脐带间充质干细胞通过激活AKT/mTOR通路改善奥硝唑诱导的大鼠弱精子症

Umbilical Cord-Derived Mesenchymal Stem Cells Improve Ornidazole-Induced Asthenozoospermia in Rats via Activation of the AKT/mTOR Pathway.

作者信息GaoBo Huang, Li Quan, Qi Li, Xiao Zhou, Mei Han, Fang Peng, YanFei Gong
PMID39564353
发布时间2024-11-12
DOI10.1155/2024/3494652

实验完整度

包含动物模型、细胞治疗、自噬激活剂和AKT抑制剂干预等多层级验证,涵盖精子质量、组织病理、凋亡、自噬和信号通路蛋白检测。

主要模型

奥硝唑诱导的弱精子症大鼠模型(SD大鼠) UC-MSCs(脐带间充质干细胞)

重点核对

模型建立:ORN(400 mg/kg)口服灌胃14天 分组处理:Con、ORN、ORN+UC-MSCs、ORN+LEV、ORN+UC-MSCs+rapamycin、ORN+UC-MSCs+MK-2206,每组6只 UC-MSCs处理:双侧睾丸局部注射3×10^4细胞/侧,重悬于20 μL PBS 自噬激活剂:雷帕霉素5 mg/kg腹腔注射,每日一次,持续4周 AKT抑制剂:MK-2206 100 mg/kg灌胃,每周3次,持续4周

摘要

目的:间充质干细胞(MSCs)已被高度证实其在治疗不同疾病中的关键作用。本研究聚焦于脐带间充质干细胞(UC-MSCs)通过AKT/mTOR通路治疗奥硝唑(ORN)诱导的大鼠弱精子症(AS)的机制。方法:在ORN诱导的大鼠中建立AS动物模型,随后给予UC-MSCs和雷帕霉素(自噬激活剂)或MK-2206(AKT抑制剂)治疗。通过自动精子分析仪测量大鼠精子活力、浓度和存活率。采用苏木精-伊红(HE)染色观察大鼠睾丸组织的病理损伤。利用末端脱氧核苷酸转移酶dUTP缺口末端标记(TUNEL)检测评估睾丸细胞的凋亡率。通过Western blot分析测定凋亡相关蛋白、自噬相关蛋白以及AKT、p-AKT、mTOR和p-mTOR的表达。通过免疫组织化学(IHC)检测睾丸组织中LC3阳性细胞率。结果:在ORN诱导的AS大鼠中,精子活力、浓度和存活率以及间质细胞和生精细胞数量显著降低,生精小管间隙、凋亡率、cleaved caspase-3、LC3II/I、Beclin-1和LC3阳性细胞率升高,Bcl2下调。UC-MSCs可通过抑制过度自噬改善AS大鼠的精子质量和睾丸损伤。此外,UC-MSCs可激活AKT/mTOR通路。并且,抑制AKT/mTOR通路部分逆转了UC-MSCs对ORN诱导的AS大鼠的治疗效果。结论:UC-MSCs通过AKT/mTOR通路抑制自噬并改善AS大鼠精子质量,为AS治疗提供了新思路。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
UC-MSCs是否通过AKT/mTOR通路抑制过度自噬从而改善ORN诱导的弱精子症大鼠的精子质量和睾丸损伤?
核心机制
UC-MSCs通过激活AKT/mTOR信号通路抑制睾丸组织中的过度自噬,从而改善精子质量。
主要证据
ORN诱导的大鼠出现精子质量下降、睾丸损伤和自噬上调;UC-MSCs治疗显著改善上述指标并激活AKT/mTOR通路;使用自噬激活剂雷帕霉素或AKT抑制剂MK-2206可部分逆转UC-MSCs的效果,验证了机制。
研究意义
本文为UC-MSCs治疗弱精子症提供了理论依据和新思路,但需要进一步研究以证实其临床转化价值。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

