hUC-MSCs的培养与鉴定
验证hUC-MSCs的形态和表面标志物。
采用组织外植法分离hUC-MSCs,培养至第3-5代,通过倒置显微镜观察形态,流式细胞术检测表面标志物CD29、CD44、CD90阳性,CD43、CD14、HLA-DR阴性。
Human umbilical cord mesenchymal stem cell-derived extracellular vesicles harboring IGF-1 improve ovarian function of mice with premature ovarian insufficiency through the Nrf2/HO-1 pathway.
包含CTX诱导的POI小鼠模型和颗粒细胞体外模型,体外实验通过sh-IGF-1和ML385进行功能与机制验证,并检测氧化应激、自噬、Nrf2核转位等指标。
CTX诱导的POI小鼠模型 小鼠卵巢颗粒细胞
hUC-MSCs-EVs的IGF-1敲低(sh-IGF-1)效果 hUC-MSCs-EVs给药剂量(1×10^8/mL,0.2 mL,隔天一次,持续6周) CTX诱导POI小鼠模型的剂量(120 mg/kg,每周一次,连续2周) Nrf2抑制剂ML385的使用浓度(10 μM)和预处理时间(2 h) 小鼠卵巢颗粒细胞CTX处理浓度(30 μM)和时间(24 h)
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
验证hUC-MSCs的形态和表面标志物。
采用组织外植法分离hUC-MSCs,培养至第3-5代,通过倒置显微镜观察形态,流式细胞术检测表面标志物CD29、CD44、CD90阳性,CD43、CD14、HLA-DR阴性。
确认hUC-MSCs-EVs的成功分离和特性。
通过超速离心和总外泌体分离试剂提取EVs,透射电镜观察形态,纳米颗粒跟踪分析粒径和浓度,Western blot检测表面标志物CD9、CD63、CD81,并确认Calnexin阴性。
评估hUC-MSCs-EVs对CTX诱导的POI小鼠卵巢功能的影响。
通过腹腔注射CTX建立POI小鼠模型,尾静脉注射hUC-MSCs-EVs或PBS,连续6周,之后通过HE染色、ELISA和免疫组化评估卵巢形态、性激素水平和IGF-1表达。
验证hUC-MSCs-EVs携带IGF-1对CTX损伤颗粒细胞的保护作用。
小鼠颗粒细胞用CTX处理,然后用hUC-MSCs-EVs或对照处理,检测IGF-1表达、细胞增殖、死亡及氧化应激指标。
探究hUC-MSCs-EVs是否通过激活Nrf2/HO-1信号抑制自噬。
Western blot检测Nrf2核/质和HO-1蛋白水平,免疫荧光检测Nrf2核转位,同时检测氧化应激和自噬标志物。使用Nrf2抑制剂ML385处理颗粒细胞以验证通路的作用。
在体内验证hUC-MSCs-EVs通过IGF-1/Nrf2/HO-1通路改善POI小鼠卵巢功能。
比较注射EVs-sh-NC和EVs-sh-IGF-1的POI小鼠,检测卵巢组织学、性激素、Nrf2/HO-1表达、氧化应激和自噬指标。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | 0.25%胰蛋白酶 | Pricella | -- |
| EV分离 | 总外泌体分离试剂 | Thermo Fisher Scientific | -- |
| GW4869 | Sigma Aldrich | -- | |
| EV处理 | 蛋白酶K | Beyotime | -- |
| Triton-X-100 | Sigma Aldrich | -- | |
| 细胞培养 | DMEM培养基 | -- | -- |
| 动物实验 | 环磷酰胺 | -- | -- |
| ELISA | 雌二醇ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-OSEL-M0008 |
| 促卵泡激素ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-EL-M0511 | |
| 促黄体生成素ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-EL-M3053 | |
| 抗缪勒管激素ELISA试剂盒 | Elabscience Biotechnology | E-EL-M3015 | |
| 免疫组化 | 抗IGF-1抗体 | Abcam | ab223567 |
| 抗FSHR抗体 | Abcam | ab113421 | |
