转录组数据分析与差异基因筛选
利用GEO数据集筛选CRC中差异表达基因,并识别与CRC相关的转录因子。
分析GSE143939、GSE142279、GSE196006、GSE200427中CRC与癌旁组织的转录组差异表达,与Human TFDB转录因子列表取交集,获得14个差异转录因子,并进行KEGG富集分析。
FEV-mediated WNT2 transcription is involved in the progression of colorectal cancer via the Wnt signaling.
包含患者组织样本检测、体外细胞功能实验(增殖、迁移、侵袭、凋亡)、分子机制实验(ChIP、双荧光素酶、Western blot)和体内异种移植瘤模型,具有多层级功能与机制验证。
人结直肠癌细胞系SW620 人结直肠癌细胞系HCT116 BALB/c裸鼠皮下异种移植瘤模型 32对结直肠癌患者肿瘤及癌旁组织
细胞系SW620和HCT116的培养条件(培养基、血清浓度、抗生素) 慢病毒过表达FEV或WNT2的转导时间(2天)和筛选浓度(2 µg/mL嘌呤霉素) 体内实验中每组6只BALB/c裸鼠,皮下注射2×10^6 HCT116细胞,观察28天 ChIP-qPCR中使用抗FEV抗体(1 µg/mL)和IgG同型对照 双荧光素酶报告实验中野生型和突变型WNT2启动子片段的构建
提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。
按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。
利用GEO数据集筛选CRC中差异表达基因,并识别与CRC相关的转录因子。
分析GSE143939、GSE142279、GSE196006、GSE200427中CRC与癌旁组织的转录组差异表达,与Human TFDB转录因子列表取交集,获得14个差异转录因子,并进行KEGG富集分析。
验证CRC肿瘤组织中FEV表达是否下调。
收集32对CRC肿瘤和癌旁组织,通过RT-qPCR检测FEV mRNA表达。
探究FEV过表达对CRC细胞恶性表型的影响。
在SW620和HCT116细胞中慢病毒介导FEV过表达,并通过集落形成、EdU、CCK-8、Transwell、划痕愈合、流式细胞术和TUNEL实验检测细胞增殖、迁移、侵袭和凋亡。
验证FEV是否直接结合WNT2启动子并抑制其转录。
通过Jaspar预测FEV结合位点,ChIP-qPCR验证FEV与WNT2启动子结合,双荧光素酶报告基因实验验证转录抑制,RT-qPCR和Western blot检测WNT2及β-catenin表达。
验证WNT2过表达是否能逆转FEV过表达对CRC细胞恶性表型的抑制作用。
在FEV过表达的SW620和HCT116细胞中进一步过表达WNT2,通过RT-qPCR和Western blot验证表达,并检测细胞侵袭、迁移、增殖和凋亡。
验证FEV过表达对CRC肿瘤生长的影响,以及WNT2过表达是否能逆转此效应。
将稳定过表达FEV、WNT2或对照的HCT116细胞皮下注射至裸鼠,定期测量肿瘤体积,28天后称重并收集肿瘤组织进行免疫组化检测FEV、WNT2和β-catenin表达。
按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。
| 实验环节 | 名称 | 品牌 | 货号 |
|---|---|---|---|
| 细胞培养 | RPMI-1640培养基 | 上海生工 | E600028 |
| 高糖DMEM培养基 | Procell | PM150210 | |
| 胎牛血清 | -- | -- | |
| 青霉素 | -- | -- | |
| 链霉素 | -- | -- | |
| 嘌呤霉素 | Thermo Fisher Scientific | A1113803 | |
| 慢病毒 | VectorBuilder | -- | |
| 细胞增殖检测 | BeyoClick EdU-594细胞增殖检测试剂盒 | Beyotime | C0078S |
| Hoechst 33342 | -- | -- | |
| CCK-8试剂盒 | Beyotime | C0037 | |
