细胞来源的外泌体与PAAD细胞的共培养模型。通过代谢组学分析评估了该模型中M1巨噬细胞来源的外泌体对PAAD细胞脂质代谢的影响。使用MTT实验、流式细胞术、EdU实验、伤口愈合实验、Transwell实验和TUNEL染色评估M1巨噬细胞来源的外泌体对PAAD细胞活力、增殖、分裂、迁移和凋亡的影响。此外,建立了小鼠PAAD原位植入模型,并利用生物发光成像评估M1巨噬细胞来源的外泌体对PAAD细胞瘤内形成能力的影响,以及测量肿瘤重量和体积。使用免疫组织化学检测肿瘤组织中增殖相关蛋白的表达。结果:通过scRNA‐seq和ST技术的联合分析,我们发现PAAD样本中M1巨噬细胞与脂质代谢信号密切相关,并且M1巨噬细胞与癌细胞呈负相关。预后风险评分模型的构建确定了RPS18和IRF7是M1巨噬细胞中两个与预后相关的基因,分别呈负相关和正相关。机制上,发现M1巨噬细胞中的IRF7可以抑制RPS18的转录,减少RPS18通过外泌体向PAAD细胞的转移,从而影响PAAD细胞中ILF3的表达。M1巨噬细胞中的IRF7/RPS18还可以抑制脂质代谢、细胞活力、增殖、迁移、侵袭和瘤内形成能力,同时促进细胞凋亡。结论:M1巨噬细胞中IRF7的过表达可能抑制RPS18转录,减少RPS18从M1巨噬细胞来源的外泌体向PAAD细胞的转移,从而抑制PAAD细胞中ILF3的表达,抑制脂质代谢途径,并抑制PAAD细胞的活力、增殖、迁移、侵袭,以及增强细胞凋亡,最终在体内抑制PAAD细胞的肿瘤形成。靶向M1巨噬细胞中的IRF7/RPS18可能成为未来PAAD的一种有前景的免疫治疗方法。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
M1型巨噬细胞中IRF7如何通过调控RPS18转录及外泌体传递影响胰腺腺癌细胞的脂质代谢和肿瘤发生?
核心机制
M1巨噬细胞中IRF7抑制RPS18转录,减少RPS18经外泌体转移至PAAD细胞,从而下调PAAD细胞中ILF3表达,抑制脂质代谢,抑制细胞活力、增殖、迁移、侵袭,促进凋亡,最终抑制肿瘤形成。
主要证据
结合scRNA-seq和ST分析发现M1巨噬细胞与脂质代谢相关且与癌细胞负相关;预后模型确定IRF7和RPS18;ChIP-qPCR和荧光素酶实验验证IRF7结合RPS18启动子;外泌体共培养实验显示IRF7-KO增加RPS18转移和ILF3表达;体内小鼠模型显示oe-IRF7-Exos抑制肿瘤生长。
研究意义
靶向M1巨噬细胞中的IRF7/RPS18可能成为未来PAAD的一种有前景的免疫治疗方法,为PAAD的发病、进展和免疫治疗提供新视角。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

单细胞测序和空间转录组学分析

识别PAAD组织中的细胞类型组成,并探究巨噬细胞与脂质代谢信号及癌细胞的关系

对3例PAAD患者的癌组织和癌旁组织进行单细胞RNA测序,对另外3例PAAD患者的冷冻切片进行空间转录组学分析。整合scRNA-seq和ST数据,鉴定细胞类型,进行差异表达基因分析、细胞间通讯分析、轨迹分析等。

2

构建预后风险评分模型

鉴定与预后相关的关键基因

从GEO数据库获取GSE183795数据集,提取巨噬细胞中274个差异表达基因,利用Lasso回归和Cox回归构建预后风险评分模型,并通过TCGA数据库和TIMER数据库进行验证。

3

IRF7调控RPS18转录的机制验证

验证IRF7对RPS18转录的抑制作用及结合位点

利用CRISPR/Cas9技术构建IRF7敲除的M1巨噬细胞,通过慢病毒构建IRF7过表达的M1巨噬细胞,使用ChIP-qPCR和双荧光素酶报告基因实验验证IRF7与RPS18启动子的结合。

