网络药理学和体外实验研究芍药苷通过RAS/MAPK信号通路抗胃癌的作用

Network pharmacology and in vitro experiments to investigate the anti-gastric cancer effects of paeoniflorin through the RAS/MAPK signaling pathway.

作者信息Yating Yang, Ling Yuan, Yuhua Du, Mengyi Ye, Doudou Lu, Shicong Huang, Jianjun Zhao, Joanna Japhet Tibenda, Fandi Meng, Yi Nan
PMID39548020
发布时间2024-11-15
DOI10.1007/s12672-024-01532-w

实验完整度

研究包含网络药理学预测及体外细胞实验验证,涉及CCK-8、克隆形成、划痕、Transwell、qRT-PCR和Western blot,但缺乏动物及患者样本验证,实验完整性中等。

主要模型

胃癌细胞系AGS 胃癌细胞系HGC-27 正常胃黏膜细胞系GES-1

重点核对

PF对AGS和HGC-27的给药浓度:AGS低、中、高剂量分别为100、150、200 μmol/L,HGC-27为75、125、175 μmol/L,处理时间为24小时,对照为DMSO溶剂对照。 细胞活力检测采用CCK-8法,每组设置5个复孔,数据以均数±标准差表示,n=6(图注中n=6)。 mRNA和蛋白表达检测:qRT-PCR检测8个核心基因(MMP9、IGF1、MMP2、PPARG、NQO1、HSD11B1、PLAU、CTSB),Western blot检测RAS、ERK1/2和p-ERK1/2蛋白水平。 细胞培养条件:AGS培养于DME/F-12培养基,HGC-27培养于RPMI-1640培养基,均添加胎牛血清和抗生素。 用于网络药理学分析的GEO数据集为GSE118916,包含15个胃癌样本和15个正常胃组织样本。

摘要

本研究旨在探讨芍药苷(PF)治疗胃癌(GC)的关键靶点和信号通路。首先,通过分析GSE118916基因芯片获得胃癌的差异表达基因(DEGs),然后发现芍药苷的活性成分及其作用靶点。并对两者的交集基因进行靶点和通路分析。此外,通过CCK-8检测PF干预后的细胞活力。采用克隆形成实验、划痕实验、Transwell实验检测细胞迁移和侵袭。采用qRT-PCR和Western blot方法验证作用机制。结果显示,共获得286个芍药苷靶点和1799个DEGs。其次,我们发现芍药苷可通过RAS/MAPK信号通路治疗胃癌。此外,通过体外细胞实验,我们还发现芍药苷对胃癌有明显的治疗作用。因此,我们认为PF抑制胃癌的增殖和转移,其作用可能是通过调节RAS/MAPK信号通路来实现的。PF是一种有前景的治疗胃癌的药物。结合体外实验,我们发现PF的治疗作用与RAS/MAPK信号通路的调节有关,本研究结果初步揭示了其复杂机制,将为未来的临床治疗奠定基础。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
芍药苷治疗胃癌的关键靶点和信号通路是什么,其抗胃癌作用是否通过调控RAS/MAPK信号通路实现?
核心机制
芍药苷通过抑制RAS/MAPK信号通路(降低RAS和p-ERK1/2蛋白表达)来抑制胃癌细胞的增殖和转移。
主要证据
网络药理学分析鉴定出57个交集基因,核心靶点包括MMP9、IGF1、MMP2等,分子对接显示PF与核心靶点结合良好。体外实验中,CCK-8、克隆形成、划痕和Transwell实验显示PF抑制AGS和HGC-27细胞的增殖、迁移和侵袭;qRT-PCR显示PF降低MMP9、IGF1、MMP2等mRNA表达,升高PPARG和NQO1;Western blot显示PF降低RAS和p-ERK1/2蛋白水平。
研究意义
PF是一种有前景的治疗胃癌的药物,其治疗作用与调节RAS/MAPK信号通路相关,该结果初步揭示了其复杂机制,为未来临床治疗奠定基础。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

网络药理学分析

预测芍药苷抗胃癌的潜在靶点和信号通路。

从GEO数据库获取胃癌基因芯片GSE118916数据,分析获得1799个胃癌差异表达基因。从PubChem获取PF结构,利用PharmMapper预测PF靶点,共得到286个靶点。将PF靶点与胃癌DEGs取交集,获得57个交集基因。对交集基因进行PPI网络、GO和KEGG富集分析,确定核心靶点和主要信号通路。

