TFE3-SLC36A1轴促进肾癌细胞对葡萄糖饥饿的抵抗

TFE3-SLC36A1 axis promotes resistance to glucose starvation in kidney cancer cells.

作者信息Suli Lv, Zongbiao Zhang, Zhenyong Li, Qian Ke, Xianyun Ma, Neng Li, Xuefeng Zhao, Qingli Zou, Lidong Sun, Tanjing Song
PMID38599381
发布时间2024-05
DOI10.1016/j.jbc.2024.107270

实验完整度

该研究包含体外细胞实验(葡萄糖饥饿、药物处理、基因敲低/敲除)、分子机制验证(O-GlcNAc糖基化、ChIP-Seq/RNA-Seq、回补实验)以及体内异种移植瘤模型。

主要模型

肾癌细胞系ACHN、Caki-1 人胚肾HEK-293T细胞 免疫缺陷小鼠异种移植瘤模型 配对肾癌患者组织样本

重点核对

葡萄糖饥饿浓度:ACHN为1 mM,Caki-1为2 mM,培养时间6天(增殖)或12-24小时(蛋白水平)。 TFE3敲低程度:使用shRNA将TFE3敲低至约50%(用于饥饿敏感性实验)或<20%(用于SLC36A1表达实验)。 GLUT1抑制剂BAY-876浓度:1 μM,处理时间24小时(蛋白水平)或6天(增殖)。 细胞计数实验中每组包含4个生物学重复,RT-qPCR每组至少3个技术重复,统计采用Welch's t检验或ANOVA。 异种移植实验接种1×10^6个ACHN细胞至裸鼠(Nu/Nu,4周龄,雄性)侧腹,每周测量肿瘤大小,约5周后处死。

摘要

对包括葡萄糖在内的营养物质的高需求是癌症的特征。“饥饿疗法”一直被用来抑制肿瘤进展。一种引人注目的方案是抑制癌细胞中的葡萄糖转运蛋白GLUT1。此外,在癌症进展过程中,癌细胞可能遭受葡萄糖供应不足。然而,癌细胞能以某种方式耐受葡萄糖饥饿。揭示其潜在机制将有助于理解癌症进展并有益于癌症治疗。TFE3是一种已知能激活自噬基因的转录因子。生理状态下TFE3的活性受磷酸化触发的核转位调控,以响应营养状态。我们最近报道,即使在营养充足条件下,TFE3也组成性定位于细胞核并促进肾癌细胞增殖。目前尚不清楚TFE3是否以及如何响应葡萄糖饥饿。在本研究中,我们通过将细胞暴露于生理相关浓度的葡萄糖,证明TFE3促进肾癌细胞对葡萄糖饥饿的抵抗。我们发现葡萄糖饥饿通过增加TFE3的O-GlcNAc糖基化来触发其蛋白稳定化。此外,通过一项无偏的功能基因组研究,我们确定SLC36A1(一种溶酶体氨基酸转运蛋白)是TFE3的靶基因,其对TFE3蛋白水平敏感。我们发现SLC36A1在肾癌中过表达,其促进mTOR活性和肾癌细胞增殖。重要的是,SLC36A1的水平通过TFE3被葡萄糖饥饿诱导,这增强了细胞对葡萄糖饥饿的抵抗。抑制TFE3或SLC36A1显著增加肾癌细胞对GLUT1抑制剂的敏感性。总之,我们发现了一个功能性的TFE3–SLC36A1轴,它响应葡萄糖饥饿并增强肾癌细胞的饥饿耐受。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
TFE3是否以及如何影响肾癌细胞对葡萄糖饥饿的耐受?并鉴定其下游效应基因。
核心机制
葡萄糖饥饿通过增加TFE3的O-GlcNAc糖基化(主要发生在S560)来稳定TFE3蛋白,TFE3随后转录上调溶酶体氨基酸转运蛋白SLC36A1,进而维持mTOR活性并促进肾癌细胞增殖及饥饿耐受。
主要证据
TFE3敲低(约50%)增强肾癌细胞对葡萄糖饥饿和GLUT1抑制的敏感性;葡萄糖饥饿和GLUT1抑制增加TFE3蛋白稳定性;O-GlcNAc糖基化增强TFE3稳定性,S560A突变消除该效应;ChIP-Seq和RNA-Seq鉴定SLC36A1为TFE3直接靶基因;SLC36A1在肾癌中高表达,敲低或敲除SLC36A1降低mTOR活性并抑制增殖及异种移植肿瘤生长。
研究意义
该研究揭示了TFE3–SLC36A1轴在肾癌细胞适应葡萄糖饥饿中的作用,为肾癌治疗(如联合GLUT1抑制剂)提供潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

