CEC-EVs的分离与表征
验证CEC-EVs的分离方法及纯度,为后续功能研究提供可靠的EVs制剂。
采用超速离心和蔗糖密度梯度离心从CEC培养上清中分离EVs,使用NTA、TEM、Western blot检测EVs标志物(CD63、syntenin、Alix、TSG101)及内质网标志物(Calnexin)以确认EVs纯度。
Cerebral endothelial cell-derived extracellular vesicles regulate microglial polarization and promote autophagy via delivery of miR-672-5p.
包含体外细胞实验(原代小胶质细胞、BV2细胞、bEnd.3细胞)、体内动物模型(小鼠LPS注射及行为学测试),并进行了功能验证(miRNA敲低、靶基因验证)及机制验证(NF-κB通路、自噬)。
小鼠原代小胶质细胞 BV2小胶质细胞系 C57BL/6J小鼠LPS炎症模型
CEC-EVs的分离与纯化(超速离心+蔗糖梯度) LPS诱导小胶质细胞炎症模型(500 μg/kg,隔天腹腔注射,共7次) miR-672-5p敲低CEC(miR-672-5pKD-CECs) 体内注射CEC-EVs(4×10^10颗粒,尾静脉,每周3次,共2周) GW4869抑制EV分泌
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证CEC-EVs的分离方法及纯度,为后续功能研究提供可靠的EVs制剂。
采用超速离心和蔗糖密度梯度离心从CEC培养上清中分离EVs,使用NTA、TEM、Western blot检测EVs标志物(CD63、syntenin、Alix、TSG101)及内质网标志物(Calnexin)以确认EVs纯度。
验证小胶质细胞在炎症条件下是否增强对CEC-EVs的摄取。
将PKH26标记的CECs与BV2或原代小胶质细胞在Transwell共培养,或用PKH67标记的EVs静脉注射小鼠,检测小胶质细胞的荧光摄取。
检测CEC-EVs对LPS诱导的小胶质细胞炎症反应和极化状态的影响。
用LPS和CEC-EVs处理小胶质细胞,通过转录组测序、qPCR、Western blot和免疫荧光检测炎症因子(TNF-α、IL-6等)及极化标志物(iNOS、CD86、CD206、ARG-1)的表达。
确认miR-672-5p是通过EVs介导从CECs转移至小胶质细胞的活性miRNA。
通过miRNA测序和qPCR验证CEC-EVs提高小胶质细胞中miR-672-5p;用Cy3标记miR-672-5p mimics转染CECs,与微胶质细胞共培养,用GW4869抑制EV分泌验证转移。
验证miR-672-5p直接靶向TAB2的3'UTR并调控其表达。
利用双荧光素酶报告基因实验验证miR-672-5p与TAB2 3'UTR结合;通过Western blot和qPCR检测miR-672-5p过表达对TAB2蛋白和mRNA水平的影响;Co-IP检测对TAB2-TAK1相互作用的影响。
验证CEC-EVs通过miR-672-5p对TAK1-NF-κB通路和自噬的调控作用。
在体外和体内用miR-NCKD-EVs或miR-672-5pKD-EVs处理LPS刺激的小胶质细胞或小鼠,检测TAB2、p-TAK1、NF-κB活性及自噬标志物(LC3、Beclin1、p62)。
评估CEC-EVs对LPS诱导的小鼠认知和情绪行为缺陷的改善作用。
对小鼠进行Morris水迷宫(MWM)、高架十字迷宫(EPM)、蔗糖偏好(SPT)和强迫游泳(FST)测试。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| EVs分离 | 超速离心管 | Thermo | 3139-0050 |
| 细胞培养 | DMEM/F12培养基 | -- | -- |
| 胎牛血清 | Gibco | -- | |
| 青霉素/链霉素 | Gibco | -- | |
| 内皮细胞生长添加剂 | ScienCell | -- | |
| EVs分离 | 去外泌体胎牛血清培养基 | Inner Mongolia Opcel Biotechnology Co., Ltd | BS-1205 |
| ZetaView PMX 120-Z纳米颗粒追踪分析仪 | Particle Metrix | -- | |
| EVs表征 | HT7700透射电子显微镜 | Hitachi | -- |
| EVs标记 | DiR荧光染料 | -- | -- |
| PKH67绿色荧光染料 | Sigma | -- | |
| PKH26红色荧光染料 | -- | -- | |
| 细胞处理 | 脂多糖 | -- | -- |
| 转染 | Lipofectamine RNAiMAX转染试剂 | Invitrogen | -- |
| 荧光素酶报告基因 | pmirGLO双荧光素酶靶标表达载体 | Promega | -- |
| 免疫共沉淀 | 免疫共沉淀试剂盒 | Absin Bioscience | -- |
| 蛋白检测 | M-PER哺乳动物蛋白提取试剂 | Thermo Scientific | 78501 |
| 总外泌体RNA和蛋白分离试剂盒 | Invitrogen | 4478545 | |
| NE-PER核和胞质提取试剂 | Thermo Scientific | 78835 | |
| Pierce BCA蛋白定量试剂盒 | Pierce | 23227 | |
| RT-qPCR | Trizol试剂 | Invitrogen | -- |
| NanoDrop 2000分光光度计 | Thermo Scientific | -- | |
| SuperScript III逆转录酶 | Invitrogen | -- | |
| CFX96 Touch实时荧光定量PCR检测系统 | Bio-Rad | -- | |
| ELISA | TNF-α ELISA试剂盒 | R&D Systems | MTA00B |