| 细胞凋亡检测 | Annexin V-PE/7-AAD凋亡检测试剂盒 | Solarbio | CA1030 |
| TUNEL凋亡检测试剂盒 | MedChemExpress | HY-K1078 | |
| 分子机制 | BeyoChIP酶法ChIP试剂盒 | Beyotime | P2083S |
| 抗FEV抗体 | GeneTex | GTX35035 | |
| pGL3-Basic荧光素酶质粒 | Promega | E1751 | |
| 双荧光素酶检测试剂盒 | Solarbio | D0011 | |
| RNA提取和RT-qPCR | TRIzol试剂盒 | Solarbio | 15596026 |
| 逆转录 | PrimeScript RT预混液 | Takara | RR036Q |
| RT-qPCR | PowerTrack SYBR Green预混液 | Thermo Fisher Scientific | A46110 |
| LightCycler 480 II 系统 | Roche | -- | |
| Western blot | RIPA裂解液 | -- | -- |
| BCA蛋白定量试剂盒 | Sigma-Aldrich | 71285-3 | |
| PVDF膜 | -- | -- | |
| 抗FEV抗体 | Abcam | ab308220 | |
| 抗WNT2抗体 | Thermo Fisher Scientific | PA5-96453 | |
| 抗β-catenin抗体 | GeneTex | GTX637403 | |
| 抗β-actin抗体 | Abcam | ab8226 | |
| 山羊抗兔IgG H&L(HRP) | Abcam | ab6721 | |
| ECL发光试剂 | 生工 | C500044 | |
| 动物实验 | BALB/c裸鼠 | Vital River | -- |
| 免疫组化 | 抗FEV抗体 | Thermo Fisher | PA5-98805 |
| 抗β-catenin抗体 | Abcam | ab32572 | |
| 抗WNT2抗体 | Abcam | ab150608 |
汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。
| 环节 | 核对要点 |
|---|---|
| 临床样本分析 | 样本类型:32对结直肠癌肿瘤及癌旁组织;检测方法:RT-qPCR;内参:β-actin;统计:配对t检验 阅读提示:材料与方法:组织样本 |
| 细胞培养 | 细胞系:SW620(高糖DMEM)、HCT116(RPMI-1640);血清:10% FBS;抗生素:100 μg/mL青霉素、100 U/mL链霉素;培养条件:37°C、5% CO2 阅读提示:材料与方法:细胞培养 |
| 慢病毒感染与筛选 | 慢病毒载体:EF1A启动子;感染时间:2天;筛选浓度:2 µg/mL嘌呤霉素;验证方法:RT-qPCR和Western blot 阅读提示:材料与方法:慢病毒载体和细胞转染 |
| 体外功能实验 | 集落形成:5×10^2细胞/孔,培养2周;EdU:20 µM处理2小时;CCK-8:2000细胞/孔,检测0-96小时;侵袭:4×10^4细胞/孔,24小时;迁移:划痕后0和24小时;凋亡:Annexin V-PE/7-AAD和TUNEL 阅读提示:材料与方法:集落形成试验、EdU试验、CCK-8试验、细胞侵袭试验、细胞迁移试验、流式细胞术、TUNEL试验 |
| 分子机制实验 | ChIP-qPCR:抗FEV抗体(1 µg/mL)、IgG对照;双荧光素酶:野生型或突变型WNT2启动子克隆至pGL3-Basic;转染时间:48小时;检测:荧光素酶活性比 阅读提示:材料与方法:染色质免疫沉淀-qPCR、荧光素酶报告基因检测 |
| 体内异种移植瘤实验 | 动物:雄性BALB/c裸鼠,5周龄;每组6只;分组:OE-NC、OE-FEV、OE-FEV+OE-NC、OE-FEV+OE-WNT2;细胞注射量:2×10^6 HCT116细胞皮下注射;测量时间:7、14、21、28天;肿瘤体积公式:体积=长×宽^2×0.5;28天后处死并分离肿瘤称重 阅读提示:材料与方法:异种移植瘤模型 |