脑内皮细胞来源的细胞外囊泡通过递送miR-672-5p调节小胶质细胞极化和促进自噬

Cerebral endothelial cell-derived extracellular vesicles regulate microglial polarization and promote autophagy via delivery of miR-672-5p.

作者信息Changshui Wang, Lei Feng, Li Zhu, Linlin Wu, Beibei Chen, Changmeng Cui, Mengqi Yang, Yahao Gao, Pei Jiang
PMID37773169
发布时间2023-09-29
DOI10.1038/s41419-023-06173-5

实验完整度

高

包含体外细胞实验(原代小胶质细胞、BV2细胞、bEnd.3细胞)、体内动物模型(小鼠LPS注射及行为学测试),并进行了功能验证(miRNA敲低、靶基因验证)及机制验证(NF-κB通路、自噬)。

主要模型

小鼠原代小胶质细胞 BV2小胶质细胞系 C57BL/6J小鼠LPS炎症模型

重点核对

CEC-EVs的分离与纯化(超速离心+蔗糖梯度) LPS诱导小胶质细胞炎症模型(500 μg/kg,隔天腹腔注射,共7次) miR-672-5p敲低CEC(miR-672-5pKD-CECs) 体内注射CEC-EVs(4×10^10颗粒,尾静脉,每周3次,共2周) GW4869抑制EV分泌

摘要

脑内皮细胞(CEC)与脑实质细胞之间的相互作用对于维持神经血管稳态至关重要,而细胞外囊泡(EVs)是介导细胞间通讯所必需的。先前研究表明,CEC来源的EVs(CEC-EVs)具有神经保护作用。然而,其分子机制仍不清楚。在本研究中,我们从CEC中分离EVs,并评估其在脂多糖(LPS)暴露后对小胶质细胞和小鼠的免疫调节作用。我们发现,CEC-EVs处理显著改善了LPS诱导的炎症激活,将小胶质细胞极化从促炎表型转变为抗炎表型。同时,小胶质细胞能有效内化CEC-EVs,且免疫激活进一步增强这一过程。接下来,miRNA微阵列分析显示CEC-EVs增加了miR-672-5p的表达,该miRNA被证实是CEC-EVs的货物。TGFβ活化激酶1(TAK1)结合蛋白2(TAB2)被鉴定为miR-672-5p的靶标。通过抑制TAB2,来源于CEC-EVs的miR-672-5p抑制了TAK1-TAB信号传导,从而减轻下游NF-κB的激活。此外,我们发现通过递送miR-672-5p,CEC-EVs促进了自噬,从而刺激NLRP3炎症小体的自噬降解。我们的工作首次揭示了CEC-EVs的神经免疫调节作用,并进一步证明CEC-EVs分泌的miR-672-5p通过靶向TAB2抑制小胶质细胞促炎极化和促进自噬过程。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
CEC-EVs在LPS诱导的神经炎症中如何调节小胶质细胞功能和神经保护作用?其分子机制是什么?
核心机制
CEC-EVs递送miR-672-5p,靶向抑制TAB2表达,从而抑制TAK1-TAB2相互作用及其下游NF-κB信号通路,同时促进自噬并增强NLRP3炎症小体的自噬降解。
主要证据
体外和体内实验表明,CEC-EVs通过miR-672-5p下调TAB2,减少TAK1磷酸化,抑制NF-κB活化,并增强自噬流;miR-672-5p敲低逆转这些效应。体内还观察到CEC-EVs改善LPS诱导的认知和行为缺陷。
研究意义
首次揭示CEC-EVs的神经免疫调节作用,提示CEC-EVs可作为神经炎症相关神经精神疾病的潜在治疗策略。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

CEC-EVs的分离与表征

验证CEC-EVs的分离方法及纯度,为后续功能研究提供可靠的EVs制剂。

采用超速离心和蔗糖密度梯度离心从CEC培养上清中分离EVs,使用NTA、TEM、Western blot检测EVs标志物(CD63、syntenin、Alix、TSG101)及内质网标志物(Calnexin)以确认EVs纯度。