| IL-1β ELISA试剂盒 | R&D Systems | MLB00C | |
| IL-6 ELISA试剂盒 | R&D Systems | M6000B | |
| IL-10 ELISA试剂盒 | R&D Systems | M1000B | |
| NF-κB活性分析 | Quanti-blue检测 | InvivoGen | -- |
| 抗体 | 抗syntenin抗体 | Abcam | ab19903 |
| 抗Alix抗体 | Abcam | ab186429 | |
| 抗CD63抗体 | Abcam | ab217345 | |
| 抗TSG101抗体 | Abcam | ab125011 | |
| 抗GRP94抗体 | Abcam | ab32568 | |
| 抗Calnexin抗体 | Abcam | ab22595 | |
| 抗TAB2抗体 | Affinity | DF2368 | |
| 抗TAK1抗体 | Affinity | AF7616 | |
| 抗p-TAK1抗体 | Affinity | AF3019 | |
| 抗IKKβ抗体 | Abcam | ab32135 | |
| 抗p-IKKβ抗体 | Affinity | AF3010 | |
| 抗IκBα抗体 | Affinity | AF5002 | |
| 抗p-IκBα抗体 | Affinity | AF2002 | |
| 抗NFκB抗体 | Affinity | AF5006 | |
| 抗LC3抗体 | Abcam | ab192890 | |
| 抗Beclin 1抗体 | Abcam | ab62557 | |
| 抗SQSTM1/p62抗体 | Abcam | ab109012 | |
| 抗β-actin抗体 | Abcam | ab8227 | |
| 抗PCNA抗体 | Abcam | ab18197 | |
| HRP标记的山羊抗兔IgG | Abcam | ab6721 | |
| 抗IBA-1抗体 | Abcam | ab178847 | |
| 抗CD68抗体 | Abcam | ab53444 | |
| 抗NLRP3抗体 | Affinity | DF7438 | |
| 抗iNOS抗体 | Abcam | ab178945 | |
| 抗ARG-1抗体 | Affinity | DF6657 | |
| 免疫荧光 | TUNEL检测试剂盒 | Beyotime | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型 | 雄性C57BL/6J小鼠,7-8周龄;LPS剂量500 μg/kg腹腔注射,隔天一次,共7次;EVs剂量4×10^10颗粒尾静脉注射,每周3次,共2周;分组:Control、LPS、LPS+miR-NCKD-EVs、LPS+miR-672-5pKD-EVs。 阅读提示:Materials and methods: Animals and treatment |
| 细胞培养 | 原代小胶质细胞来源(C57BL/6J小鼠,1-2天);培养条件(DMEM/F12,10% FBS,37°C,5% CO2);分离方法(轻柔震荡30分钟)。 阅读提示:Materials and methods: Cells culture and treatment |
| EVs分离与纯化 | 超速离心(100,000 × g, 90 min);蔗糖梯度离心(200,000 × g, 16 h);EVs鉴定(NTA粒径50-150 nm,表达CD63、syntenin,缺乏Calnexin)。 阅读提示:Materials and methods: EVs isolation and purification |
| 炎症诱导 | LPS处理浓度和处理时间:文中未明确说明。 阅读提示:Results: CEC-EVs contains anti-inflammatory actions |
| EVs摄取实验 | Transwell共培养:CECs(上室)与小胶质细胞(下室),膜孔径0.4 μm;PKH26/PKH67标记;LPS处理浓度和时间未明确。 阅读提示:Results: Inflammatory activation had no effect on EVs release...; Materials and methods: Transwell assay |
| miRNA敲低 | miR-672-5p敲低CECs(miR-672-5pKD-CECs);转染试剂:Lipofectamine RNAiMAX;敲低效率验证(qRT-PCR)。 阅读提示:Materials and methods: Transfection; Results: miR-672-5p is transferred... |
| 分子检测 | Western blot抗体及稀释度:文中未明确说明;双荧光素酶报告实验(pmirGLO-TAB2-WT/Mut);Co-IP(anti-TAB2或anti-MYC)。 阅读提示:Materials and methods: Western blot; Co-immunoprecipitation |
| 自噬检测 | 自噬流检测(mRFP-GFP-LC3腺病毒);氯喹(CQ)处理浓度:文中未明确说明;LC3-II、Beclin1、p62表达。 阅读提示:Results: CEC-EVs-derived miR-672-5p promoted autophagy... |
| 行为学测试 | MWM:6天(前5天导航,第6天探索);EPM:5分钟探索;SPT:1%蔗糖偏好;FST:6分钟,记录最后5分钟不动时间。 阅读提示:Materials and methods: Behavioral tests |
| 数据分析 | 统计方法:非配对t检验或单因素方差分析;重复数(n=3或n=6或n=12);数据表示:均值±SD;显著性:p<0.05。 阅读提示:Materials and methods: Statistical analysis |