椎间盘退变中免疫相关核心基因的鉴定与实验验证

Identification and experimental verification of immune-related hub genes in intervertebral disc degeneration.

作者信息Zeling Huang, Xuefeng Cai, Xiaofeng Shen, Zixuan Chen, Qingtian Zhang, Yujiang Liu, Binjie Lu, Bo Xu, Yuwei Li
PMID39130434
期刊Heliyon
发布时间2024-07-11
DOI10.1016/j.heliyon.2024.e34530

实验完整度

包含生物信息学分析(WGCNA、Limma、LASSO、免疫浸润)、体外细胞共培养验证(RT-qPCR、Western blot),以及功能验证(免疫炎症环境)。

主要模型

人髓核细胞 THP-1来源的M1巨噬细胞共培养模型 GEO数据集(GSE70362、GSE147383、GSE56081、GSE124272)

重点核对

髓核细胞与M1巨噬细胞共培养 THP-1细胞经PMA(100 ng/mL)诱导分化为M0,再用LPS(1 μg/mL)处理24小时诱导为M1 共培养时间24小时 检测IL-1β和TNF-α水平 用RT-qPCR和Western blot验证核心基因表达

摘要

背景 炎症和免疫因素是椎间盘退变(IDD)的核心,但IDD的免疫环境和表观遗传调控过程仍不清楚。本研究旨在识别IDD的免疫相关诊断候选基因,并寻找IDD的潜在发病机制和治疗靶点。 方法 从基因表达综合数据库(GEO)获得基因表达数据集。通过加权基因共表达网络分析(WGCNA)和微阵列数据分析的线性模型(Limma)识别差异表达免疫基因(Imm-DEGs)。使用LASSO算法鉴定与IDD相关的特征基因,并与PPI网络中的核心节点基因进行比较,获得核心基因。基于核心基因的系数构建风险模型,并通过受试者工作特征(ROC)分析进一步评估核心基因的诊断价值。使用免疫细胞分析工具Xcell估计免疫细胞的浸润。最后,将髓核细胞与巨噬细胞共培养,创建M1巨噬细胞免疫炎症环境,并验证核心基因的变化。 结果 结合WGCNA和Limma基因差异分析结果,共鉴定出30个Imm-DEGs。Imm-DEGs富集在与免疫和炎症相关的多条通路中。LASSO算法从Imm-DEGs中鉴定出10个显著影响IDD的特征基因,与Imm-DEGs的PPI网络中的核心节点基因比较后,确定了6个核心基因(NR1H3、SORT1、PTGDS、AGT、IRF1、TGFB2)。ROC曲线和外部数据集验证结果显示,用6个核心基因构建的风险模型对IDD具有较高的诊断价值。免疫细胞浸润分析显示,退变髓核组织中存在多种失调的免疫细胞。体外实验结果显示,在免疫炎症环境中,髓核细胞中NR1H3、SORT1、PTGDS、IRF1和TGFB2的基因表达上调,但AGT的变化不显著。 结论 核心基因NR1H3、SORT1、PTGDS、IRF1和TGFB2可作为IDD的免疫相关生物标志物,并可能是IDD免疫调节治疗的潜在靶点。

实验结论

提炼研究问题、关键发现与证据,快速把握文章的核心贡献。

研究问题
椎间盘退变中哪些免疫相关基因可作为诊断生物标志物,以及其潜在的发病机制和治疗靶点是什么?
核心机制
免疫炎症环境(如M1巨噬细胞极化)导致髓核细胞中NR1H3、SORT1、PTGDS、IRF1和TGFB2表达上调,参与IDD的免疫炎症调控。
主要证据
基于GEO数据集的生物信息学分析(WGCNA、Limma、LASSO、PPI)鉴定出6个核心基因,体外共培养实验验证了其中5个基因在免疫炎症环境中的表达上调。
研究意义
核心基因可作为IDD的免疫相关生物标志物,并可能是IDD免疫调节治疗的潜在靶点。