2

小胶质细胞对CEC-EVs的摄取

验证小胶质细胞在炎症条件下是否增强对CEC-EVs的摄取。

将PKH26标记的CECs与BV2或原代小胶质细胞在Transwell共培养,或用PKH67标记的EVs静脉注射小鼠,检测小胶质细胞的荧光摄取。

3

CEC-EVs的抗炎功能验证

检测CEC-EVs对LPS诱导的小胶质细胞炎症反应和极化状态的影响。

用LPS和CEC-EVs处理小胶质细胞,通过转录组测序、qPCR、Western blot和免疫荧光检测炎症因子(TNF-α、IL-6等)及极化标志物(iNOS、CD86、CD206、ARG-1)的表达。

4

鉴定CEC-EVs中miR-672-5p的转移

确认miR-672-5p是通过EVs介导从CECs转移至小胶质细胞的活性miRNA。

通过miRNA测序和qPCR验证CEC-EVs提高小胶质细胞中miR-672-5p;用Cy3标记miR-672-5p mimics转染CECs,与微胶质细胞共培养,用GW4869抑制EV分泌验证转移。

5

靶基因TAB2的验证

验证miR-672-5p直接靶向TAB2的3'UTR并调控其表达。

利用双荧光素酶报告基因实验验证miR-672-5p与TAB2 3'UTR结合;通过Western blot和qPCR检测miR-672-5p过表达对TAB2蛋白和mRNA水平的影响;Co-IP检测对TAB2-TAK1相互作用的影响。

6

体内及体外通路验证

验证CEC-EVs通过miR-672-5p对TAK1-NF-κB通路和自噬的调控作用。

在体外和体内用miR-NCKD-EVs或miR-672-5pKD-EVs处理LPS刺激的小胶质细胞或小鼠,检测TAB2、p-TAK1、NF-κB活性及自噬标志物(LC3、Beclin1、p62)。

7

行为学测试

评估CEC-EVs对LPS诱导的小鼠认知和情绪行为缺陷的改善作用。

对小鼠进行Morris水迷宫(MWM)、高架十字迷宫(EPM)、蔗糖偏好(SPT)和强迫游泳(FST)测试。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
超速离心管Thermo3139-0050
DMEM/F12培养基----
胎牛血清Gibco--
青霉素/链霉素Gibco--
内皮细胞生长添加剂ScienCell--
去外泌体胎牛血清培养基Inner Mongolia Opcel Biotechnology Co., LtdBS-1205
ZetaView PMX 120-Z纳米颗粒追踪分析仪Particle Metrix--
HT7700透射电子显微镜Hitachi--
DiR荧光染料----
PKH67绿色荧光染料Sigma--
PKH26红色荧光染料----
脂多糖----
Lipofectamine RNAiMAX转染试剂Invitrogen--
pmirGLO双荧光素酶靶标表达载体Promega--
免疫共沉淀试剂盒Absin Bioscience--
M-PER哺乳动物蛋白提取试剂Thermo Scientific78501
总外泌体RNA和蛋白分离试剂盒Invitrogen4478545
NE-PER核和胞质提取试剂Thermo Scientific78835
Pierce BCA蛋白定量试剂盒Pierce23227
Trizol试剂Invitrogen--
NanoDrop 2000分光光度计Thermo Scientific--
SuperScript III逆转录酶Invitrogen--
CFX96 Touch实时荧光定量PCR检测系统Bio-Rad--
TNF-α ELISA试剂盒R&D SystemsMTA00B
IL-1β ELISA试剂盒R&D SystemsMLB00C
IL-6 ELISA试剂盒R&D SystemsM6000B
IL-10 ELISA试剂盒R&D SystemsM1000B
Quanti-blue检测InvivoGen--
抗syntenin抗体Abcamab19903
抗Alix抗体Abcamab186429
抗CD63抗体Abcamab217345
抗TSG101抗体Abcamab125011
抗GRP94抗体Abcamab32568
抗Calnexin抗体Abcamab22595
抗TAB2抗体AffinityDF2368
抗TAK1抗体AffinityAF7616
抗p-TAK1抗体AffinityAF3019
抗IKKβ抗体Abcamab32135
抗p-IKKβ抗体AffinityAF3010
抗IκBα抗体AffinityAF5002
抗p-IκBα抗体AffinityAF2002
抗NFκB抗体AffinityAF5006
抗LC3抗体Abcamab192890
抗Beclin 1抗体Abcamab62557
抗SQSTM1/p62抗体Abcamab109012
抗β-actin抗体Abcamab8227
抗PCNA抗体Abcamab18197
HRP标记的山羊抗兔IgGAbcamab6721
抗IBA-1抗体Abcamab178847
抗CD68抗体Abcamab53444
抗NLRP3抗体AffinityDF7438
抗iNOS抗体Abcamab178945
抗ARG-1抗体AffinityDF6657
TUNEL检测试剂盒Beyotime--