2

体外细胞活力检测

评估PF对胃癌细胞和正常胃黏膜细胞活力的影响。

用不同浓度PF处理AGS、HGC-27和GES-1细胞,通过CCK-8法检测细胞活力,计算IC50并确定后续实验用药浓度。

3

增殖能力检测

验证PF对胃癌细胞克隆形成能力的影响。

将500个细胞接种于6孔板,贴壁后用不同浓度PF处理7-14天,固定染色后观察克隆形成情况并计数。

4

迁移和侵袭能力检测

验证PF对胃癌细胞迁移和侵袭能力的影响。

采用细胞划痕实验检测水平迁移能力,Transwell实验检测垂直迁移和侵袭能力(侵袭实验需包被Matrigel基质胶)。

5

分子表达验证

验证PF对核心基因mRNA和RAS/MAPK通路蛋白表达的影响。

PF处理胃癌细胞24 h后,收集细胞提取RNA和总蛋白。qRT-PCR检测8个核心基因的mRNA表达,Western blot检测RAS、ERK1/2和p-ERK1/2蛋白表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
DMEM培养基Gibco8122030
RPMI-1640培养基Gibco8122261
DME/F-12培养基CytivaSH30023.01
胎牛血清GEMINI900-103
Cell Counting Kit-8试剂盒DojindoCK04
Transwell小室Corning3422
Matrigel基质胶BiozellenB-P-00002-10
逆转录试剂盒TIANGENKR118-02
实时荧光定量PCR试剂盒TIANGENFP205-02
细胞总蛋白提取试剂盒KeyGEN Bio TECHKGP2100
BCA蛋白浓度检测试剂盒KeyGEN Bio TECHKGP902
RAS抗体Cell Signaling Technology3965
p44/42 MAPK (Erk1/2)抗体Cell Signaling Technology4695
磷酸化p44/42 MAPK (Erk1/2)抗体Cell Signaling Technology9101
β-微管蛋白抗体TDY BiotechTDY043F
芍药苷MedChemExpressHY-N0293/CS-2497
GES-1细胞FuHeng BiologyFH0273
AGS细胞GenechemGCC-ST0003RT
HGC-27细胞Procell Life Science & TechnologyCL-0107
GEO2R----
Cytoscape 3.9.1----
OpenBabel 2.4.1----
PyMOL----
AutoDock Tools----
GraphPad Prism 8----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
网络药理学分析
GEO数据集GSE118916的样本组成(15个胃癌和15个正常),差异基因筛选阈值|LogFC|>1且p<0.05,PharmMapper预测参数(默认),PPI网络构建参数(STRING数据库,Cytoscape的CytoHubba插件),GO和KEGG分析的物种为Homo sapiens,p<0.05。
阅读提示:见Methods部分Network pharmacology analysis小节,以及Fig 2-4图注。
细胞培养
细胞系来源和培养条件:AGS(DME/F-12培养基)、HGC-27(RPMI-1640培养基)、GES-1(DMEM培养基),均添加胎牛血清和抗生素。培养环境(温度、CO2浓度)文中未明确说明。
阅读提示:见Methods部分Cell culture小节。
药物处理
PF纯度(HPLC≥98.38%),溶剂DMSO浓度(最终<0.1%),处理浓度:AGS为100、150、200 μmol/L,HGC-27为75、125、175 μmol/L,处理时间24小时。
阅读提示:见Methods部分Experimental drug preparation和Results部分PF inhibits the viability of GC cells。
细胞功能实验
CCK-8实验接种细胞数和处理时间(文中未明确细胞数,但提到96孔板),克隆形成实验接种500个细胞/孔,处理7-14天,划痕实验细胞密度90%以上,Transwell实验迁移和侵袭培养时间24小时。
阅读提示:见Methods部分CCK-8 assay、Clone formation assay、Wound scratch assay、Transwell assay,及对应图注(Fig 6,7,8)。
分子表达检测
qRT-PCR内参基因GAPDH,检测8个核心基因;Western blot检测RAS、p-ERK1/2、ERK1/2,内参β-Tubulin。细胞处理时间24小时。
阅读提示:见Methods部分qRT-PCR和Western blot,以及Table 2引物信息。