| 抗LC3抗体 | Abcam | ab192890 | |
| 抗Beclin-1抗体 | Abcam | ab62557 | |
| 山羊抗兔IgG H&L (HRP) | Abcam | ab6721 | |
| 细胞培养 | ML385 | MedChemExpress | -- |
| RT-qPCR | TRIzol试剂 | Invitrogen | -- |
| PrimeScript逆转录试剂盒 | Takara | -- | |
| SYBR Premix Ex Taq II | Takara | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | Beyotime | -- |
| 核浆蛋白提取试剂盒 | Beyotime | -- | |
| 抗CD9抗体 | Abcam | ab236630 | |
| 抗CD63抗体 | Abcam | ab134045 | |
| 抗CD81抗体 | Abcam | ab109201 | |
| 抗Calnexin抗体 | Abcam | ab22595 | |
| 抗Nrf2抗体 | GeneTex | GTX103322 | |
| 抗HO-1抗体 | GeneTex | GTX101147 | |
| 抗β-actin抗体 | Abcam | ab8227 | |
| 抗Lamin B1抗体 | GeneTex | GTX103292 | |
| ECL工作液 | EMD Millipore | -- | |
| 氧化应激检测 | 活性氧检测试剂盒 | -- | S0033M |
| 谷胱甘肽检测试剂盒 | -- | S0052 | |
| 丙二醛检测试剂盒 | -- | S0131 | |
| 细胞死亡检测 | 乳酸脱氢酶检测试剂盒 | Beyotime | -- |
| 免疫荧光 | PKH26红色荧光染料 | MedChemExpress | -- |
| DAPI | Beyotime | -- | |
| 山羊抗兔IgG H&L (Alexa Fluor 488) | Abcam | ab150077 | |
| 细胞增殖 | CCK-8试剂盒 | Beyotime | -- |
| 倒置显微镜、TEM | Olympus倒置显微镜 | Olympus | -- |
| 流式细胞术 | 流式细胞仪 | BD Biosciences | -- |
| ELISA读板 | 酶标仪 | Bio-Rad | 680 |
| 荧光显微镜 | 共聚焦荧光显微镜 | Carl Zeiss | -- |
| 光学显微镜 | Olympus光学显微镜 | Olympus | -- |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 动物模型建立 | CTX剂量、给药方式、给药频率和持续时间;小鼠品系、周龄、性别 阅读提示:Methods: Animals, Animal groups and treatment |
| EVs给药 | EVs来源、剂量(1×10^8/mL)、体积(0.2 mL)、给药途径(尾静脉)、频率(隔天一次)和持续时间(6周) 阅读提示:Methods: Animal groups and treatment |
| 颗粒细胞处理 | 颗粒细胞类型和来源;CTX浓度(30 µM)和处理时间(24 h);EVs浓度(30 µg/mL)和处理时间(24 h);ML385浓度(10 µM)和预处理时间(2 h) 阅读提示:Methods: In-vitro cell culture, Treatment and groups of mouse GCs |
| EVs的分离和鉴定 | EVs分离方法(超速离心和总外泌体分离试剂);离心条件(2000×g 30分钟,10,000×g 4°C 1小时);EVs表征(TEM、NTA、Western blot) 阅读提示:Methods: hUC-MSC-EVs isolation and identification |
| 卵巢功能评估 | 性激素检测指标(E2、FSH、LH、AMH);卵泡计数方法(每12片取1片,连续切片);组织学染色方法 阅读提示:Methods: ELISA, H&E staining |
| 自噬和氧化应激检测 | 自噬标志物(LC3II/I、Beclin-1);氧化应激指标(ROS、MDA、GSH);检测方法(Western blot、试剂盒) 阅读提示:Methods: Western blot, Oxidative stress-related indicators |