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型
雄性C57BL/6J小鼠,7-8周龄;LPS剂量500 μg/kg腹腔注射,隔天一次,共7次;EVs剂量4×10^10颗粒尾静脉注射,每周3次,共2周;分组:Control、LPS、LPS+miR-NCKD-EVs、LPS+miR-672-5pKD-EVs。
阅读提示:Materials and methods: Animals and treatment
细胞培养
原代小胶质细胞来源(C57BL/6J小鼠,1-2天);培养条件(DMEM/F12,10% FBS,37°C,5% CO2);分离方法(轻柔震荡30分钟)。
阅读提示:Materials and methods: Cells culture and treatment
EVs分离与纯化
超速离心(100,000 × g, 90 min);蔗糖梯度离心(200,000 × g, 16 h);EVs鉴定(NTA粒径50-150 nm,表达CD63、syntenin,缺乏Calnexin)。
阅读提示:Materials and methods: EVs isolation and purification
炎症诱导
LPS处理浓度和处理时间:文中未明确说明。
阅读提示:Results: CEC-EVs contains anti-inflammatory actions
EVs摄取实验
Transwell共培养:CECs(上室)与小胶质细胞(下室),膜孔径0.4 μm;PKH26/PKH67标记;LPS处理浓度和时间未明确。
阅读提示:Results: Inflammatory activation had no effect on EVs release...; Materials and methods: Transwell assay
miRNA敲低
miR-672-5p敲低CECs(miR-672-5pKD-CECs);转染试剂:Lipofectamine RNAiMAX;敲低效率验证(qRT-PCR)。
阅读提示:Materials and methods: Transfection; Results: miR-672-5p is transferred...
分子检测
Western blot抗体及稀释度:文中未明确说明;双荧光素酶报告实验(pmirGLO-TAB2-WT/Mut);Co-IP(anti-TAB2或anti-MYC)。
阅读提示:Materials and methods: Western blot; Co-immunoprecipitation
自噬检测
自噬流检测(mRFP-GFP-LC3腺病毒);氯喹(CQ)处理浓度:文中未明确说明;LC3-II、Beclin1、p62表达。
阅读提示:Results: CEC-EVs-derived miR-672-5p promoted autophagy...
行为学测试
MWM:6天(前5天导航,第6天探索);EPM:5分钟探索;SPT:1%蔗糖偏好;FST:6分钟,记录最后5分钟不动时间。
阅读提示:Materials and methods: Behavioral tests
数据分析
统计方法:非配对t检验或单因素方差分析;重复数(n=3或n=6或n=12);数据表示:均值±SD;显著性:p<0.05。
阅读提示:Materials and methods: Statistical analysis