建立弱精子症大鼠模型

通过ORN诱导建立弱精子症动物模型,为评估UC-MSCs治疗作用提供基础。

雄性SD大鼠通过口服灌胃ORN(400 mg/kg溶于1% CMC-Na)每日一次,持续14天,建立AS模型。

2

UC-MSCs治疗与分组干预

评估UC-MSCs治疗对ORN诱导AS大鼠的治疗效果,并验证AKT/mTOR通路和自噬的作用。

AS大鼠分为不同组,分别接受UC-MSCs局部注射、LEV阳性对照、自噬激活剂rapamycin或AKT抑制剂MK-2206处理。

3

精子质量检测

评估各组大鼠精子质量的变化。

使用自动精子分析仪检测精子活力、浓度和存活率。

4

睾丸组织病理学分析

评估UC-MSCs对ORN诱导睾丸损伤的改善作用。

通过HE染色观察睾丸组织病理变化,包括生精小管间隙、间质细胞和生精细胞数量。

5

细胞凋亡和自噬检测

评估UC-MSCs对睾丸细胞凋亡和自噬的影响。

通过TUNEL检测凋亡率,通过IHC检测LC3阳性细胞率,通过Western blot检测凋亡和自噬相关蛋白表达。

6

信号通路验证

验证UC-MSCs通过AKT/mTOR通路发挥作用的机制。

通过Western blot检测AKT、p-AKT、mTOR、p-mTOR水平,并使用MK-2206抑制AKT/mTOR通路观察治疗效果的逆转。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
脐带间充质干细胞ATCCPCS-500-010
人间充质干细胞无血清培养基PricellaCM-SC01
奥硝唑分散片China Meheco Topfond Pharma Co., Ltd.H20040375
羧甲基纤维素钠Millipore, Sigma--
左卡尼汀口服液Northeast Pharmaceutical Group Shenyang First Pharmaceutical Co., Ltd.H19990372
雷帕霉素MedChemExpressHY-10219
MK-2206MedChemExpressHY-108232
自动精子分析仪Qisheng (Shanghai) Medical Instrument Co., Ltd.WLJY-9000
HE染色试剂盒Solarbio--
TUNEL凋亡检测试剂盒BeyotimeC1098
LC3抗体Abcamab48394
山羊抗兔IgG H&L (HRP)Abcamab6721
RIPA裂解缓冲液Beyotime--
蛋白酶抑制剂RocheComplete Mini
BCA检测试剂盒Beyotime--
PVDF膜Millipore--
化学发光试剂盒Life Technology--
Bcl2抗体Abcamab196495
Cleaved caspase-3抗体GeneTexGTX86952
LC3抗体Abcamab192890
Beclin-1抗体Abcamab207612
p-AKT抗体Abcamab38449
AKT抗体Abcamab8805
p-mTOR抗体AbcamGTX132803
mTOR抗体Abcamab32028
β-肌动蛋白抗体Abcamab8227
山羊抗兔IgG H&L (HRP)Abcamab6721

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
动物模型建立
ORN剂量、给药途径、给药频率、持续时间、大鼠品系、体重范围
阅读提示:Methods: 2.5 Animal Model Establishment
细胞培养与注射
UC-MSCs来源、培养条件、代数、注射剂量、注射体积、注射方式、细胞悬浮液
阅读提示:Methods: 2.3 Cell Culture, 2.6 Animal Treatment
药物干预
LEV剂量、给药途径、频率;rapamycin剂量、给药途径、频率;MK-2206剂量、给药途径、频率
阅读提示:Methods: 2.6 Animal Treatment
精子质量检测
附睾孵育条件、检测仪器、参数定义
阅读提示:Methods: 2.7 Sperm Quality Measurement
组织病理与免疫组化
固定液浓度、切片厚度、抗体稀释度、孵育条件、图像分析软件
阅读提示:Methods: 2.8 HE Staining, 2.10 IHC
蛋白检测
蛋白提取方法、抗体信息、内参选择、显影方法
阅读提示:Methods: 2.11 Western Blot Analysis
统计分析方法
样本量、统计方法、多重比较校正方法、p值阈值
阅读提示:Methods: 2.12 Statistical Analysis