评估TFE3在肾癌细胞葡萄糖饥饿耐受中的作用

验证TFE3是否影响肾癌细胞对葡萄糖饥饿和GLUT1抑制的敏感性。

使用慢病毒介导的shRNA将TFE3敲低约50%,在葡萄糖饥饿(ACHN: 1 mM;Caki-1: 2 mM)或GLUT1抑制剂(BAY-876,1 μM)条件下培养细胞,通过细胞计数和集落形成实验检测细胞增殖。

2

检测葡萄糖饥饿对TFE3蛋白稳定性的影响

探究葡萄糖饥饿是否增加TFE3蛋白水平及其稳定性。

对肾癌细胞进行葡萄糖饥饿或GLUT1抑制(shRNA或BAY-876)处理,通过Western blot分析TFE3蛋白水平;使用蛋白质合成抑制剂环己酰亚胺(CHX)追踪TFE3蛋白稳定性。

3

验证TFE3 O-GlcNAc糖基化及其对稳定性的贡献

确定葡萄糖饥饿是否通过O-GlcNAc糖基化稳定TFE3。

使用OGA抑制剂TMG、OGA/OGT敲低改变O-GlcNAc水平;通过共表达TFE3与OGT进行免疫共沉淀(IP-WB)和体外O-GlcNAc糖基化实验验证TFE3的O-GlcNAc糖基化;通过质谱鉴定S560为修饰位点;引入S560A突变检测其对O-GlcNAc水平和蛋白稳定性的影响。

4

鉴定TFE3靶基因SLC36A1

寻找TFE3下游效应基因,特别是与mTOR和溶酶体功能相关的靶点。

对TFE3敲低(~50%)的Caki-1细胞进行RNA-Seq,并用ChIP-Seq(HA-TFE3)鉴定TFE3基因组结合位点;通过ChIP-qPCR、RT-qPCR和Western blot验证SLC36A1作为TFE3直接靶基因,并检测葡萄糖饥饿对SLC36A1表达的影响;通过TCGA数据分析SLC36A1与TFE3的相关性。

5

评估SLC36A1对肾癌细胞增殖和mTOR活性的影响

验证SLC36A1是否在肾癌中发挥促增殖作用并影响mTOR信号。

通过CRISPR-Cas9敲除SLC36A1并过表达SLC36A1,检测细胞增殖和集落形成;在免疫缺陷小鼠中接种SLC36A1-KO细胞进行异种移植实验;通过Western blot检测S6K磷酸化反映mTOR活性。