4

外泌体介导的RPS18转移及对ILF3表达的影响

探究M1巨噬细胞来源外泌体是否将RPS18转移至PAAD细胞并调控ILF3

分离M1巨噬细胞外泌体,与PANC-1/BxPC-3细胞共培养,检测RPS18和ILF3表达;使用GW4869抑制外泌体分泌;进行RNA测序鉴定下游靶基因。

5

体外功能实验验证

评估IRF7/RPS18/ILF3轴对PAAD细胞生物学功能的影响

使用MTT实验、流式细胞术、EdU实验、伤口愈合实验、Transwell实验和TUNEL染色检测细胞活力、增殖、迁移、侵袭和凋亡。通过代谢组学分析脂质代谢变化。

6

体内小鼠原位肿瘤模型验证

评估IRF7/RPS18/ILF3轴在体内的抑瘤作用

建立小鼠原位胰腺癌模型,注射不同处理组的M1-Exos,通过生物发光成像监测肿瘤生长,测量肿瘤重量和体积,进行免疫组化检测Ki67表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
C1单细胞自动制备系统Fluidigm, Inc.--
胶原酶Sigma-AldrichC2674
胰蛋白酶/EDTAGibco25200072
DMEM培养基Gibco11965092
RPMI-1640培养基GibcoA1049101
佛波醇-12-十四酸酯-13-乙酸酯MedChemExpressHY-18739
干扰素-γMedChemExpressHY-P7025A
GW4869MedChemExpressHY-19363
CO2培养箱Thermo Scientific51033770
RIPA裂解液Thermo Fisher89900
聚乙二醇8000SolarbioP8270
IRF7抗体Abcamab238137
蛋白A/G磁珠BeyotimP2012
PrimeScript RT预混液TakaraRR036A
SYBR Green预混液TakaraRR420A
APC偶联抗CD86抗体Thermo Fisher17-0869-42
FITC偶联抗CD163抗体Thermo FisherMA5-17719
PE偶联抗IRF7抗体Thermo Fisher12-5375-42
磷酸盐缓冲液Sigma-AldrichP4417
碘化丙啶YEASEN40710ES03
FACS Aria II流式细胞仪BD Bioscience--
Lenti-CRISPR v2载体Haneng Biological Technology--
嘌呤霉素GibcoA1113803
Lipofectamine 2000转染试剂----
嘌呤霉素Sigma-AldrichUCOE03
Trizol试剂Invitrogen15596026
NanoDrop LITE分光光度计Thermo ScientificND-LITE-PR
PrimeScript RT试剂盒(含gDNA Eraser)TaKaRaRR047Q
SYBR Green PCR预混液Applied Biosystems4364344
ABI PRISM 7500序列检测系统Applied Biosystems--
RIPA裂解液Beyotime BiotechnologyP0013B
BCA蛋白定量试剂盒Beyotime BiotechnologyP0012
PVDF膜----
HRP标记羊抗兔二抗Abcamab6721
羊抗鼠二抗Abcamab6785
Pierce ECL Western blot底物Thermo Scientific32209
胰蛋白酶-EDTAGibco25200072
乙酸铵----
MTT溶液Beyotime BiotechnologyST316
分光光度计Laspec--
EdUGuangzhou RiboBioC10310-2
荧光显微镜BX63Olympus--
倒置显微镜CKX53Olympus--
ECM胶Sigma-AldrichE1270
Transwell板----
牛血清白蛋白Yeasen Biotechnology36101ES25
TUNEL试剂Beyotime BiotechnologyC1086
DAPI染色液Beyotime BiotechnologyC1002
共聚焦显微镜LSM 880Carl Zeiss AG--
双荧光素酶报告基因检测系统PromegaE1910
pRL-TK载体PromegaLM1568
蔗糖----
qEV10尺寸排阻色谱柱----
NGC Quest 10色谱系统----
NanoSight NS300纳米颗粒追踪分析仪Malvern--
ZetaView纳米颗粒追踪分析仪Particle Metrix--
透射电子显微镜JEM-1011JEOL--
Dil染料Beyotime BiotechnologyC1036
DAPIBeyotime BiotechnologyC1005
荧光显微镜BX53Olympus--
总RNA提取试剂盒Invitrogen12183555
NextSeq 500测序仪Illumina--
CRi Maestro小动物活体成像系统CRi Inc.--
异氟烷ShenzhenR510-22-10
Ki67抗体Abcamab16667
DAB显色液Beyotime BiotechnologyP0202
苏丹黑BBeyotime BiotechnologyC0107

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与M1巨噬细胞诱导
THP-1单核细胞诱导为M1巨噬细胞:使用50 nM PMA处理48小时,然后100 ng/mL IFN-γ处理24小时。培养条件:37°C,5% CO2。
阅读提示:详见Materials and Methods 4.5节
CRISPR/Cas9敲除和慢病毒过表达
IRF7敲除使用CRISPR/Cas9(sgRNA序列),过表达使用Lenti-CRISPR v2载体,慢病毒转导MOI=10,筛选浓度4 μg/mL嘌呤霉素,转染时间48小时。
阅读提示:详见Materials and Methods 4.8和4.9节
外泌体分离与共培养
外泌体分离采用超速离心和蔗糖垫,共培养时间:36小时。GW4869浓度:5 μM。
阅读提示:详见Materials and Methods 4.13和4.23节
体内动物实验
C57BL/6J雄性小鼠,6-8周龄,皮下注射5×10^5 PANC-1/BxPC-3细胞,原位移植,M1-Exos静脉注射200 μg/100 μL PBS,每周三次。
阅读提示:详见Materials and Methods 4.27节