研究路径

按研究推进顺序梳理实验设计、验证步骤与关键观察。

1

数据获取与处理

获取IDD相关基因表达数据集并去除批次效应。

从GEO下载GSE70362、GSE147383、GSE56081和GSE124272数据集,使用inSilicoMerging合并,并利用经验贝叶斯方法去除批次效应。

2

免疫相关差异基因筛选

鉴定与IDD相关的免疫差异表达基因。

使用WGCNA构建共表达网络,识别与IDD最相关的模块;使用Limma进行差异表达分析;取差异基因与免疫基因的交集获得Imm-DEGs。

3

功能富集与PPI网络分析

探索Imm-DEGs的生物学功能及蛋白质相互作用。

进行GO和KEGG富集分析,使用String数据库和Cytoscape构建PPI网络,并用CytoNCA进行拓扑分析,筛选核心节点基因。

4

核心基因鉴定与诊断模型构建

利用机器学习方法筛选核心基因并构建诊断模型。

使用LASSO算法从Imm-DEGs中筛选特征基因,与PPI核心基因取交集确定6个核心基因,并基于其系数构建风险模型,通过ROC曲线评估诊断价值。

5

免疫细胞浸润分析

评估IDD与对照组之间免疫细胞浸润的差异。

使用xCell方法计算64种免疫浸润细胞评分,比较IDD组与对照组的免疫细胞比例,并分析免疫细胞间的相关性。

6

体外验证实验

验证核心基因在免疫炎症环境中的表达变化。

将人髓核细胞与M1巨噬细胞共培养,建立免疫炎症环境,通过RT-qPCR和Western blot检测核心基因表达。

研究方法

按研究目的归类文中使用的方法,便于定位所需技术。

产品清单

实验环节名称品牌货号
杜氏改良Eagle培养基Gibco11320033
胎牛血清Corning29121005
青霉素和链霉素----
佛波醇肉豆蔻酸乙酸酯----
脂多糖----
IL-1β ELISA试剂盒Nanjing Jin Yibai Biological Technology Co. Ltd.LA167616H
TNF-α ELISA试剂盒Nanjing Jin Yibai Biological Technology Co. Ltd.LA160102H
CD68抗体arigoARG10514
iNOS抗体arigoARG56509
Trizol试剂----
Prime Script RT试剂盒Nanjing Nuoweizan Biotechnology Co., LTD.--
5× Prime Script RT Master MixNanjing Nuoweizan Biotechnology Co., LTD.--
NR1H3抗体proteintech14351-1-AP
SORT1抗体proteintech12369-1-AP
PTGDS抗体proteintech10754-2-AP
AGT抗体proteintech11992-1-AP
IRF1抗体proteintech11335-1-AP
TGFB2抗体proteintech28426-1-AP
GAPDH抗体proteintech10494-1-AP

关键环节

汇总复现实验时建议重点确认的条件及原文阅读提示。

环节核对要点
细胞培养与分化
THP-1细胞用PMA(100 ng/mL)诱导分化为M0,再用LPS(1 μg/mL)处理24小时诱导为M1;髓核细胞培养基为DMEM含10% FBS、100 U/ml青霉素和100 mg/ml链霉素,37°C、5% CO2。
阅读提示:Materials and methods, 2.8
体外共培养
髓核细胞与M1巨噬细胞在Transwell小室共培养24小时。
阅读提示:Materials and methods, 2.8; Results, 3.6
ELISA检测
检测共培养上清中IL-1β和TNF-α水平,使用指定ELISA试剂盒。
阅读提示:Materials and methods, 2.8; Figure 6C
RT-qPCR
使用Trizol提取RNA,用Prime Script RT试剂盒反转录,使用特定引物及2-ΔΔCT方法定量。
阅读提示:Materials and methods, 2.10
Western blot
使用特定抗体(NR1H3, SORT1, PTGDS, AGT, IRF1, TGFB2, GAPDH)及稀释比例,ECL显色。
阅读提示:Materials and methods, 2.11