6

检测SLC36A1对葡萄糖饥饿耐受的作用

验证SLC36A1是否被TFE3诱导并参与饥饿耐受。

使用CRISPR-Cas13d敲低SLC36A1,在葡萄糖饥饿或GLUT1抑制条件下检测细胞增殖;在饥饿条件下评估SLC36A1敲除对mTOR活性的影响。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
McCoy's 5A培养基ProcellPM150710
最低必需培养基ProcellPM150410
DMEM培养基Gibco12800-082
胎牛血清PANST30-3302
无糖McCoy's 5A培养基ProcellPM150718
无糖最低必需培养基ProcellPM150443
无糖DMEM培养基ProcellPM150270
MG132MedChemExpressHY-13259
BAY-876MedChemExpressHY-100017
Thiamet-G (TMG)MedChemExpressHY-12588
嘌呤霉素----
杀稻瘟菌素----
G418MedChemExpressHY-17561
BCA蛋白定量试剂盒BeyotimeP0011
抗TFE3抗体Cell Signaling Technology14779
抗TFEB抗体Cell Signaling Technology4240
抗SLC36A1抗体Proteintech24775-1-AP
抗Myc标签抗体Proteintech16286-1-AP
抗p70 S6K抗体Proteintech14485-1-AP
抗磷酸化S6抗体Cell Signaling Technology2211
抗S6抗体Proteintech80208-1-RR
抗ATG3抗体Cell Signaling Technology3415
抗OGT抗体Cell Signaling Technology24083
抗OGA抗体Proteintech14711-1-AP
抗β-肌动蛋白抗体AbclonalAC026
抗GAPDH抗体AbclonalAC033
抗组蛋白H3抗体Abclonal1791
HRP标记的抗FLAG抗体SigmaA8592
抗O-GlcNAc (CTD110.6)抗体Cell Signaling Technology9875
抗磷酸化p70 S6K (Thr389)抗体Cell Signaling Technology9234
抗Glut1抗体Proteintech66290-1-Ig
HRP标记的抗GST抗体ProteintechHRP-66001
HRP标记的山羊抗兔二抗Jackson ImmunoResearch111-035-003
HRP标记的山羊抗兔轻链特异二抗Jackson ImmunoResearch211-032-171
HRP标记的山羊抗小鼠二抗Jackson ImmunoResearch115-035-003
HRP标记的山羊抗小鼠轻链特异二抗Jackson ImmunoResearch115-035-174
ChemiDoc XRS+凝胶成像系统Bio-Rad--
明胶SigmaG1890
抗HA标签抗体Cell Signaling Technology3724
Alexa Fluor偶联二抗Jackson ImmunoResearch711-585-152
DAPI----
Fluoromount-G封片剂Invitrogen00-4958-02
QImaging Retiga R6单色相机QImaging--
Zeiss Axiovert A1荧光显微镜Zeiss--
结晶紫----
基质胶BD354248
蛋白A/G磁珠MCEHY-K0202
PCR纯化试剂盒Thermo Fisher ScientificK310001
微球菌核酸酶New England BiolabsM0247SVIAL
抗FLAG M2琼脂糖珠GeneScriptL00432-5
蛋白A琼脂糖珠Cell Signaling Technology9863S
UDP-GlcNAcSigmaU4375
TRIzol试剂Invitrogen15596018
逆转录酶ToyoboFSQ-101
SYBR qPCR预混液VazymeQ712-02
CFX connect实时PCR仪Bio-Rad--
pLenti-CRISPR-V2载体Addgene52961
UltiMate 3000 RSLCnano液相色谱Thermo Fisher Scientific--
timeTOF Pro质谱仪Bruker--
Illumina测序文库构建试剂盒New England BiolabsE7103
NGS3KPerkinElmer--
NovaSeq 6000测序平台Illumina--
MGISEQ-2000RS测序平台BGI--
血糖仪SinocareGA-3
MaxQuant----
FIJI----
GraphPad 8.0----
R----

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养
细胞系来源、培养基配方、血清浓度、传代条件、培养温度与CO2浓度;药物剂量与时间;抗生素选择浓度。
阅读提示:Methods: Cell culture
葡萄糖饥饿
葡萄糖浓度(ACHN: 1 mM;Caki-1: 2 mM)、饥饿处理时间、培养基类型。
阅读提示:Methods: Glucose starvation
TFE3敲低
shRNA序列、敲低效率(约50%或<20%)、慢病毒载体、感染和筛选条件。
阅读提示:Figure legends (Fig. 1A) 和 Methods(基因敲低)
Western blot
抗体信息(品牌、货号、稀释度)、蛋白上样量(β-actin 20 μg,其他50 μg)、封闭条件、显色方法。
阅读提示:Methods: Western blot
免疫沉淀体外O-GlcNAc分析
IP抗体、缓冲液、清洗条件、体外反应体系(UDP-GlcNAc浓度、反应时间、温度)。
阅读提示:Methods: Immunoprecipitation, In vitro O-GlcNAcylation
SLC36A1敲除/敲低
CRISPR-Cas9 sgRNA序列、Cas13d sgRNA序列、敲除/敲低效率、载体和筛选条件。
阅读提示:Methods: Gene KO with CRISPR-Cas9 and KD with CRISPR-Cas13d,表S1
异种移植实验
小鼠品系(Nu/Nu,4周龄,雄性)、接种细胞数(1×10^6)、基质胶比例、肿瘤测量时间与体积计算公式。
阅读提示:Methods: Xenograft study
ChIP和qPCR
固定条件、染色质片段化、抗体、洗涤缓冲液、qPCR引物、数据分析方法。
阅读提示:Methods: Chromatin immunoprecipitation and sequential ChIP
RNA-Seq和ChIP-Seq
细胞处理(TFE3敲低)、建库试剂盒、测序平台(Illumina NovaSeq 6000, MGISEQ-2000RS)、数据分析参数。
阅读提示:Methods: Chromatin immunoprecipitation-Sequencing, RNA-Sequencing, Analysis of ChIP-Seq/Analysis of RNA-Seq